Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.34
no.3
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pp.187-192
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2014
Alfalfa (Medicago sativa L.) is one of the most important forage legumes in the world. It has been demanded to establish the efficient transformation system in commercial varieties of alfalfa for forage molecular breeding and production of varieties possessing new characteristics. To approach this, genetic transformation techniques have been developed and modified. This work was performed to establish conditions for effective transformation of commercial alfalfa cultivars, Xinjiang Daye, ABT405, Vernal, Wintergreen and Alfagraze. GUS gene was used as a transgene and cotyledon and hypocotyl as a source of explants. Transformation efficiencies differed from 0 to 7.9% among alfalfa cultivars. Highest transformation efficiencies were observed in the cultivar Xinjiang Daye. The integration and expression of the transgenes in the transformed alfalfa plants was confirmed by polymerase chain reaction (PCR) and histochemical GUS assay. These data demonstrate highly efficient Agrobacterium transformation of diverse alfalfa cultivars Xinjiang Daye, which enables routine production of transgenic alfalfa plants.
Oilseed rape (Brassica napus L.) is an important crop due to its high oil content in the seed. Recently, the demand for the improvement of crop for biodisel energy source is increased as oil prices in the world has increased dramatically. Until now, oilseed rape breeding was carried out by cross-hybridization between different varieties and related germplasms. However, like as many other crops, the application of tissue culture and gene transformation systems has been introduced into oilseed rape breeding program including the development of transgenic canola plants. In this study, we reviewed a history of tissue culture and genetic transformation research in oilseed rape plants and indicated some important aspects for the production of transgenic oilseed rape plants.
Hong, Joon Ki;Lim, Myung-Ho;Kim, Jin A;Kim, Jung Sun;Lee, Seung Bum;Suh, Eun Jung;Lee, Soo In;Lee, Yeon-Hee
Plant Breeding and Biotechnology
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v.2
no.3
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pp.289-300
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2014
A tissue-specific and developmentally expressed gene was isolated from Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis), designated BrREF (B. rapa Rubber elongation factor). BrREF transcripts were expressed at high levels in seedlings and at low levels in flower buds and roots. To study the activity of this promoter, the 2.2 kb upstream sequence of BrREF gene was fused to a β-glucuronidase (GUS) reporter gene and was introduced into Arabidopsis thaliana and B. napus by Agrobacterium-mediated transformation. Strong expression of GUS driven by the BrREF promoter was detected in the cotyledons and hypocotyls of transgenic plant seedlings, but GUS expression was weak in roots, excluding the root tips. GUS expression in the cotyledons and hypocotyls decreased dramatically as the seedlings matured and was not detected in the tissues of mature plants. During floral development, GUS expression was observed in immature anthers. These findings suggest that the BrREF promoter can modulate the tissue-specific and developmental expression of gene at the early stages of growth and development.
This study was performed to test the cellulose digestibility using the transgenic pigs harboring cellulose degradation gene D (CelD). After delivered offsprings between normal pig and transgenic swine, DNA was isolated from piglets tail for PCR analysis. In first generation, five out of 65 piglets showed CelD positive. Unfortunately, four CelD-positive pigs were died during growing, but one survived pig was used as a transgenic founder to produce F$_1$ descendents. Among 3 F$_1$ transgenic pigs produced, one died and the remaining two pigs were used to test the fiber digest efficiency. An assorted feed was composite of 5% fiber with other ingredients. The feed of 3 kg per day was provided to the pigs including transgenic founders and littermate controls. The manure quantity was measured daily for a month, and all manures were dried for three days to analysis nitrogen, phosphate and fiber concentrations. The fiber digestion efficiencies of the transgenic F$_1$ pigs showed approximately 10% higher than those of control pigs. Fiber digestion was not greatly improved in transgenic pigs as it had been expected approximately 30%. Nitrogen concentration of transgenic pig's manure was slowly decreased compare to the control pigs. Because there were only two transgenic pigs tested, a large number of transgenic pigs may be necessary to obtain more reliable data. Breeding of animals to obtain sufficient transgenic pigs subjected for a further study is on progress. Taken together, this study demonstrated successful production of transgenic pigs with increase of cellulose digestibility in the porcine feed.
Medicinal and aromatic plants (MAPs) are important sources for plant secondary metabolites, which are important for human healthcare. Improvement of the yield and quality of these natural plant products through conventional breeding is still a challenge. However, recent advances in plant genomics research has generated knowledge leading to a better understanding of the complex genetics and biochemistry involved in biosynthesis of these plant secondary metabolites. This genomics research also concerned identification and isolation of genes involved in different steps of a number of metabolic pathways. Progress has also been made in the development of functional genomics resources (EST databases and micro-arrays) in several medicinal plant species, which offer new opportunities for improvement of genotypes using perfect markers or genetic transformation. This review article presents an overview of the recent developments and future possibilities in genetics and genomics of MAP species including use of transgenic approach for their improvement.
Wu, Jingni;Kim, Sang Gon;Kang, Kyu Young;Kim, Ju-Gon;Park, Sang-Ryeol;Gupta, Ravi;Kim, Yong Hwan;Wang, Yiming;Kim, Sun Tae
The Plant Pathology Journal
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v.32
no.6
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pp.552-562
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2016
Pathogenesis-related proteins play multiple roles in plant development and biotic and abiotic stress tolerance. Here, we characterize a rice defense related gene named "jasmonic acid inducible pathogenesis-related class 10" (JIOsPR10) to gain an insight into its functional properties. Semi-quantitative RT-PCR analysis showed up-regulation of JIOsPR10 under salt and drought stress conditions. Constitutive over-expression JIOsPR10 in rice promoted shoot and root development in transgenic plants, however, their productivity was unaltered. Further experiments exhibited that the transgenic plants showed reduced susceptibility to rice blast fungus, and enhanced salt and drought stress tolerance as compared to the wild type. A comparative proteomic profiling of wild type and transgenic plants showed that overexpression of JIOsPR10 led to the differential modulation of several proteins mainly related with oxidative stresses, carbohydrate metabolism, and plant defense. Taken together, our findings suggest that JIOsPR10 plays important roles in biotic and abiotic stresses tolerance probably by activation of stress related proteins.
Effects of kanamycin concentration on regeneration and rooting of transgenic 'McIntosh Wijcik' were investigated to establish the efficient Agrobacterium-mediated transformation system. Relatively high regeneration frequency of explants appeared even at the high concentration of $150mg{\cdot}L^{-1}$ kanamycin, but the regeneration frequency and the number of normal shoots decreased significantly at a concentration of higher than $100mg{\cdot}L^{-1}$ kanamycin in the gelrite-gellifying medium. Rooting response varied with the transgenic lines in the agar-solidifying medium supplemented with the different concentrations of kanamycin and they were grouped with the inhibition level at $30mg{\cdot}L^{-1}$ concentration. No correlation between copy number and root response was observed. The optimum concentrations of kanamycin for the regeneration of 'McIntosh Wijcik' apple in the medium gellified with gelrite and for indirect-selection of putative transformants in the rooting medium solidified with agar were found to be $100mg{\cdot}L^{-1}$ and $30mg{\cdot}L^{-1}$ respectively.
Field performance and morphological characterization was conducted on seven transgenic lines of Codonopsis lanceolata expressing ${\gamma}-TMT$ gene. The shoots were obtained from leaf explants after co-cultivation with Agrobacterium tume-faciens strain LBA 4404 harboring a binary vector pYBI 121 that carried genes encoding ${\gamma}-Tocopherol$ methyltransferase gene (${\gamma}-TMT$) and a neomycin phosphotransferase II gene (npt II) for kanamycin resistance. The transgenic plants were transferred to a green house for acclimation. Integration of T-DNA into the $T_0\;and\;T_1$ generation of transgenic Codonopsis lanceolata genome was confirmed by the polymerase chain reaction and southern blot analysis. The progenies of transgenic plants showed phenotypic differences within the different lines and with relative to control plants. When grown in field, the transgenic plants in general exhibited increased fertility, significant improvement in the shoot weight, root weight, shoot height and rachis length with relation to the control plants. However, all seven independently derived transgenic lines produced normal flower with respect to its shape, size, color and seeds number at its maturity. Indicating that the addition of a selectable marker gene in the plant genome does not effect on seed germination and agronomic performance of transgenic Codonopsis lanceolata. $T_1$ progenies of these plants were obtained and evaluated together with control plant in a field experiment. Overall, the agronomic performance of $T_1$ progenies of transgenic Codonopsis lanceolata showed superior to that of the seed derived non-transgenic plant. In this study, we report on the morphological variation and agronomic performance of transgenic Codonopsis lanceolata developed by Agrobacterium transformation.
In order to generate transgenic goats expressing human growth hormone (hGH) in their mammary glands, goat ${\beta}-Casein/hGH$ hybrid gene was introduced into goat zygotes by pronuclear microinjection. DNA-injected embryos were transferred to the oviduct of recipients at 2-cell stage or to the uterus at morula/blastocyst stage after cultivation in glutathione-supplemented mSOF medium in vitro. Pregnancy and survival rate were not significantly different between 2-cell embryos and morula/blastocysts transferred to oviduct and uterus, respectively. One transgenic female goat was generated from 153 embryos survived from DNA injection. Southern blot analysis revealed that the transgenic goat harbored single-copy transgene with a partial deletion in its sequences. Despite of the partial sequence deletion, the transgene was successfully expressed hGH at the level of $72.1{\pm}15.1{\mu}g/ml$ in milk throughout lactation period, suggesting that the sequence deletion had occurred in non-essential part of the transgene for the transgene expression. Unfortunately, however, the transgene was not transmitted to her offspring during three successive breeding seasons. These results demonstrated that goat ${\beta}-casein/hGH$ gene was integrated into the transgenic goat genome in a mosaic fashion with a partial sequence deletion, which could result in a low level expression of hGH and a failure of transgene transmission.
Non-heading Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. chinensis) is a popular vegetable in Asian countries. The diamondback moth (DBM), Plutella xylostella (L.), an insect with worldwide distribution, is a main pest of Brassicaceae crops and causes enormous crop losses. Transfer of the anti-insect gene into the plant genome by transgenic technology and subsequent breeding of insect-resistant varieties will be an effective approach to reducing the damage caused by this pest. We have produced transgenic non-heading Chinese cabbage plants expressing the potato proteinase inhibitor II gene (pinII) and tested the pest resistance of these transgenic plants. Non-heading Chinese cabbages grown for 45 days on which buds had formed were used as experimental materials for Agrobacterium-mediated vacuum infiltration transformation. Forty-one resistant plants were selected from 1166 g of seed harvested from the infiltrated plants based on the resistance of the young seedlings to the herbicide Basta. The transgenic traits were further confirmed by the Chlorophenol red test, PCR, and genomic Southern blotting. The results showed that the bar and pinII genes were co-integrated into the resistant plant genome. A bioassay of insect resistance in the second generation of individual lines of the transgenic plants showed that DBM larvae fed on transgenic leaves were severely stunted and had a higher mortality than those fed on the wild-type leaves.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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