Proceedings of the Korean Society of Toxicology Conference
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2001.05a
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pp.84-88
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2001
Human Thioredoxin (TRX) with with redox-active dithiol (C-C-Y-C-) in the active site has been cloned as adult T cell leukemia derived factor produced by HTLV-I transformed cells. Thioredoxin (TRX) is one of the major components of the thiol-reducing system and plays multiple roles in cellular processes such as proliferation, apoptosis and gene expression.(omitted)
Peroxiredoxins are highly conserved and abundant peroxidases. Although the thioredoxin peroxidase activity of peroxiredoxin (Prx) is important to maintain low levels of endogenous hydrogen peroxide, Prx have also been shown to promote hydrogen peroxide-mediated signalling. Mitogen activated protein kinase (MAPK) signalling pathways mediate cellular responses to a variety of stimuli, including reactive oxygen species (ROS). Here we review the evidence that Prx can act as both sensors and barriers to the activation of MAPK and discuss the underlying mechanisms involved, focusing in particular on the relationship with thioredoxin.
In, Jun-Gyo;Lee, Bum-Soo;Rho, Yeong-Deok;Yu, Chang-Yeon;Yang, Deok-Chun
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.13
no.5
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pp.293-297
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2005
A thoredoxin (CTRX) gene was cloned and characterized from a full length cDNA library prepared from taproot of three-year old Codonopsis lanceolata. A CTRX was 666 nucleotides long and has an open reading frame of 372 bp with 124 amino acid residues (pI = 4.92). The deduced amino acid sequence of the CTRX matched to the previously reported plant thioredoxin h genes. The deduced amino acid sequence of CTRX exhibited the similarity of 33-67% among previously registered thioredoxin genes. The expression of CTRX in leaves of Codonopsis lanceolata was increased by wounding and 1 mM $H_2O_2$, but decreased by 0.1 mM cadmium.
We previously reported that a novel thiol peroxidase (p20) from Escherichia coli is a distinct periplasmic peroxidase that detoxifies hydroperoxides together with glutathione or thioredoxin. Until now, there was no experimental evidence for the presence of thioredoxin (Trx) in the periplasmic space. In an attempt to confirm the physiological function of p20 as a thiol peroxidase supported by Trx in the periplasmic space, we have purified a Trx activity from the periplasmic space of Escherichia coli and identified the Trx as the same protein as the cytoplasmic Trx. The presence of Trx in the periplasmic space of Escherichia coli suggests that p20 is a unique extracellular Trx-linked thiol peroxidase.
The occurrence of thioredoxin reductase (NAD(P)H: oxidized-thioredoxin reductase, EC 1.6.4.5, TrxR) in five mesophilic species of Deinococcus was investigated by PAGE. Each species possessed a unique TrxR pattern, for example, a single TrxR characterized D. radiopugnans while multiple forms of TrxR occurred in other Deinococcal spp. Most of TrxRs occurring in Deinococcus showed dual cofactor specificity, active with either NADH or NADPH, although the NADPH specific-TrxR was observed in D. radiophilus and D. proteolytic us.
Oxidative damage to mitochondria is a critical mechanism in necrotic or apoptotic cell death induced by many kinds of toxic chemicals. Thioredoxin (Trx) family proteins are known to play protective roles in organisms under oxidative stress through redox reaction by using reducing equivalents of cysteines at a conserved active site, Cys-X-X-Cys. Whereas biological and physiological properties of Trx1 are well characterized, significance of mitochondrial thioredoxin (Trx2) is not well known. Therefore, we addressed physiological role of Trx2 in PC12 cells under oxidative stress. In PC12 cells, transiently overexpressed Trx2 significantly reduced cell death induced by hydrogen peroxide, whereas mutant Trx2, having serine residues instead of two cysteine residues at the active site did not. In addition, stably expressed Trx2 protected PC12 cells from serum deprivation. These results suggest that Trx2 may play defensive roles in PC12 cells by reducing oxidative stress to mitochondria.
Recombinant heterologous proteins can be produced as insoluble aggregates partially or perfectly inactive in Escherichia coli. One of the strateges to improve the solubility of recombinant proteins is fusion with a partner that is excellent in producing soluble fusion proteins. To improve the production of soluble $\beta$-galactosidase, the gene of Thermus thermophilus KNOUC112 $\beta$-galactosidase (KNOUC112 $\beta$-gal) was fused with thioredoxin gene, and optimization of its expression in E. coli TOP10 was performed. KNOUC112 $\beta$-gal in pET-5b was isolated out, fused with thioredoxin gene in pThioHis C, and transformed to E. coli TOP10. The $\beta$-galactosidase fused with thioredoxin was produced in E. coli TOP10 as dimer and trimer. The productivity of fusion $\beta$ -galactosidase expressed via pThioHis C at 37$^{\circ}C$ was about 5 times higher than that of unfused $\beta$-galactosidase expressed via pET-5b at 37$^{\circ}C$. Inclusion body of $\beta$-galactosidase was formed highly, regardless of the induction by IPTG when KNOUC112 $\beta$ -gal was expressed via pET-5b at 37$^{\circ}C$. Fusion $\beta$ -galactosidase expressed at 37$^{\circ}C$ via pThioHis C without the induction by IPTG was soluble, but the induction by IPTG promoted the formation of inclusion body. Lowering the incubation temperature for the expression of fusion gene under 25$^{\circ}C$ prevented the formation of inclusion body, optimally at 25$^{\circ}C$. 0.07 mM of IPTG was sufficient for the soluble expression of fusion gene at 25$^{\circ}C$. The soluble production of Thermus thermophilus KNOUC112 $\beta$-galactosidase could be increased about 10 times by fusion with thioredoxin, and optimization of incubation temperature and IPTG concentration for induction.
The thioredoxin reductase (TrxR) system is essential for cell survival and function by playing a pivotal role in maintaining homeostasis of cellular redox and regulating signal transduction pathways. The TrxR system comprises thioredoxin (Trx), TrxR, and nicotinamide adenine dinucleotide phosphate. Trx reduced by the catalytic reaction of the TrxR enzyme reduces downstream proteins, resulting in protection against oxidative stress and regulation of cell differentiation, growth, and death. Cancer cells survive by improving their intracellular antioxidant capacity to eliminate excessively generated reactive oxygen species (ROS) due to infinite cell proliferation and a high metabolic rate. Therefore, cancer cells have high dependence and sensitivity to antioxidant systems, suggesting that focusing on TrxR, a representative antioxidant system, is a potential strategy for cancer therapy. Several studies have revealed that TrxR is expressed at high levels in various types of cancers, and research on anticancer activity targeting the TrxR system is increasing. In this review, we discuss the feasibility and value of the TrxR system as a strategy for anticancer activity research by examining the relationship between the function of the intracellular TrxR system and the development and progression of cancer, considering the anticancer activity and mechanism of TrxR inhibitors.
Three-week grown Arabidopsis thaliana leaves were wounded by cutting whole leaves with a razor blade into pieces (about$3\;mm\;{\times}\;3\;mm$) submerged in various solutions, and incubated in a growth chamber for 24 h. We measured and compared activities of several enzymes such as phenylalanine ammonia-lyase (PAL), tyrosine ammonia-lyase (TAL), thioredoxin, thioredoxin reductase, thioltransferase, glutathione reductase, and $NADP^+$ -malate dehydrogenase. PAL activity was decreased in $HgCl_2$-, $CdCl_2$-, and glyphosate-treated leaf slices, and could not be detected after treatment with $CdCl_2$. TAL activity was found to be maximal in the $CdCl_2$-treated leaf slices. Activity of thioredoxin, a small protein known as a cofactor of ribonucleotide reductase and a regulator of photosynthesis, was significantly increased in the $CdCl_2$-treated leaf slices, while thioredoxin reductase activity was maximal in the $HgCl_2$-treated leaf slices. Thioltransferase and glutathione reductase activities were significantly decreased in the $HgCl_2$-treated leaf slices. $NADP^+$ -malate dehydrogenase activity remained relatively constant after the chemical treatments. Our results strongly indicate that sulfhydryl-related and phenylpropanoid-synthesizing enzyme activities are affected by chemical treatments such as hydrogen peroxide, heavy metals, and glyphosate.
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