BACKGROUND/OBJECTIVES: Unregulated inflammatory responses caused by hyperglycemia may induce diabetes complications. Hesperetin, a bioflavonoid, is a glycoside in citrus fruits and is known to have antioxidant and anticarcinogenic properties. However, the effect of inflammation on the diabetic environment has not been reported to date. In this study, we investigated the effect of hesperetin on proinflammatory cytokine secretion and its underlying mechanistic regulation in THP-1 macrophages with co-treatment LPS and hyperglycemic conditions. MATERIALS/METHODS: THP-1 cells differentiated by PMA (1 µM) were cultured for 48 h in the presence or absence of hesperetin under normoglycemic (5.5 mM/L glucose) or hyperglycemic (25 mM/L glucose) conditions and then treated with LPS (100 ng/mL) for 6 h before harvesting. Inflammation-related proteins and mRNA levels were evaluated by enzyme-linked immunosorbent assay, western blot, and quantitative polymerase chain reaction analyses. RESULTS: Hesperetin (0-100 µM, 48 h) treatment did not affect cell viability. The tumor necrosis factor-α and interleukin-6 levels increased in cells co-treated with LPS under hyperglycemic conditions compared to normoglycemic conditions, and these increases were decreased by hesperetin treatment. The TLR2/4 and MyD88 activity levels increased in cells co-treated with LPS under hyperglycemic conditions compared to normoglycemic conditions; however, hesperetin treatment inhibited the TLR2/4 and MyD88 activity increases. In addition, nuclear factor-κB (NF-κB) and Acetyl-NF-κB levels increased in response to treatment with LPS under hyperglycemic conditions compared to normoglycemic conditions, but those levels were decreased when treated with hesperetin. SIRT3 and SIRT6 expressions were increased by hesperetin treatment. CONCLUSIONS: Our results suggest that hesperetin may be a potential agent for suppressing inflammation in diabetes.
Desmarestia tabacoides Okamura is a brown macroalgae that is found worldwide. Although several genera of Desmarestia have been reported as having anti-tumorigenic, anti-melanogenic, and photoprotective properties, the anti-inflammatory activity of D. tabacoides Okamura has not yet been evaluated. In this study, we analyzed the anti-inflammatory mechanisms of D. tabacoides Okamura ethanol extract (DTEE) via the inhibition of nitric oxide (NO) and prostaglandin (PG) E2 production and the expression of their corresponding enzymes, inducible NO synthase (iNOS), and cyclooxygenase (COX)-2. In addition, their upstream signaling molecules were evaluated by Western blot analysis, such as nuclear factor (NF)-κB, mitogen-activated protein kinase (MAPK), and phosphoinositide-3-kinase (PI3K)/Akt, in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated RAW 264.7 cells. The DTEE treatment significantly inhibited LPS-induced NO and PGE2 production as well as the expression of their corresponding enzymes, iNOS, and COX-2 without cytotoxicity. The stimulated transcription factor NF-κB and upstream signaling molecules extracellular signal-regulated kinase (ERK), c-Jun NH2-terminal kinase (JNK), and p38 were attenuated by the DTEE treatment, which was statistically significant, while Akt did not provide any inhibitory effect. Moreover, the DTEE treatment significantly mitigated the LPS-activated adaptor molecules, toll-like receptor 4 (TLR4), and myeloid differentiation primary response 88 (MyD88) in the RAW 264.7 cells. These results suggest that DTEE attenuates TLR4-mediated inflammatory responses by inhibiting NF-κB activation and suppressing MAPK phosphorylation in LPS-stimulated RAW 264.7 cells.
Toll-like receptors (TLRs), which are pattern recognition receptors (PRRs), recognize pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) and regulate the activation of innate immunity. All TLR signaling pathways culminate in the activation of NF-${\kappa}B$, leading to the induction of inflammatory gene products such as cyclooxygenase-2 (COX-2) and inducible nitric oxide synthase (iNOS). Parthenolide, a sesquiterpene lactone isolated from the herb feverfew (Tanacetum parthenium), has been used as folk remedies to treat many chronic diseases for many years. In the present report, we present biochemical evidence that parthenolide inhibits the NF-${\kappa}B$ activation induced by TLR agonists and the overexpression of downstream signaling components of TLRs, MyD88, $IKK{\beta}$, and p65. Parthenolide also inhibits TLR agonists-induced COX-2 and iNOS expression. These results suggest that parthenolide can modulate the immune responses regulated by TLR signaling pathways.
Toll-like receptors (TLRs) play a critical role in the induction of innate immune responses that are essential for host defense against invading microbial pathogens. In general, TLRs have two major downstream signaling pathways, namely MyD88- and TRIF-dependent pathways, leading to the activation of nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$) and interferon regulatory factor 3 (IRF3) and the expression of inflammatory mediators. TLR4 dimerization is required for the activation of downstream signaling pathways and may be one of the first lines of regulation in activating TLR-mediated signaling pathways. In this paper, the molecular targets of curcumin, 6-shogaol, and cinnamaldehyde in TLR signaling pathways will be discussed. Curcumin, 6-shogaol, and cinnamaldehyde with ${\alpha},{\beta}$-unsaturated carbonyl groups inhibit the dimerization of TLR4 induced by lipopolysaccharide, resulting in the downregulation of NF-${\kappa}B$ and IRF3. These results suggest that phytochemicals with the structural motif conferring Michael addition inhibit TLR4 dimerization, suggesting a novel mechanism for the anti-inflammatory activity of phytochemicals.
Lee, Hyo-Ji;Kim, Keun-Cheol;Han, Jeong A;Choi, Sun Shim;Jung, Yu-Jin
Molecules and Cells
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v.38
no.1
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pp.26-32
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2015
Toll-like receptors (TLR) 7 and 9 transduce a cellular signal through the MyD88-dependent pathway and induce the production of inflammatory mediators against microbial nucleotide components. The repeated stimulation of TLR4 leads to endotoxin tolerance, but the molecular mechanisms of tolerance induced through the costimulation of individual TLR has not yet been established, although endosomal TLRs share signaling pathways with TLR4. In the present study, mouse macrophages were simultaneously stimulated with the TLR7 agonist, gardiquimod (GDQ), and the TLR9 agonist, CpG ODN 1826, to examine the mechanism and effector functions of macrophage tolerance. Compared with individual stimulation, the costimulation of both TLRs reduced the secretion of TNF-${\alpha}$ and IL-6 through the delayed activation of the NF-${\kappa}B$ pathway; notably, IL-10 remained unchanged in costimulated macrophages. This tolerance reflected the early induction of suppressor of cytokine signaling-1 (SOCS-1), according to the detection of elevated TNF-${\alpha}$ secretion and restored NF-${\kappa}B$ signaling in response to the siRNA-mediated abrogation of SOCS-1 signaling. In addition, the restimulation of each TLRs using the same ligand significantly reduced the expression of both TLRs in endosomes. These findings revealed that the costimulation of TLR7 and TLR9 induced macrophage tolerance via SOCS-1, and the restimulation of each receptor or both TLR7 and TLR9 downregulated TLR expression through a negative feedback mechanisms that protects the host from excessive inflammatory responses. Moreover, the insufficient and impaired immune response in chronic viral infection might also reflect the repeated and simultaneous stimulation of those endosomal TLRs.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Obesity is associated with chronic inflammation. The spleen is the largest organ of the lymphatic system and has an important role in immunity. Obesity-induced inflammatory responses are triggered by Toll-like receptor (TLR)-myeloid differentiation primary response 88 (MyD88) pathway signaling. Phenethyl isothiocyanate (PEITC) and 3,3'-diindolylmethane (DIM), major dietary glucosinolates present in cruciferous vegetables, have been reported to produce anti-inflammatory effects on various diseases. However, the effects of PEITC and DIM on the obesity-induced inflammatory response in the spleen are unclear. The purpose of this study was to examine the anti-inflammatory effects of PEITC and DIM on the spleen and their mechanism in high fat/cholesterol diet (HFCD)-fed C57BL/6 mice. MATERIALS/METHODS: We established an animal model of HFCD-induced obesity using C57BL/6 mice. The mice were divided into six groups: normal diet with AIN-93G diet (CON), high fat diet (60% calories from fat) with 1% cholesterol (HFCD), HFCD with PEITC 30 mg/kg/day or 75 mg/kg/day (HFCD+P30, HFCD+P75), and HFCD with DIM 1.5 mg/kg/day or 7.5 mg/kg/day (HFCD+D1.5, HFCD+D7.5). Enzyme-linked immunosorbent assay was used to evaluate pro-inflammatory cytokine secretion. Western blot and quantitative polymerase chain reaction were used to analyze protein and mRNA levels of nuclear factor kappa B (NF-κB) p65, interleukin 6 (IL-6), cyclooxygenase 2 (COX-2), TLR2, TLR4, and MyD88 in spleen tissue. RESULTS: Serum IL-6 levels were significantly higher in the HFCD group than in groups fed a HFCD with PEITC or DIM. Levels of NF-κB p65 protein and TLR2/4, MyD88, NF-κB p65, IL-6, and COX-2 mRNA were significantly higher in the HFCD group than in the CON group and were reduced by the PEITC and DIM supplements. CONCLUSIONS: PEITC- and DIM-supplemented diets improved splenic inflammation by modulating the TLR2/4-MyD88 pathway in HFCD-fed mice. We suggest that dietary glucosinolates may at least partially improve obesity-induced inflammation of the spleen.
Diabetes mellitus is associated with vascular complications. Diabetic patients exhibit high levels of glycated adducts in serum compared to non-diabetic individuals. The aim of this study was to investigate whether extracellular glycated albumin (GA) predisposes vascular smooth muscle cells (VSMCs) to pro-inflammatory phenotype. Exposure of rat aortic smooth muscle cells (AoSMCs) to GA not only enhanced interleukin-6 (IL-6) release but also activated promoter activity of the IL-6 gene. GA-induced IL-6 promoter activation was suppressed by dominant-negative forms of Toll-like receptor (TLR)-4 and myeloid differentiation factor 88 (MyD88), but not by dominant-negative-forms of TLR-2 and TIR-domain-containing adapter-inducing interferon-$\beta$ (TRIF). Extracellular signal-regulated kinase (ERK) inhibition and diphenyleneiodium (DPI) also attenuated IL-6 induction by GA. Mutation at the nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$)-binding site in the IL-6 promoter region suppressed promoter activation in response to GA. The present study proposes that GA would contribute to inflammatory reaction in the stressed vasculature by inducing IL-6 in VSMCs, and that TLR-4, EKR, and NF-${\kappa}B$ play active roles in the process.
Toll-like receptors (TLRs) induce innate immune responses that are essential for host defenses against invading microbial pathogens, thus leading to the activation of adaptive immune responses. In general, TLRs have two major downstream signaling pathways: the MyD88- and TRIF-dependent pathways, which lead to the activation of $NF-{\kappa}B$ and IRF3. Numerous studies have demonstrated that certain phytochemicals possessing anti-inflammatory effects inhibit $NF-{\kappa}B$ activation induced by pro-inflammatory stimuli, including lipopolysaccharides and $TNF{\alpha}$. However, the direct molecular targets for such anti-inflammatory phytochemicals have not been fully identified. Identifying the direct targets of phytochemicals within the TLR pathways is important because the activation of TLRs by pro-inflammatory stimuli can induce inflammatory responses that are the key etiological conditions in the development of many chronic inflammatory diseases. In this paper we discuss the molecular targets of resveratrol, (-)-epigallocatechin-3-gallate (EGCG), and curcumin in the TLR signaling pathways. Resveratrol specifically inhibited the TRIF pathway in TLR3 and TLR4 signaling, by targetting TBK1 and RIP1 in the TRIF complex. Furthermore, EGCG suppressed the activation of IRF3 by targetting TBK1 in the TRIF-dependent signaling pathways. In contrast, the molecular target of curcumin within the TLR signaling pathways is the receptor itself, in addition to $IKK{\beta}$. Together, certain dietary phytochemicals can modulate TLR-derived signaling and inflammatory target gene expression, and in turn, alter susceptibility to microbial infection and chronic inflammatory diseases.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2019.10a
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pp.92-92
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2019
Excessive or chronic inflammation contributes to the pathogenesis of many inflammatory diseases such as sepsis, rheumatoid arthritis, and ulcerative colitis. Hibiscus syriacus L. has been used as a medicinal plant in many Asian countries, even though its anti-inflammatory activity has been unclear. Therefore, we investigated the anti-inflammatory effect of anthocyanin fractions from the H. syriacus L. varieties Pulsae (PS) on the lipopolysaccharide (LPS)-induced expression of proinflammatory mediators and cytokines in RAW264.7 macrophages. PS suppressed LPS-induced nitric oxide (NO) and prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) secretion concomitant with downregulation of inducible NO synthase (iNOS) and cyclooxygenase-2 (COX-2) expression. Furthermore, PS inhibited the production of proinflammatory cytokines such as tumor necrosis factor-alpha ($TNF-{\alpha}$), interleukin-6 (IL-6), and IL-12 in LPS-stimulated RAW264.7 macrophages. Further study showed that PS significantly decreased LPS-induced nuclear translocation of the nuclear $factor-{\kappa}B$ ($NF-{\kappa}B$) subunits, p65 and p50. Molecular docking data showed that many anthocyanins from PS fit into the hydrophobic pocket of MD2 and bound to Toll-like receptor 4 (TLR4), indicating that PS inhibits the TLR4-MD2-mediated inflammatory signaling pathway. Especially, apigenin-7-O-glucoside most powerfully bound to MD2 and TLR4 through LYS122, LYS122, and SER127 at a distance of $2.205{\AA}$, $3.098{\AA}$, and $2.844{\AA}$ and SER441 at a distance of $2.873{\AA}$ (docking score: -8.4) through hydrogen bonding, respectively. Additionally, PS inhibited LPS-induced TLR4 dimerization/expression on the cell surface, which consequently decreased MyD88 recruitment and IRAK4 phosphorylation. PS completely blocked LPS-mediated mortality in zebrafish larvae by diminishing the recruitment of neutrophil and macrophages accompanied by low levels of proinflammatory cytokines. Taken together, our results indicate that PS attenuates LPS-mediated inflammation in both in vitro and in vivo by blocking the TLR4/MD2-MyD88/IRAK4-$NF-{\kappa}B$ axis. Therefore, PS might be used as a novel modulatory candidate for effective treatment of LPS-mediated inflammatory diseases.
Chul Hwan Kim;Young-Kyung Lee;Min Jin Kim;Ji Su Choi;Buyng Su Hwang;Pyo Yun Cho;Young Jun Kim;Yong Tae Jeong
Korean Journal of Plant Resources
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v.36
no.1
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pp.15-25
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2023
Myriophyllum spicatum L. has been used as an ornamental in ponds and aquariums, and as a folk remedy for inflammation and pus. Nevertheless, the biological activity and underlying mechanisms of anti-inflammatory effects are unclear. This study is aimed at investigating the antioxidative and anti-inflammatory activities of ethanol extract of Myriophyllum spicatum L. (EMS) in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated RAW 264.7 cells. Antioxidant activity of EMS was assessed by radical-scavenging effects on ferric reducing antioxidant power (FRAP) and 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) free radicals. As inflammatory response parameters produced by LPS-stimulated RAW 264.7 cells were quantified to assess the anti-inflammatory activity of EMS. Our results showed that EMS increased FRAP and DPPH radical-scavenging activity. In EMS-treated RAW 264.7 cells, the production of NO, PGE2, TNF-α and IL-1β was significantly inhibited at the non-cytotoxic concentration. In addition, EMS significantly attenuated LPS-stimulated the toll-like receptor (TLR) 4/myeloid differentiation protein (MyD) 88 signaling pathway, and inhibited nuclear translocation of nuclear factor-kappa B(NF-κB). Positive correlations were noted between anti-inflammatory activity and antioxidant activity. In conclusion, it was indicated that EMS suppresses the transcription of inflammatory factors by inhibiting the TLR4/MyD88/NF-κB signaling pathway, thereby suppressing LPS-stimulated inflammation in RAW 264.7 cells. This study highlights the potential role of EMS against inflammation and associated diseases.
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