생식선 줄기세포 원천기술을 이용한 형질전환 조류 생산 시스템과 고효율의 유전자적 중 기술인 유전자가위법(TALEN)을 도입함으로써 기초연구 및 단기간내 새로운 가금품종 개발이 가능하게 되었다. 또한, 신약개발 및 치료물질 대량생산을 위한 형질전환가금품종 개발에 응용될 수도 있어 축산과 더불어 의약, 약학 등 매우 다양한 분야에서 가금의 활용 범위를 넓힐 수 있을것으로 기대된다. 개발된 기술은 계란성분 조절을 통한 기능성 식품 및 단백질-신약을 포함한 신물질 생산을 목적으로 하는 지식기반 생명산업의 획기적인 발전을 유도할 수 있다. 이에 유전자 가위 기법을 활용한 오브알부민 생산 유전자를 제거한 유전자 변형 닭 생산에 관한 주요내용을 소개코자 한다.
Transcription activator like effector nucleases (TALENs) are artificial restriction enzymes generated by fusing a TALE DNA binding domain to a DNA cleavage domain which remove and introduce specific genes to produce transgenic animals. To investigate the efficient laboratory techniques for the injection of TALEN mRNA, pEGFP-N1 commercial plasmid were microinjected into porcine parthenogenetic and in vitro fertilization (IVF). In Experiment 1, to investigate injection time, compared 4 different time durations (2 hr, 4 hrs, 6 hrs & 8 hrs) after post activation of parthenogenetic embryos and after 6 hrs of co-incubation with sperms in IVF embryos. There were significant difference (P<0.05) in development to the blastocysts (4.4, 8.9, 3.9, 0.6%), GFP expression in blastocysts (1.3, 5.7, 2.3, 0.0%) which injected after post activation of 4 hrs compared with other 3 groups. IVF embryos after 2 hrs and 4 hrs injected were expressed GFP significantly higher than rest of two groups (P<0.05). In Experiment 2, compared development of 2 different concentrations ($20ng/{\mu}l$ and $50ng/{\mu}l$) of EGFP injection. There were significant difference (P<0.05) between two treatments which has higher cleavage (58.8 vs 41.9%), blastocysts development rate (13.0 vs 11.1%) and GFP expressed blastocysts (5.7 vs 0.0%) in $20ng/{\mu}l$ than the $50ng/{\mu}l$ in parthenogenetic embryos. In IVF embryos, only $20ng/{\mu}l$ injected embryos were expressed GFP (4.2%) after 7 days of incubation and 77.3 vs 64.7% of cleavage, 26.4 vs 23.5% development to blastocysts. In Experiment 3, three different volumes (5, 10 and 20 pl) were microinjected into porcine embryos to determine the most appropriate volume. Out of 3 groups, significantly higher development rates of cleavage (68.3, 58.0, 29.3%), blastocysts (11.7, 12.7, 0.5%) and GFP expressed blastocysts (2.9, 7.8, 0.0%) were shown in the 10 pl group (P<0.05). In conclusion, these results imply that $20ng/{\mu}l$ concentration, 10 pl of volume and injection at 4 hrs after post activation for parthenogenetic and 2~4 hrs after IVF, $20ng/{\mu}l$ concentration and 10 pl volume for IVF embryos were more effective microinjection conditions.
The knock-in efficiency in the fibroblast is very important to produce transgenic domestic animal using nuclear transfer. In this research, we constructed three kinds of different knock-in vectors to study the efficiency of knock-in depending on structure of knock-in vector with different size of homologous arm on the ${\beta}-casein$ gene locus in the somatic cells; DT-A_cEndo Knock-in vector, DT-A_tEndo Knock-in vector I, and DT-A_tEndo Knock-in vector II. The knock-in vector consists of 4.8 kb or 1.06 kb of 5' arm region and 1.8 kb or 0.64 kb of 3' arm region, and neomycin resistance gene(neor) as a positive selection marker gene. The cEndo Knock-in vector had 4.8 kb and 1.8 kb homologous arm. The tEndo Knock-in vector I had 1.06 kb and 0.64 kb homologous arm and tEndo Knock-in vector II had 1.06 kb and 1.8 kb homologous arm. To express endostatin gene as transgene, the F2A sequence was fused to the 5' terminal of endostatin gene and inserted into exon 7 of the ${\beta}-casein$ gene. The knock-in vector and TALEN were introduced into the bovine fibroblast by electroporation. The knock-in efficiencies of cEndo, tEndo I, and tEndo II vector were 4.6%, 2.2% and 4.8%, respectively. These results indicated that size of 3' arm in the knock-in vector is important for TALEN-mediated homologous recombination in the fibroblast. In conclusion, our knock-in system may help to create transgenic dairy cattle expressing human endostatin protein via the endogenous expression system of the bovine ${\beta}-casein$ gene in the mammary gland.
The plant breeding technology was developed with genetic engineering. Many researchers and breeders have turned from traditional breeding to molecular breeding. Genetically modified organisms (GMO) were developed via molecular breeding technology. Currently, molecular breeding technologies facilitate efficient plant breeding without introducing foreign genes, in virtue by of gene editing technology. Gene targeting (GT) via homologous recombination (HR) is one of the best gene editing methods available to modify specific DNA sequences in genomes. GT utilizes DNA repair pathways. Thus, DNA repair systems are controlled to enhance HR processing. Engineered sequence specific endonucleases were applied to improve GT efficiency. Engineered sequence specific endonucleases like the zinc finger nuclease (ZFN), TAL effector nuclease (TALEN), and CRISPR-Cas9 create DNA double-strand breaks (DSB) that can stimulate HR at a target site. RecQl4, Exo1 and Rad51 are effectors that enhance DSB repair via the HR pathway. This review focuses on recent developments in engineered sequence specific endonucleases and ways to improve the efficiency of GT via HR effectors in plants.
Park, Bo Min;Roh, Jae-il;Lee, Jaehoon;Lee, Han-Woong
Laboraroty Animal Research
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제34권4호
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pp.264-269
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2018
Cell cycle dysfunction can cause severe diseases, including neurodegenerative disease and cancer. Mutations in cyclin-dependent kinase inhibitors controlling the G1 phase of the cell cycle are prevalent in various cancers. Mice lacking the tumor suppressors $p16^{Ink4a}$ (Cdkn2a, cyclin-dependent kinase inhibitor 2a), $p19^{Arf}$ (an alternative reading frame product of Cdkn2a,), and $p27^{Kip1}$ (Cdkn1b, cyclin-dependent kinase inhibitor 1b) result in malignant progression of epithelial cancers, sarcomas, and melanomas, respectively. Here, we generated knockout mouse models for each of these three cyclin-dependent kinase inhibitors using engineered nucleases. The $p16^{Ink4a}$ and $p19^{Arf}$ knockout mice were generated via transcription activator-like effector nucleases (TALENs), and $p27^{Kip1}$ knockout mice via clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated nuclease 9 (CRISPR/Cas9). These gene editing technologies were targeted to the first exon of each gene, to induce frameshifts producing premature termination codons. Unlike preexisting embryonic stem cell-based knockout mice, our mouse models are free from selectable markers or other external gene insertions, permitting more precise study of cell cycle-related diseases without confounding influences of foreign DNA.
Since its first demonstration as a practical genome editing tool in the early 2010s, the use of clustered regularly interspaced short palindromic repeat (CRISPR) along with the endonuclease Cas9 (CRISPR/Cas9) has become an essential choice for generating targeted mutations. Due to its relative simplicity and cost-effectiveness compared to other molecular scissors, i.e., zinc finger nuclease (ZFN) and transcription activator-like effector nuclease (TALEN), the CRISPR/Cas9 system has been shown to have a massive influence on genetic studies regardless of the biological kingdom. Although the system is in the process of being established, numerous protocols have already been released for the system and there have been various topics of CRISPR related papers published each year in ever-increasing manner. Here, we will briefly introduce CRISPR/Cas9 system and discuss the variants of the CRISPR system. Also, their applications to crop improvement will be dealt with mainly ornamental crops among horticultural crops other than Arabidopsis as a model plant. Finally, some issues on the barriers restraining the use of CRISPR system on floricultural crops, the prospect of CRISPR system as a DNA-free genome editing tool with efficient facilitators and finally, the future perspectives on the CRISPR system will be described.
miR-101 is considered to play an important role in hepatocellular carcinoma (HCC), but the underlying molecular mechanism remains to be elucidated. Here, we aimed to confirm whether Girdin is a target gene of miR-101 and determine the tumor suppressor of miR-101 through Girdin pathway. In our previous studies, we firstly found Girdin protein was overexpressed in HCC tissues, and it closely correlated to tumor size, T stage, TNM stage and Edmondson-Steiner stage of HCC patients. After specific small interfering RNA of Girdin was transfected into HepG2 and Huh7.5.1 cells, the proliferation and invasion ability of tumor cells were significantly inhibited. In this study, we further explored the detailed molecular mechanism of Girdin in HCC. Interestingly, we found that miR-101 significantly low-expressed in HCC tissues compared with that in matched normal tissues while Girdin had a relative higher expression, and miR-101 was inversely correlated with Girdin expression. In addition, after miR-101 transfection, the proliferation, migration and invasion abilities of HepG2 cells were weakened. Furthermore, we confirmed that Girdin is a direct target gene of miR-101. Finally we confirmed Talen-mediated Girdin knockout markedly suppressed cell proliferation, migration and invasion in HCC while downregulation of miR-101 significantly restored the inhibitory effect. Our findings suggested that miR-101/Girdin axis could be a potential application of HCC treatment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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