Milt of the catfish was stripped into immobilizing solution containing 175 mM NaCl and 30 mM Tris at pH 7.8 and was successfully cryopreserved after a stepwise freezing procedure. After stepwise thawing, motility of spermatozoa was slightly lower than that of fresh sperm. Batches of 40-80 eggs were fertilized with cryopreserved spermatozoa, after thawing and activation in solution containing 50 mM NaCl, 20 mM Tris and HCl at pH 7.8; this resulted in 62.2% fertilization success, compared to 70.6 % with fresh sperm.
Kim, Sang-Woo;Lee, Jae-Ik;Kim, Mi-Kyung;Lee, Young-Ah;Lee, Kyu-Sup;Yoon, Man-Soo
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.27
no.2
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pp.191-200
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2000
Objective: This study was carried out to compare the effects of the stepwise exposure treatments on the morphological normality, fertilization and blastocyst formation rate of the frozen-thawed mouse mature oocytes by vitrification or ultra-rapid freezing and to use as a fundamental data for the cryopreservation of human oocytes. Materials and Methods: The morphological normality and fertilization rates of the vitrified and ultra-rapid frozen mouse mature oocytes after three-stepwise exposure treatments (1step, 3step and 5step) were observed. After choosing the 3step exposure treatment groups, we observed the morphological normality and fertilization, blastocyst formation rate of the vitrified and ultra-rapid frozen mouse mature oocytes. Results: The morphological normality and fertilization rates of the vitrified mouse mature oocytes after three-stepwise exposure treatments (1step, 3step and 5step) were 75%, 85%, 88% and 58%, 61 %, 54% respectively. There were no significant differences among treatments(p>0.05). The morphological normality and fertilization rate of the control was 92% and 65%. There were no significant differences in fertilization rate among control and treatments (p>0.05). The morphological normality and fertilization rates of the ultra-rapid frozen mouse mature oocytes after three-stepwise exposure treatments (1step, 3step and 5step) were 83%, 83%, 84% and 75%, 63%, 56% respectively. There were no significant differences among treatments (p>0.05). The morphological normality and fertilization rate of the control was 95% and 67%. There were no significant differences among control and treatments (p>0.05). The morphological normality and fertilization rate of the vitrified or ultra-rapid frozen mouse mature oocytes after 3step exposure treatment were 69% and 75%, respectively. The blastocyst formation rate was 60% and 57%. The results did not differ significantly between vitrification and ultra-rapid freezing (p>0.05). Conclusion: As known in the above results, there were no significant differences in the fertilization and blastocyst formation rate of the frozen-thawed mouse mature oocytes by vitrification or ultra-rapid freezing among the control and treatments. It is suggested that vitrification and ultra-rapid freezing method were effective for the cryopreservation of mouse mature oocytes.
Supercooling storage refers to lowering the product temperature below its freezing point without phase transition and has the potential to extend shelf life. Nevertheless, supercooled objects are in a thermodynamically unstable state, and nucleation can occur spontaneously. To achieve supercooling storage, slow cooling and insulation are essential. Hence, a stepwise algorithm for the supercooling storage of pork loins was designed and validated in this study. Pork loins were stored at 3℃, -18℃, and -3℃ (freezing), and supercooled for 16 days. All samples remained in a supercooled state and were unfrozen at the end of storage. Supercooled pork loins were superior in terms of drip loss, cooking loss, and water-holding capacity compared to frozen samples. Additionally, supercooling treatment prevented discoloration, increase of volatile basic nitrogen, and microbial growth. Thus, supercooling of pork loin was achieved using a stepwise program and was effective to maintain meat quality.
Kim, Gil Ah;Lee, Seung Tae;Lee, Eun Ju;Choi, Jung Kyu;Lim, Jeong Mook
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.22
no.3
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pp.343-349
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2009
This study was designed to simplify a cryopreservation program for embryonic stem cells (ESCs) by selection of cooling method and cryoprotectant. Commercially available mouse E14 embryonic stem cells (ESCs) were cryopreserved with various protocols, and morphology and viability of the frozen-thawed ESCs and their reactive oxygen species (ROS) production were subsequently monitored. Post-thaw colony-formation of ESCs was detected only after a slow freezing using dimethyl sulfoxide (DMSO) by stepwise placement of a freezing container into a $-80^{\circ}C$ deep freezer and subsequently into -$196^{\circ}C$ liquid nitrogen, while no proliferation was detected after vitrification. When the simplified protocol was employed, the replacement of DMSO with a mixture of DMSO and ethylene glycol (EG) further improved the post-thaw survival. ROS generation in ESCs frozen-thawed with the optimized protocol was not increased compared with non-frozen ESCs. The use of fresh mouse embryonic fibroblasts as feeder cells for post-thaw subculture did not further increase post-thaw cell viability. In conclusion, a simplified slow-freezing program without employing programmable freezer but using DMSO and EG was developed which maintains cell viability and colony-forming activity of ESCs during post-thaw subculture.
The possibility and effectiveness of cryopreservation was determined to assess survival rates and improve stock management of thawed embryos of Manila clam, Ruditapes philippinarum. The ideal freezing rates were designed and tested to allow cryoprotectants to equilibrate across the membrane during freezing. Survival rates ranging from 0 to 64.3% were obtained using a stepwise freezing protocol compared with 82.3% control rates. Embryos of Ruditapes philippinarum were equilibrated in 2 CPAs plus sea water for 10 min at 25℃ and then cooled at -1℃/min from 20℃ to -12℃. Straws containing more than 100 embryos were held at 12℃ for 5 min allowing equilibration after seeding and slowly cooled at 2℃/min. to -35℃ for 30 min for equilibration before quenching in liquid nitrogen. Dimethyl sulfoxide (DMSO) is the best cryoprotectant indicated for embryos of R. philippinarum with a survival rate of 64.3±3.28% in the presence of 2.0 M DMSO.
For the cryopreservation of human embryos this study was accomplished as a preliminary experiment. The purpose of this study is to obtain optimal cryoprotectant, addition and dilution method of cryoprotectant and cooling rate for raising survival of frozon and thawed 2-cell mouse embryos. Seeding was done at $-7^{\circ}C$ and the straw contained embryos was plunged at $-30^{\circ}C$ when the slow cooling was ended. Embryos those developed normally to blastocyst after in vitro culture for over 96 hours were regarded as survival ones. The survival was the rate of number of survival embryos against the recovered embryos. The results are followed : 1. The survivals were 6.3, 71.2 and 67.4% respectively, when Glycerol, DMSO and 1,2-Propanediol were used as cryoprotectant. 2. When sucrose was added in freezing solution, the survival was 69.0%. That was higher than the survival of embryos frozen without sucrose in freezing solution. The difference was not significant. 3. Addition and dilution of cryoprotectant by 4 stepwise raised the survival than by direct, but that was not significant. 4. When embryos were frozen by -0.3, -0.5 and $-1^{\circ}C/min$ before plunged into $LN_2$, the survivals were 67.9, 78.0 and 37.0% respectively. The differnce was significant.
In this study, a commercial production stepwise method for restorative rice with high quality and microbial safety was developed. The stepwise treatment method included steaming, refrigerated aging, and low temperature drying. The soaking rice was steamed twice at $90-100^{\circ}C$, and then, the rice was aged at $0-10^{\circ}C$, frozen at $-20^{\circ}C$, and dried at low temperatures with 5 m/s wind speed at $1-20^{\circ}C$ and 85% relative humidity. Applying the three steps improved sensory qualities compared with the conventional hot air drying and made storage at room temperature for 3 months possible. Specifically, the moisture content of the restorative rice was increased to 30%, which was 4.3 times higher than the 7% of the conventional air dried rice, and the rice grain shape was well maintained. The texture and appearance of the three-step rice were significantly improved (p<0.05) in a sensory evaluation.
Ha, A-Na;Yoon, Jin-Ho;Kim, Yu-Gon;Jo, A-Na;Lee, Kyeong-Rim;Kong, Il-Keun
Reproductive and Developmental Biology
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v.35
no.1
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pp.55-60
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2011
The objective of this study was carried out to evaluate the efficiency of sperm collection methods on the post-thaw viability of cat semen. The cat semen was collected by artificial virginal (AV) and electronic ejaculate (EE) methods. The composition of semen extender was consisted of Tris-buffer supplemented with 20% egg yolk and 1% P/S antibiotics in Ext I, and more added 8% glycerol, 1.0% Equex STM paste of total volume in Ext II. The collected semen was adjusted the concentration and then diluted in Ext I for optimal concentration. The diluted semen was cooling to $5^{\circ}C$ temperature in refrigerator for at least 2 hrs and then diluted stepwise with Ext II for at least 1 hrs. After an equilibration for 1 hrs, the cooled semen was packaged in 0.5 ml straw and then freezing on the $LN_2$ vapor over 5 cm above from $LN_2$ and then immersed directly in $LN_2$ for cryopreservation. The frozen semen was thawed in $38^{\circ}C$ water for 15 sec and then evaluated the motility, viability, and morphology. Post-thaw semen were calculated the motility by SMI (sperm motility index). The live-dead sperm was evaluated by Eosin-B and morphological evaluation was by Diff-quik kit staining. The post-thaw concentration ($89{\times}10^6$ /ml vs. $128{\times}10^6$ /ml), viability ($22.6{\pm}10.6%$ vs. $37.1{\pm}26.1%$), morphological normality ($27.0{\pm}50.2%$ vs. $45.6{\pm}123.0%$) of EE and AV groups were not significant different, but the post-thaw motility was significant lower in EE than that in AV group ($53.1{\pm}3.6$ vs. $73.6{\pm}5.7$) (p<0.05). In conclusion, semen collection methods did not significant different between EE and AV groups except of post-thaw motility and so both semen collection methods could be applied in feline semen collection methods.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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