• Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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• 제16권2호
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• pp.180-184
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• 2003

The intrauterine inseminator (IUI) was developed to provide the method of depositing dog semen into the uterine body instead of the vagina. The IUI consists of a vaginal endoscope, a balloon sheath, and injection catheter. When the endoscope is inserted into the vagina and the balloon expanded with air, the cervical os becomes visible so a injection catheter can be inserted through the cervix for deposition of the frozen-thawed semen. The efficacy of the IUI device was compared to intra-vaginal artificial insemination using semen that had been collected and frozen from pooled sperm-rich fraction of ejaculates collected from two Jindo dog donors. Aliquots of semen were extended with a Tris-egg yolk diluent, centrifuged, the seminal plasma removed, the pellet resuspended with the same diluent, and cooled to $5^{\circ}C$ over a 2 h period. A Tris-egg yolk-glycerol extender was added at $5^{\circ}C$; after 1 h, semen was loaded into 0.5 ml straws, and straws were frozen in LN vapor for 5 min, and immersed in LN for storage. The final sperm concentration for freezing was approximately $100{\times}10^{6}cells/ml$. The straws were thawed at $70^{\circ}C$ for precisely 6 sec, 1.5 ml Tris-egg yolk buffer at $38^{\circ}C$ added, and the 2 ml of thawed semen was used for a single insemination using the IUI device. Each bitch was inseminated at optimal insemination point, which was estimated by vaginal epithelial cells staining and progesterone concentration analysis. Use of the IUI device resulted in 21 of 26 females giving birth to 89 pups ($4.2{\pm}1.6$ pups per litter), while intra-vaginal AI resulted in 6 of 15 females whelping a total of 17 pups ($2.8{\pm}1.2$ pups per litter). We believe the IUI device is easier to use than previously described devices used for intrauterine insemination. In our experience the expansion of the balloon has a calming effect on the bitch that aids the inseminator. These results indicate that the IUI device was able to provide high fertility with 50 million frozen sperm per insemination and two inseminations.

• 한국가축번식학회지
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• 제26권1호
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• pp.9-16
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• 2002

돼지 인공수정센터에서 사육중인 인공수정용 종모돈을 이용하여 1995년부터 2000년까지 보존액 종류, 보존온도 및 보존기간에 따른 정액성상 변화와 번식성적을 조사하여 돼지 인공수정시 번식성적 향상과 실용화에 기여코자 본 연구를 실시하였다. 1. 돼지 액상정액의 보존액 종류에 따른 보존기간별 활력은 Androhep 보존액은 3일째부터, BTS 및 Modena는 5일째부터 현저하게 감소하는 경향을 보였고 (P＜0.05), pH변화는 6.24~7.06 범위에서 변이가 심하게 관찰되었으며 Androhep 보존액이 산도가 낮은 경향을 보였으나 전반적으로 규칙 적 인 경향을 나타내었다. 보존액 종류별 보존기간에 따른 분만율은 BTS, Modena 및 Androhep 보존액 모두 5일 보존까지 차이가 없었다. 보존액별 분만율은 Androhep 보존액이 BTS 보존액과는 차이가 없었으나 1일 보존과 5일 보존에서 Modena보존액 보다 우수하였다 (P＜0.05). 산자수는 보존 기간별 보존액간에 차이는 없었으나 Androhep 보존액은 3일 보존부터 산자수가 유의적으로 감소하였다 (P＜0.05). 2. 보존온도에 따른 액상정액의 운동성과 정상첨체 비율에서 17$^{\circ}C$ 보존정액의 운동성은 3일째부터, 정상 첨체율은 4일째부터 감소하였으나 5$^{\circ}C$ 보존정액은 4일 보존까지 정액성상의 변화가 크지 않은 것으로 나타났다. 17$^{\circ}C$에 보존한 액상정액이 5$^{\circ}C$에 보존한 것보다 분만율은 현저히 높았으나 산자수는 비슷한 경향을 보였고, 분만율은 보존 2일째부터 산자수는 3일째부터 감소하였다. 5$^{\circ}C$ 보존정액은 4일까지 분만율에 큰 변화가 없었으나 산자수는 다소 감소하는 경향을 보였다.

• Animal cells and systems
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• 제1권3호
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• pp.515-520
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• 1997

Male accessory glands and ejaculatory duct of Drosophila melanogaster are reproductive organs which synthesize secretory seminal proteins. Several products of these organs involved in egg laying, receptivity, and sperm stability or storage were isolated from their lumens. Despite their secretory process play an important role, exocytosis pathway in these organs is not well known. In the present study, we characterized secretory protein profiles and determined their secretory mechanisms. Eight accessory gland secretory proteins and two ejaculatory duct secretory proteins were detected in their lumens. All these proteins were constitutively synthesized in these organs and secreted to their lumens. Secretion of newly synthesized proteins initiated at about 1 h after synthesis, and reached the peak at 4 h after synthesis. It seems that secretion of the proteins may occur via constitutive exocytosis pathway.

• 한국양식학회지
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• 제10권3호
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• pp.273-279
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• 1997

자주복(Takifugu rubripes) 정자의 액상보존을 위한 기초자료를 얻고자, 수조사육한 전장 43.5-45.1 cm, 체중 1.7-2.0 kg의 2-3년생 자주복 수컷을 재료로 하여, 정자의 액상보존 효과를 연구하였다. 희석액으로 marine fish ringer solution과 1% NaCl을 사용하여 7일간 보존하였을 때, SAI와 정자의 생존율이 각각 1.7과 $59.0\pm1.5%,\;1.6$과$\;56.7\pm6.2%$로 가장 높았다. 정자를 3-5배로 희석하여 보존하였을 때, 가장 높은 SAI와 정자의 생존율을 보였으며, 보존온도로는 0- 5$^{\circ}C$가 적절하였다. SAI와 정자의 생존율을 높이기 위한 항생제로는 neomycin (800 ppm)이 효과적이었다.

• 한국수산과학회지
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• 제25권2호
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• pp.79-92
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• 1992

건국대학교 축산대학 부설 양어장에서 사육중인 50마리의 무지개 송어 수컷에서 채취된 정액을 각각 1989년 12월부터 1990년 12월까지 $-20^{\circ}C$와 $-40^{\circ}C$에서 1년 1989년 12월부터 2월까지 2개월동안 $-196^{\circ}C$인 액체질소탱크내에서 그리고 1990년 12월부터 2월까지 $-20^{\circ}C,\;-40^{\circ}C,\;-70^{\circ}C$에서 2개월 동안 동결보존후, $-13^{\circ}C$ 냉수에 해동시켜 20분간 원심분리기에서 정자를 분리시킨 다음 Tyrode 용액으로 50배 정도 희석시킨 후의 정자의 생존율 및 운동성과 신선한 난자와 인공수정시킨 후의 수정률 및 부화율을 조사한 결과는 다음과 같다. 동결보존전과 해동후의 정자의 생존율을 비교해 볼 때 전반적으로 생존전과 큰 차이 없이 생존율이 높게 나타났다. 3가지의 항동해제로 동결보존시킨 후 해동된 정자가 포함된 희석액으로 인공수정시킨 후의 수정률은 모두 $99\%$ 이상으로서 이러한 수치는 $99\%$ 이상을 나타내는 대조구와 차이가 없었고, $-20^{\circ}C,\;-40^{\circ}C,\;-70^{\circ}C$\;-196^{\circ}C와 같이 서로 다른 온도에서도 수정률은 대조구와 큰 차이 없이 나타났다. 1M의 DMSO의 항동해제로 $-196^{\circ}C$에서 2개월 동안 동결보존시킨 후 해동된 정자가 포함된 희석액으로 인공수정시킨지 24일 이후의 수정률 및 부화율은 BSA가 포함된 희석액이 각자 $96\%$ 및 $8\%$ 이고, 포함되지 않은 희석액은 각각 $98\%,\;10\%\;$로서 BSA가 포함되지 않은 경우에서 부화율이 약간 높게 나타났다. 1M DMSO의 항동해제로 2개월동안 동종보존시킨 후 해동된 정자가 포함된 희석액으펄 인공수정 시킨지 24일 이후의 부화율은 각각 $-196^{\circ}C$에서 $10\%,\;-40^{\circ}C$에서 $34\%,\;-70^{\circ}C$에서 $35\%$로 나타났다. 1M의 methanol의 항동해제 동결보존시친 후 해동된 정자가 포함된 희석액으로 인공수정시킨지 24일 이후의 부화율은 각각 $-20^{\circ}C$에서 $22\%,\;-70^{\circ}C$에서 $28\%$로 나타났다. 1M glycerol의 항동해제로 동결보존시킨 후 해동된 정자가 포함된 희석액으로 인공수정시킨지 24일 이후의 부화율은 각각 $-20^{\circ}C$에서 $22\%,\;-70^{\circ}C$에서 $33\%$로 나타났다. 1.5M DMSO의 항동제로 2개월동안 동결보존 시킨 후 해동된 정자가 포함된 희석액으로 인공수정시킨지 24일 이후의 부화율은 각각 $-20^{\circ}C$에서 $27\%,\;-40^{\circ}C$에서 $36\%,\;-70^{\circ}C$에서 $35\%$로 나타났다. 1.5M glycerol의 항동해제로 2개월동안 동결보존시킨 후 해동된 정자가 포함된 희석액으로 인공수정시킨지 24일 이후의 부화율은 각각 $-20^{\circ}C$에서 $34\%,\;-40^{\circ}C$에서 $31\%,\;-70^{\circ}C$에서 $31\%$로 나타났다. 1.5M methane의 항동해제로 2개월동안 동결보존시킨후 해동된 정자가 포함된 희석액으로 인공수정시킨지 24일 이후의 부화율은 각각 $-20^{\circ}C$에서 $28\%-40^{\circ}C$에서 $29\%-70^{\circ}C$에서 $28\%$로 나타났다. 신선한 정자의 중편부는 2본의 중앙섬유소, 9본의 외측조대섬유, 미토콘드리아초로 구성되어 있다. 동결보존시 정자는 편모의 구부러짐, 정자경부의 핵막의 이탈, 핵내용물이 유출되는 손상을 입었다.

• 대한수의학회지
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• 제30권4호
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• pp.361-371
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• 1990

The present observations were focussed mainly on the morphological findings of the utero-vaginal(U-V) glands in normal laying domestic hens and the storage of cock spermatozoa in the U-V glands at various times after artificial insemination(AI). These domestic hens were assigned to three group of PMS-treated, GnRH-treated before last AI, and control group. The hens were sacrified at intervals of 1,3,7,12 and 19 days after AI. Histological sections of U-V junctions were prepared and the morphological structures of the U-V glands were observed and then were scored about the spermatozoa presence in the U-V gland. 1. The U-V glandular tubules were mostly unbranched with single columnar epithelium. Also these tubules were occassionally observed as one circular-rotated tubules or 2 to 3 branched convoluted tubules in special shapes. The numbers of the convoluted curves per tubule were $4.3{\pm}3.3$ and the ranges of convoluted curve number were straight to 16 curves. 2. The inside and outside diameters of the glandular tubules were $6.5{\pm}3.5{\mu}m$, and $35.2{\pm}4.7{\mu}m$, respectively, and the tubular lengths of the U-V glands were $219.3{\pm}115.7{\mu}m$. 3. Storaged spermatozoa in the U-V glands of all three group hens were intensively stained by hematoxylin, and packed in tight, longitudinally parallel bundles within the tubules. In addition, numbers of completely spermatozoa-filled glands were tend to increase or decrease in proportion to the numbers of partially spermatozoa-filled glands. Also U-V glands containing spermatozoa tend to be present collectively in the any zone of U-V junction. 4. In the control group, the numbers of glands containing spermatozoa in the hens at 1,3,7,12, and 19 days after AI were found to be 22.9, 33.3, 35.8, 8.6, and 0% respectively. 5. In the PMS-treated group, the numbers of glands containing spermatozoa in the hens at 1,3,7,12, and 19 days after AI were found to be 33.6, 29.7, 26.8, 8.2 and 0% respectively. 6. In the GnRH-treated group, the numbers of glands containing spermatozoa in the hens at 1,3,7,12, and 19 days after AI were found to be 19.7, 40.8, 20.4, and 0% respectively.

• Applied Microscopy
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• 제29권2호
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• pp.241-253
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• 1999

북부 온대지방에 서식하는 박쥐는 그 대부분이 동면을하며, 그 생식유형은 특이하여 가을에 교미하여 사정된 정자는 자성생식도내에 긴 동면기간 동안 저장되어 있는 것으로 알려져 있다(예: 한국큰관박쥐). 환언하면 저장되어 있던 정자는 이듬해 봄에 배란되는 난자와 수정하여 초여름에 출산하게 된다. 본 연구는 월동하는 정자 두부 Plasma membrane의 성분과 활성 등 형태적 및 기능적 특성을 관찰 분석함으로써, 인공임신율을 높일 수 있는 보다 효과적인 한냉온도 정자저장방법을 모색하기 위하여 시도되었다. 동면하는 한국큰관박쥐와 햄스타 및 비동면동물(마우스)의 정자 Plasma membrane이, 실온과 한냉온도(박쥐-동면온도)에서, 생존율, 첨체반응을, 단백질분포, 능동수송에 관여되는 효소$(Na^+-K^+-ATPase)$의 활성 및 주사전자현미경적 조직화학상을 분석하였다. 본 연구에서 얻은 실험결과에 의거하면, 동면동물인 한국큰관박쥐와 햄스타 및 비동면동물인 마우스 정자의 생존율과 첨체반응율은, 실온과 한냉(박쥐-동면)온도간에 의의있는 차이를 발견할 수 없었고, 단백질 분포와 $Na^+-K^+-ATPase$ 효소활성 및 주사전자현미경적 조직화학적 소견에 있어서도 두 온도간에 의의있는 차이는 없었다. 이와 같이 실온과 한냉온도 간에 형태적 기능적 차이가 없다고 하는 사실은, 동면동물이든 비동면동물이든 Spermatozoa plasma membrane이 동면중 또는 동면 이후에 안정적인 수정을 보장해 주는 형태적 및 기능적 보호구조임을 시사해 준다.

• Journal of Animal Science and Technology
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• 제50권1호
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• pp.45-56
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• 2008

본 연구는 생후 발달 과정 동안 monocarboxylate transporter(MCT) isoform과 MCT의 발현 조절 단백질로 알려진 basigin(Bsg)과 embigin의 mRNA 발현을 흰쥐의 부정소에서 부위별로 real-time PCR 방법을 사용하여 알아보았으며, 에스트로젠과 에스트로젠 수용체 α의 작용에 의해 MCT1 발현이 조절되는지를 알아보기 위해 estrogen receptor α knockout(αERKO) 마우스를 이용하여 immunohistochemistry 방법을 통해 탐구하였다. 본 연구 결과는 다양한 MCT isoform(MCT1, 2, 3, 4와 8), Bsg과 embigin의 mRNA 발현이 부정소의 부위별로 연령에 따라 다르게 나타나며, 부정소에서 MCT1 단백질 발현은 corpus와 caudal 부위에서 apical 지역에 한정되어 나타나는 것을 보여 주었다. 또한 부정소에서 MCT1 단백질 발현은 에스트로젠 수용체 α의 존재 여부와 상관 없음이 보여졌다. 따라서, 본 연구는 MCT가 남성 생식기관인 부정소에서 정자 성숙과 저장을 위한 적절한 환경을 형성함으로써 남성 생식력의 유지에 관여 할 수 있음을 시사한다. (색인어 : Epididymis, Monocarboxylate transporter, Basigin, Embigin)

• 한국발생생물학회지:발생과생식
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• 제19권4호
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• pp.197-207
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• 2015

This study investigated structure and function of the reproductive system in Aplysia kurodai by means of anatomical, histological, and histochemical observation. Reproductive system of this species is consisted of ovotestis, small hermaphroditic duct, ampulla, accessory genital mass and large hermaphroditic duct. The ovotestis is composed of a large number of follicles, and both oocytes and spermatocytes matured in the same follicle. The small hermaphroditic duct is a single tube and contains a swelling, the ampulla, which functions as a storage organ for endogenous sperm and an oviduct. The accessory genital mass is connected to both the small and large hermaphroditic duct, and consisted of three glands: albumen, membrane (winding) and mucus gland. The albumen gland is consisted of granular cells producing basophilic and neutral mucopolysaccharides. The membrane and mucus gland are consisted of granular cells producing acidophilc and sulfated mucopolysaccharides. The large hermaphroditic duct is a single tubular gonoduct linking the accessory genital mass to the common genital aperture but is consisted of two parallel compartments. Internally, these two compartments are incompletely divided by internal septum or fold, which are called as the red hemiduct and white hemiduct, respectively. The red hemiduct functions as an oviduct and the white hemiduct functions as a copulatory duct. The reproductive system of A. kurodai is externally comprised a single tube, i.e., monaulic type. However, internal structure of duct is incompletely divided into oviduct and copulatory duct, i.e., the oodiaulic type.

• 한국가축번식학회지
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• 제7권2호
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• pp.57-71
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• 1983

1. Diluted chicken semen can be preserved at 2 to 5$^{\circ}C$ for 24 to 48 hr with resultant fertility of greater than 90% of that of fresh semen. Turkey semen can be preserved at 10 to 15$^{\circ}C$ for 6 to 24 hr and provide economical fertility. 2. Frozen chicken semen has given variable results; a 21 to 93% fertility ranges as compared to 92 to 94% expected with fresh semen. Highest fertility levels obtained with frozen turkey semen intravaginally inseminated have been 61 and 63% using DMSO and glycerol, respectively, as cryoprotectants. 3. The use of glycerol as a cryoprotectant reauires that its concentration in semen be reduced to less than 2% either by dialysis or centrifugation after thawing and before intravaginal insemination if optimal fertility is to be obtained. 4. The temperature at which cryoprotectants are added to semen and the time allowed for equilibration are important for subsequent fertility pre- and post-freezing. 5. The type of container used for packaging the semen, freeze or cooling rates, thaw rates and level of cryoprotectant all interact in affecting cell survival. 6. Plastic freeze straws as a packaging device for semen offers the following advantages: easy to handle, require minimal storage space, offer a wide range of freeze and thaw rates, and insemination can be made directly from them upon thawing. 7. Controlled slow cooling rates of 1 to 8$^{\circ}C$/min have thus far provided the best results for cooling chicken semen throught the transition phase change (liquid to solid) or critical temperature range of ＋5 to -20 or -35$^{\circ}C$. 8. Highest fertilities have been achieved with frozen chicken semen where a slow thaw rate (2。 to 5$^{\circ}C$) has been used regardless of the freeze rate. 9. To maintain a constant high level of fertility throughout a breeding season with frozen semen, a higher absolute number of spermatozoa must be inseminated (2 to 3 times as many) as compared to fresh semen since a, pp.oximately 50% are destroyed during processing and freezing. 10. The quality of semen may vary with season and age of the male. Such changes in sperm quality could be accentuated by storage effects. Thus, the correct number of spermatozoa may very well vary during the course of a breeding period. 11. As to time of insemination, it is best to avoid inseminating chicken hens within 1-2 hr after or 3-5 hr before oviposition; and turkey hens during or 7-10 hr before oviposition. 12. The physiological receptiveness of the oviduct at the time of insemination is a very important biological factor influencing fertility levels throughout the breeding season.