This study aimed to develop strain-specific polymerase chain reaction (PCR) primers to detect Fusobacterium hwasookii KCOM 1249T, F. hwasookii KCOM 1253, F. hwasookii KCOM 1256, F. hwasookii KCOM 1258, and F. hwasookii KCOM 1268 on the basis of nucleotide sequences of a gene specific to each strain. The unique genes for each F. hwasookii strain were determined on the basis of their genome sequences using Roary. The strain-specific PCR primers based on each strain-specific gene were designed using PrimerSelect. The specificity of each PCR primer was determined using the genomic DNA of the 5 F. hwasookii strains and 25 strains of oral bacterial species. The detection limit and sensitivity of each strain-specific PCR primer pair were determined using the genomic DNA of each target strain. The results showed that the strain-specific PCR primers correspond to F. hwasookii KCOM 1249T, F. hwasookii KCOM 1253, F. hwasookii KCOM 1258, F. hwasookii KCOM 1256/F. nucleatum subsp. polymorphum KCOM 1260, or F. hwasookii KCOM 1268/Fusobacterium sp. oral taxon 203 were developed. The detection limits of these strain-specific PCR primers ranged from 0.2 to 2 ng of genomic DNA for each target strain. The results suggest that these strain-specific PCR primers are valuable in quality control for detecting specific F. hwasookii strains.
Lin-Ling, Chen;Zhang, Jia;Sommer, Steve S.;Li, Kai
BMB Reports
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제38권1호
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pp.24-27
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2005
The role of 3' exonuclease excision in DNA polymerization was evaluated for primer extension using inert allele specific primers with exonuclease-digestible ddNMP at their 3' termini. Efficient primer extension was observed in amplicons where the inert allele specific primers and their corresponding templates were mismatched. However, no primer-extended products were yielded by matched amplicons with inert primers. As a control, polymerase without proofreading activity failed to yield primer extended products from inert primers regardless of whether the primers and templates were matched or mismatched. These data indicated that activation was undertaken for the inert allele specific primers through mismatch proofreading. Complementary to our previously developed SNP-operated on/off switch, in which DNA polymerization only occurs in matched amplicon, this new mutation detection assay mediated by $exo^+$ DNA polymerases has immediate applications in SNP analysis independently or in combination of the two assays.
This study aimed to develop Lautropia mirabilis-specific quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR) primers based on the sequence of DNA-directed RNA polymerase subunit beta gene. The PrimerSelect program was used in designing of the qPCR primers, RTLam-F4 and RTLam-R3. The specificity of the qPCR primers were performed by conventional PCR with 37 strains of 37 oral bacterial species, including L. mirabilis. The sensitivity of the primers was determined by qPCR with the serial dilution of purified genomic DNA of L. mirabilis KCOM 3484, ranged from 4 ng to 4 fg. The data showed that the qPCR primers could detect only L. mirabilis strains and as little as 40 fg of genome DNA of L. mirabilis KCOM 3484. These results indicate that this qPCR primer pair (RTLam-F4/RTLam-R3) may be useful for species-specific detection of L. mirabilis in epidemiological studies of oral bacterial infectious diseases such as periodontal disease.
Prevotella intermedia-specific quantitative real-time PCR (qPCR) primers were previously designed based on the nucleotide sequences of RNA polymerase ${\beta}$-subunit gene (rpoB). However, the several clinical strains isolated from Korean populations are not detectable by the qPCR primers. The purpose of this study was to develop new P. intermedia-specific qPCR primers based on the rpoB. The specificity of the primers was determined by conventional PCR with 12 strains of P. intermedia and 52 strains (52 species) of non-P. intermedia bacteria. The sensitivity of primers was determined by qPCR with serial dilutions of the purified genomic DNAs (40 ng to 4 fg) of P. intermedia ATCC $25611^T$. The data indicated that only P. intermedia strains were detected by the P intermedia-specific qPCR primers (RTPiF2/RTPiR2); in addition, as little as 40 fg of P. intermedia genomic DNA could be detected. These results suggest that these qPCR primers are useful in detecting P. intermedia from the bacterial infectious lesions including dental plaque and oral tissue lesions.
We developed a sensitive, nested reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) to detect Hantaan, Seoul, Belgrade, Puumala and Sin Nombre viruses in animal tissues. Total RNA was extracted from blood, lung or kidney samples of experimentally-infected hamsters by using the guanidine isothiocyanate buffer-acid phenol-chloroform method. Genus-reactive outer primers were derived from the consensus region of the G1 gene sequences of several hantaviruses. Serotype-specific primers were selected within the region amplified by the outer primers. To examine the sensitivity and specificity of the test, we diluted known quantities of Hantaan, Seoul, Belgrade, Puumala and Sin Nombre viruses in human or hamster immune sera before performing the nested RT-PCR. We could detect as little as 1 pfu of virus, even in the presence of high-titer neutralizing antibodies, and the serotype-specific primers amplified only homologous serotype viruses. RT-PCR with these primers demonstrated virus in the blood of experimentally-infected hamsters as early as four days to as late as 30 days after infection. A comparison of a standard immunofluorescent antibody screening test (IFAT) to nested RT-PCR with RNA extracted from lung or kidney tissues of the hamsters, demonstrated that RT-PCR to be more sensitive for identifying viruses in these tissues.
This study was undertaken to develop species-specific forward and universal reverse PCR primers for the detection of Streptococcus sobrinus. These primers target the variable regions of the 16S ribosomal RNA coding gene (rDNA) and their specificity was tested against 10 strains of S. sobrinus strains and 20 different species of oral bacteria using serial dilutions of the purified genomic DNA of S. sobrinus ATCC $33478^T$. Our data show that species-specific amplicons were obtained from all the S. sobrinus strains tested but not from other species. Both direct and nested PCR could detect as little as 400 pg and 4 fg of genomic DNA from S. sobrinus ATCC $33478^T$, respectively. This result suggests that these PCR primers are highly specific and sensitive and applicable to the detection of S. sobrinus.
Kim, Min-Jung;Min, Jeong-Bum;Lim, Sun-A;Kook, Joong-Ki
International Journal of Oral Biology
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제36권2호
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pp.79-82
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2011
The aim of this study was to develop Prevotella intermedia ATCC 49046-specific PCR primers designed based on the nucleotide sequence of a DNA probe Pig28. The strainspecificity of the PCR primers, Pig28-F1/Pig28-R1, was confirmed with 9 strains of P. intermedia and 25 strains (15 species) of Prevotella species. The detection limit of the PCR primers was 2 pg of the purified genomic DNA of P. intermedia ATCC 49046. These PCR primers were found to be useful for identifying P. intermedia ATCC 49046, particularly for determining the authenticity of the strain.
In a previous study, Peptoniphilus mikwangii was isolated from the human oral cavity as a new species. The purpose of this study was to develop P. mikwangii-specific PCR primers. The PCR primers were designed, based on the nucleotide sequence of 16S ribosomal RNA (16S rDNA). The specificity of the primers was tested using genomic DNAs of 3 strains of P. mikwangii and 27 strains (27 species) of non-P. mikwangii bacteria. The sensitivity of primers sensitivity was determined using PCR, with serial dilutions of the purified genomic DNAs (4 ng to 4 fg) of P. mikwangii KCOM $1628^T$. The data showed that P. mikwangii-specific qPCR primers (B134-F11/B134-R1 & B134-F5/B134-R5) could detect only P. mikwangii strains, and 400 fg or 40 fg of P. mikwangii genome DNA. These results suggest that PCR primers are useful in detecting P. mikwangii from the oral cavity.
Park, Jun-Hyung;Park, Hee-Kyung;Song, Eunsil;Jang, Hyun-Jung;Kang, Byeong-Chul;Lee, Seung-Won;Kim, Hyun-Jin;Kim, Cheol-Min
한국생물정보학회:학술대회논문집
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한국생물정보시스템생물학회 2005년도 BIOINFO 2005
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pp.399-401
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2005
MIPROBE is a web-based tool for design of universal, genus-specific, and species-specific primers and probes. The main functions of MIPROBE are collection of target gene sequences, construction of consensus sequences, collection of candidate primers and probes, and evaluation of candidates by BLAST. Biologists with little computer skills can easily use MIPROBE to design large-scale universal, genus-, and species-specific primers and probes. This software is available at http://www.miprobe.com. Also detailed descriptions of how to use the program are found at this site.
Blue mold in citrus is caused by Penicillium italicum. In this study, the P. italicum-specific primers were developed for rapid detection based on the conserved genes RPB1 and RPB2 among Penicillium genomes. The two primer pairs RPB1-a and RPB1-b proved to be specific to detect P. italicum. The PCR assay among 39 fungal isolates and the colonial, pathogenic morphologies and molecular methods validated the specificity and reliability of these two primer pairs. This report provided a method and P. italicum-specific primers, which might greatly contribute to citrus postharvest industry.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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