In a previous paper, the ogdH gene that encodes 2-oxoglutarat dehydrogenase was isolated from Salmonella typhimurium. The catalytic N-terminal region in the enzyme was found to be very specific for the Salmonella species. Therefore, the aim of the present study was to detect S. typhimurium in food sources using primers designed for OGDH-l and OGDH-2 which were based on the salmonella-specific region of the ogdH gene. A simple polymerase chain reaction (PCR) detection method was developed to detect low numbers of S. typhimurium in a chicken meat microbial consortium. Using the ogdH-specific primers under stringent amplification conditions and for gene probe analysis, fewer than 100 colony-forming units (CFUs) were detectable when pure cultures were employed. When the PCR assay was run on S. typhimurium-contaminated meat contents, only the positive meat samples containing as few as 200 CFUs reacted to the assay. The method employed for sample processing is simple and it was determined to provide a sensitive means of detecting trace amounts of S. typhimurium-specific sequences in the presence of mixed meat microbial populations. When compared with six representative intestinal gram-negative bacterial strains in foods, including Vibrio parahaemolyticus, V. vulnificus, Enterobacter cloacae, E. coli O157:H7, Pseudomonas aeruginosa, and Proteus sp., S. typhimurium had a unique and distinct PCR product (796 bp). In conclusion, the two OGDH primers were found to be rapid and sensitive detectors of Salmonella spp for the PCR method.
Garlic generally becomes coinfected with several types of viruses belonging to the Potyvirus, Carlavirus, and Allexivirus genera. These viruses produce characteristically similar symptoms, they cannot be easily identified by electron microscopy (EM) or immunological detection methods, and they are currently widespread around the world, thereby affecting crop yields and crop quality adversely. For the early and reliable detection of garlic viruses, virus-specific sets of primers, including species-specific and genus-specific primers were designed. To effectively detect the twelve different types of garlic viruses, primer mixtures were tested and divided into two independent sets for multiplex polymerase chain reaction (PCR). The multiplex PCR assays were able to detect specific targets up to the similar dilution series with monoplex reverse transcription (RT)-PCR. Seventy-two field samples collected by the Gyeongbuk Agricultural Technology Administration were analyzed by multiplex RT-PCR. All seventy two samples were infected with at least one virus, and the coinfection rate was 78%. We conclude that the simultaneous detection system developed in this study can effectively detect and differentiate mixed viral infections in garlic.
Kim Hwa-Sook;Song Soo Keun;Yoo So Young;Jin Dong Chun;Shin Hwan Seon;Lim Chae Kwang;Kim Myong Soo;Kim Jin-Soo;Choe Son-Jin;Kook Joong-Ki
Journal of Microbiology
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v.43
no.4
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pp.331-336
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2005
The objective of this study was to assess the strain-specificity of a DNA probe, Fu12, for Fusobacterium nucleatum subsp. nucleatum ATCC $25586^T$ (F. nucleatum ATCC $25586^T$), and to develop sets of strain-specific polymerase chain reaction (PCR) primers. Strain-specificity was tested against 16 strains of F. nucleatum and 3 strains of distinct Fusobacterium species. Southern blot hybridization revealed that the Fu12 reacted exclusively with the HindIII-digested genomic DNA of F. nucleatum ATCC $25586^T$. The results of PCR revealed that three pairs of PCR primers, based on the nucleotide sequence of Fu12, generated the strain-specific amplicons from F. nucleatum ATCC $25586^T$. These results suggest that the DNA probe Fu12 and the three pairs of PCR primers could be useful in the identification of F. nucleatum ATCC $25586^T$, especially with regard to the determination of the authenticity of the strain.
URP primers of 20 mer derived from repetitive sequence of rice were used to assess genetic variation of oyster mushroom consisting of 10 cultivars of Pleurotus ostreatus, two cultivars of P. florida and two cultivars of P. sajor-caju which were registered in Korea. URP2F and URP38F primers produced cultivar-specific PCR polymorphic bands in the Pleurotus species. UPGMA cluster analysis using the URP-PCR data showed that 14 Pleurotus cultivars are genetically clustered into large three groups. The URP-PCR data provided important information for more efficient breeding strategies of Pleurotus cultivars.
A technique based on the polymerase chain reaction (PCR) for the specific detection of genus Phytophthora and Phytophthora cryptogea-P. drechsleri complex group was developed using nucleotide sequence information of ribosomal DNA (rDNA) regions. The internal transcribed spacers (ITS) including 5.8S were sequenced for P. cryptogea-P. drechsleri complex group and its related species. Two pairs of oligonucleotide primers were designed. Primer pair ITS1/Phy amplified ca. 240 bp fragment in 12 out of 13 specie of Phytophthora, but not in Pythium spp., Fusarium spp.and Rhizoctonia solani. Primer pair rPhy/Pcd amplified 549 bp fragment only in P. cryptogea-P. drechsleri complex group, but not in other Phytophthora spp.and other genera. Specific PCR amplification using the primers was successful in detecting Phytophthora and P. cryptogea-P. drechsleri complex group in diseased plants.
An oligonucleotide array was developed to detect and genotype mollicutes based on the internal transcribed spacer (ITS) sequence. The results of the assay were compared with those of a PCR-RFLP assay. The proposed oligonucleotide array containing 5 genus- and 23 species-specific probes was able to detect Mycoplasma species, including M. penetrans and M. spermatophilum, that were not detected by the PCR-RFLP assay. Therefore, the results demonstrated that the proposed oligonucleotide array was effective for the detection and discrimination of 23 species, including an acholeplasma, 21 mycoplasmas, and a ureaplasma, and showed promise as a countermeasure to ensure that biological products are safe and of good quality.
Kim, Jae-Hwan;Ahn, Ji-Hye;Song, Hee-Sung;Kim, Kyung-Hwan;Kim, Dong-Hern;Kim, Hae-Yeong
Applied Biological Chemistry
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v.49
no.3
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pp.192-195
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2006
For the development of a qualitative PCR detection method for genetically modified perilla (Perilla frutescens), perilla species-specific gene, KAS-I (Beta-ketoacyl-ACP synthase I), was selected and validated as suitable for the use as an endogenous reference gene in perilla. Primer specificity was first tested by the means of qualitative PCR analysis. The primer pair Pfru3-F/R amplifying the perilla endogenous gene, KAS-I, gave rise to an amplicon 95 bp. No amplified product was observed when DNA samples from 15 different plants were used as templates. Qualitative PCR detection method was assayed with vitamin E-enriched GM Perilla developed in Korea. For the qualitative PCR detection method, the construct-specific detection primer pairs were constructed. The primer pair TMTO-F/R amplifying the junction region of TMT (${\gamma}$-tocopherol methyltransferase) gene and OCS (Octopine synthase) terminator introduced in GM perilla gave rise to an amplicon 148 bp.
A randomly amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis was used to identify the species- and population-specific markers of abalone; Haliotis asinina, H. ovina, and H. varia in Thai waters. Fifteen species-specific and six population-specific RAPD markers were identified. In addition, an 1650 bp band (UBC195) that was restricted to H. ovina from the Gulf of Thailand (east) was also found. All of the specific RAPD markers were cloned and sequenced. Twenty pairs of primers were designed and specificity-tested (N = 12 and 4 for target and non-target species, respectively). Seven primer pairs (CUHA1, 2, 4, 11, 12, 13, and 14) were specifically amplified by H. asinina DNA, whereas a single pair of primers showed specificity with H. ovina (CUHO3) and H. varia (CUHV1), respectively. Four primer pairs, including CUHA2, CUHA12, CUHO3, and CUHV1, were further examined against 216 individuals of abalone (N = 111, 73, and 32, respectively). Results indicated the species-specific nature of all of them, except CUHO3, with the sensitivity of detection of 100 pg and 20 pg of the target DNA template for CUHA2 and CUHA12 and CUHV1, respectively. The species-origin of the frozen, ethanol-preserved, dried, and boiled H. asinina specimens could also be successfully identified by CUHA2.
RAPD analysis was performed from four host-specific toxin (HST) producing Alternaria, i.e., A. kikuchiana, A. mali, a. longipes and A. Longipes and A. alternata f. sp. lycopersici, nonpathogenic A. alternata and A. brassicicola to assess their phylogenetic relationship. DNA polymorphism was detected among species (pathotypes) of HST producing Alternaria by PCR amplification and differentiation of the species was recognized by RAPD analysis. Primer OPA-02 was the most profitable among 7 notificated primers for differentiation of the HST producing Alternaria species. UPGMA analysis of the RAPD bands from alternaria spp. revealed that HST producing Alternaria and nonpathogenic a. alternata are closely related.
Genomic DNA isolated from two Porphyra species, P. tenera and P. dentate from Wando located on the southern coast of Korean peninsula was amplified by PCR reaction. The amplified products were separated by agarose gel electrophoresis (AGE) with decamer primer and stained with ethidium bromide. The eight arbitrarily selected primers OPA-04, OPA-06, OPB-01, OPB-08, OPB-10, OPB-11, OPB-14 and OPC-10 generated the shared loci, polymorphic, and specific loci. The size of DNA bands varies from 100 bp to 2,200 bp. The complexity of the banding patterns varies dramatically between the primers and two Porphyra species. A total of 528 loci observed were identified in P. tenera and 443 in P. dentata: 22 polymorphic loci (4.2%) in P. tenera and 30 (6.8%) in P. dentata. 154 shared loci observed, the average 19.3 per primer, were identified in P. tenera and 143 loci, the aver-age 17.9 per primer, in P. dentata species. The number of specific loci in P. tenera and P. dentata was 73 and 77, respectively. The average bandsharing value was $0.623{\pm}0.008$ with P. tenera and $0.560{\pm}0.009$ within P. dentata. The average bandsharing value between two Porphyra species was $0.408{\pm}0.004$, ranged from 0.305 to 0.564. The dendrogram obtained by the eight primers indicates four genetic clusters. The genetic distance between two Porphyra species ranged from 0.076 to 0.627. The individual no. 02 of P. tenera was genetically closely related to no. 01 of P. tenera(genetic distance=0.082). Especially, two entities between the individual DENTATA no.21 and DENTATA no. 19 of P. dentata showed the longest genetic distance (0.627) in comparison with other individuals used. In this study, RAPD-PCR analysis has revealed the significant genetic distance between two Porphyra species pairs (P<0.001).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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