Somatic embryogenesis is as an excellent technology for potential use in plant mass production, germplasm conservation, or genetic engineering. We examined the effect of cold storage using 3 embryogenic callus lines with different levels of embryogenesis competence derived from immature zygotic embryo cultures of Kalopanax setemlobus. Somatic embryo induction, germination and plant conversion were evaluated after 1, 3 and 6 months storage at $4^{\circ}C$ in the dark. Most cold-stored embryogenic calli formed somatic embryos normally even after 6 months; however, the induction rate was gradually decreased by increasing the storage period. The most competent line tended to show a slight decline in somatic embryo induction rate, as compared with other lines after cold storage. In general, cold storage resulted in reduced somatic embryo germination and plant regeneration, although 93% somatic embryo germination and 91% plant conversion were achieved regardless of the storage period. Cold storage led to cell browning and degradation. Additionally, the cell structures were confirmed by the aceto-carmine and evans blue dye evaluation. Collectively, our results showed that embryogenic callus of K. septemlobus could be preserved at $4^{\circ}C$ without subculture for 6 months, and suggested the need for storage of relatively more competent embryogenic calli lines to support somatic embryo induction.
Kim, Young Jin;Park, Tae Il;Kim, Hyun Soon;Park, Ho Ki;Chon, Sang Uk;Yun, Song Joong
Journal of Plant Biotechnology
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v.6
no.1
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pp.45-50
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2004
Somatic embryos were induced from immature cotyledons and cultured on a MS medium containing 40mg/L 2,4-D. The maximum induction of embryos was obtained from immature cotyledons in a size of 3-4mm, and the highest frequency was obtained in the induction medium at pH 7.0. For embryo development, embryogenic tissues were transferred to a MSM6AC and MSM6 media. Developing embryos were placed at 27$^{\circ}C$with dim light (20$\mu$$molm^{-2}$$s^{-1}$) provided by cool fluorescent tubes (3-D wavelength light is better than standard light). Somatic embryos were clearly developed from globular stage to cotyledonary stages. The color of embryo may be a useful parameter for estimation of embryo quality. When the embryo becomes mature, embryo will be ready for desiccation in order to induce roots and shoots of embryos.
Excised cotyledon segments of ginseng zygotic embryos at various developmental stages were cultured on MS basal medium from which somatic embryos were directly induced. The frequency of somatic embryo formation on the segments declined with the advancing zygotic embryo maturity. All of the cells in the cotyledons of immature zygotic embryos were smaller and more densely cytoplasmic than those in mature embryos. Histological examinations revealed that the poly-somatic embryos formed on immature embryos were of multi-cell originand derived from the epidermal and subepidermal cell layers. However, in the cotyledon of germinating zygotic embryos, only theepidermal cells were densely cytoplasmic and singularly competent to develop into somatic embryos resulting into single embryos at a frequency of 100%.
Effective plant regeneration from immature cotyledons of soybean [Glycine max (L.) Merr.] cultivars was achieved via somatic embryogenesis. Somatic embryogenesis was performed with the cotyledons of immature embryos 14-20 d after flowering. Immature cotyledons of cv. Whangkeum were placed abaxial or adaxial side down on modified MS medium containing 20mg/L 2,4-D. The greatest number of somatic embryos, 1.2 per cotyledon, was produced from those of 4.0-4.9 mm in length which had been placed abaxial side down. Among cvs. Pecking, Whangkeum and Baekwoon, Pecking had the highest embryo induction efficiency with 4.3 somatic embryos per cotyledon in 20mg/L 2,4-D treatment and with 1.0 embryo per cotyledon in 8mg/L NAA treatment. Germinable globular somatic embryos were induced with the highest efficiency, 27.6%, in 20mg/L 2,4-D and were proliferated efficiently on liquid medium containing 10mg/L 2,4-D. The globular somatic embryos developed into germinable mature somatic embryos on medium containing 10 $\mu$M CoCl2, 9% sucrose, and 0.5% activated charcoal. These mature somatic embryos germinated on hormone-free mediu. After transfer to the soil, regenerated plants with seeds were obtained.
Van, Kyu-Jung;Jang, Hyun-Ju;Jang, Young-Eun;Lee, Suk-Ha
Journal of Crop Science and Biotechnology
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v.11
no.2
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pp.119-126
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2008
Since somatic embryogenesis combined with ethylmethane sulfonate(EMS) treatments is the most efficient technique for mutagenesis, the embryogenic capacity of four soybean cultivars was evaluated at different EMS concentrations, treatment times, and preculture durations. Two to 4 mm long immature cotyledons were placed in induction medium after EMS treatment, and the numbers of somatic embryos formed per explant were counted four weeks after culture initiation. We observed genotypic differences in the efficiency of somatic embryogenesis from immature embryos among four cultivars treated with different concentrations of EMS for six hours. Cultivars, Sinpaldalkong 2 and Jack, displayed highly efficient somatic embryogenesis regardless of EMS concentration, whereas very low efficiency or no survival was observed in Jinju 1 and Iksannamulkong cultivars. Preculture duration did not influence the efficiency of somatic embryogenesis. Because Sinpaldalkong 2 exhibited the best somatic embryogenesis, much higher concentrations of EMS were used to test somatic embryo formation under different periods of time in this cultivar. Three and six hour treatments with both 1 and 2 mM EMS yielded higher embryo formation than longer periods of time. Increasing the time with embryos in 2 mM EMS caused a reduction in somatic embryogenesis in Sinpaldalkong 2, but many chlorophyll-deficient soybean variants were identified in the $M_1R_0$ and $M_2R_1$ generations. In addition to Jack, Sinpaldalkong 2 is a good genotype for plant regeneration from EMS-treated immature embryo cultures.
This study was carried out to select the appropriate medium(especially, carbon and nitrogen source ) for somatic embryogenesis in order to develop the rapid mass production system in suspension culture of chuanxiang Hort. Suitable medium for somatic embryo formation was MS medium. The half strength MS medium was effective for somatic embryo development. Sucrose was the most effective carbon source for somatic embryo formation, however, production of somatic embryos was reduced at higher concentration of sucrose. Effects of suger was the same as sucrose. Somatic embryo formation was higher as the decrease of $NH_{4}NO_3$, and optimum ratio of $KNO_3\;:\;NH_4NO_3$ was 825 : 238mg /1. Regenerated plant was obtained in MS basal medium and survival late of plantlet was 60-70% after transplanted directly to the vermiculite.
This study was carried out in order to establish plant regeneration via somatic embryogenesis from leaf explant of Ostericum koreanum Kitagawa and to elucidate the effects of NAA and cytokinins (kinetin, BA) on the abnormalities of somatic embryo and the relationship between thecotyledon numberand germinability. Calli were formed on leaf explants cultured on MS agar medium supplemented with various concentrations (0, 0.1, 0.5, 1, 2 mg/L) of NAA and cytokinins. The calli were white, watery and soft, became browning during cultures. Somatic embryos were formed from pale yellowish calli derived browning calli. High frequency somatic embryos were observed on MS medium containing 1 mg/L NAA and 0.1 mg/L BA after 60 days of culture. The mature somatic embryos germinated into plantlets without subculture after 2 weeks. The frequency of normal somatic embryo with two cotyledons was 39.8%. On the other hand, cotyledonary abnormalities of somatic embryos were observed at considerable frequency: 33.6% of somatic embryo with one cotyledon, 15.3% cotyledons with three, 8.2% four cotyledons and 3.1% jar shaped cotyledon. Germination frequency of somatic embryos with two cotyledons was 97.4%, and that of the embryos with abnormal cotyledon was almost similar to that of embryos with two cotyledons, except jar shaped somatic embryos (33.3%).
Rugosa rose (Rosa rugosa) is cultivated as a garden flower and an important genetic resource for the breeding of roses (R. hybrida). This study describes culture conditions for high frequency plant regeneration from zygotic embryo explants via somatic embryogenesis in rugosa rose. Mature zygotic embryo, cotyledon, and radicle explants formed embryogenic calluses at frequencies of 38, 6.7, and 8.8% when cultured on half-strength Murashige and Skoog medium (${\frac{1}{2}}MS$) supplemented with 2.26, 9.05, and $9.05{\mu}M$ 2,4-dichlorophenoxyacetic acid, respectively. Embryogenic calluses produced numerous somatic embryos, which then developed into plantlets on ${\frac{1}{2}}MS$ without growth regulators. Regenerated plantlets were grown to whole plants in a growth chamber.
In general, the proliferation of orchids via somatic embryos has been used for mass production of somatic clones because of high propagation efficiency. In spite of high propagation rate, this method often brings somaclonal variation, especially polyploid frequency. Therefor we here concentrated to investigate the relationship between endopolyploidization patterns of explants and the occurrence of tetraploid variant in clonally proliferated Doritaenopsis via somatic embryo regeneration system. In the fully developed somatic embryo, upper part contained 2C to 16C while middle and lower parts showed 2C to 32C DNA content. Two-week-old embryo contained 2C to 16C, whereas those regenerated after 4 to 10-week-old contained 2C to 64C nuclei. Results showed that endoreduplication was variable depending upon tissue types, ages, and parts in one species. lower part of somatic embryo having high endoreduplication degree increased the regeneration of tetraploid variants by about 3-fold comparing to upper part of somatic embryo culture. polyploid frequency occurrence might be closely related to the high levels of endoreduplication of somatic embryos used as explant. It suggested that the upper part of somatic embryo having comparatively low endoreduplication degree is suitable for the stable in vitro propagation system.
Immature zygotic embryos (up to 4mm in length) were cultured on MS medium supplemented with 0.5 to 8mg/L 2,4-D. Up to 87% of them formed somatic embryos on the plumule without producing an intervening callus. The site of somatic embryo formation was confirmed by culturing plumule explants, which consisted of shoot apical meristem domes with 1 or 2 leaf primordia excised from 2-week-old seedlings. When the concentration of 2,4-D was increased over 4 mg/L, the plumule explants produced nonembryogenic calli only, whereas the distal end of the cotyledons directly formed numerous somatic embryos at frequencies of up to 60%. Upon transfer onto MS basal medium,2 out of 15 somatic embryos converted into plantlets. The plantlets were potted to a soil mixture and grown to maturity in a phytotron.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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