Twenty-five commercial food grade and alalytical grade lipases were used to study the patterns of release of short-chain free fatty acids (FFA) from milk fat in cheese slurries. Principal component Analysis showed that there were four distinctive groups by the FFA ratios and five groups by the FFA concentrations. However, Average Linkage Cluster Analysis showed that the patterns of FFA released were dependent upon distance defined between groups of lipases. All the lipases tested with both statistical analysis had distinctive specificities in hydrolyzing short-chain FFA from milk fat. Lipases from ruminant-animal origins produced an extremely high ratio (>40%) of butyric acid and a low ratio (<26%) of capric acid to total short chain FFA. Lipases from porcinepancreas and some microbial origins showed balanced production in both bytyric and capric acid. However, most lipases from microbial origins released a high ratio of capric acid but similar ratios to other origin enzymes for short-chain free fatty acids. Ruminant-animal origin lipases produced short-chain FFA much higher in concentration than other lipases. Lipases from porcine pancreas as well as microbial origins showed different concentrations of the fatty acids. Ratios of short-chain FFA in each sample were not significantly changed during incubation periods (4 wk), whereas concentrations of the FFA increased considerably.
The effects of dietary ${\beta}$-glucan, obtained from bacterial fermentation, on the intestinal mass, short chain fatty acids, lactate production and pH in Sprague-Dawley (SD) rats were evaluated. SD rats fed with 0% (control group), 1% or 5% ${\beta}$-glucan supplemented diets (w/w) for 3 weeks. The presence of ${\beta}$-glucan in the diets resulted in a significant increase in colonic contents in a dose dependent manner. The amount of short chain fatty acids increased in rats fed ${\beta}$-glucan diets. Rats fed the 5% ${\beta}$-glucan diets had higher levels of acetate, propionate and butyrate by 1.8, 1.7 and 3.0 fold of the control group in the cecum, and 2.2, 2.9 and 3.1 fold of the control group in the colon, respectively. The ${\beta}$-glucan diets also significantly increased the levels of cecal and colonic lactate by 1.4~3.4 fold, when compared to the control diet, indicating that dietary ${\beta}$-glucan stimulated the growth of lactic acid bacteria within the intestine. These results suggest that dietary ${\beta}$-glucan, by providing short chain fatty acids and reducing the cecal and colonic pH, may be beneficial in improving gut health, and provide evidence for the use of ${\beta}$-glucan as a dietary supplement for human consumption.
Short-chain fatty acids (SCFAs) such as acetate, propionate, and butyrate are secondary metabolites produced by anaerobic fermentation of dietary fibers in the intestine. Intestinal SCFAs exert various beneficial effects on intestinal homeostasis, including energy metabolism, autophagy, cell proliferation, immune reaction, and inflammation, whereas contradictory roles of SCFAs in the oral cavity have been reported. Herein, we found that low and high concentrations of SCFAs induce differential regulation of intracellular Ca2+ mobilization and expression of pro-inflammatory cytokines, such as interleukin (IL)-6 and IL-8, respectively, in gingival fibroblast cells. Additionally, cell viability was found to be differentially regulated in response to low and high concentrations of SCFAs. These findings demonstrate that the physiological functions of SCFAs in various cellular responses are more likely dependent on their local concentration.
Short-chain fatty acids (SCFAs), such as butyrate, propionate, and acetate produced by the gut microbiota have been implicated in physiological responses (defense mechanisms, immune responses, and cell metabolism) in the human body. In several types of cancers, SCFAs, especially butyrate, suppress tumor growth and cancer cell metastasis via the regulation of the cell cycle, autophagy, cancer-related signaling pathways, and cancer cell metabolism. In addition, combination treatment with SCFAs and anticancer drugs exhibits synergistic effects, increasing anticancer treatment efficiency and attenuating anticancer drug resistance. Therefore, in this review, we point out the importance of SCFAs and the mechanisms underlying their effects in cancer treatment and suggest using SCFA-producing microbes and SCFAs to increase therapeutic efficacy in several types of cancers.
Gut microbiota produce dietary metabolites such as short-chain fatty acids, which exhibit anti-inflammatory effects. Free fatty acid receptor 2 (FFA2, formerly known as GPR43) is a specific receptor for short-chain fatty acids, such as acetate that regulates inflammatory responses. However, the therapeutic potential of FFA2 agonists for treatment of atopic dermatitis has not been investigated. We investigated the efficacy of the FFA2 agonist, 4-chloro-α-(1-methylethyl)-N-2-thiazoylylbenzeneacetanilide (4-CMTB), for treatment of atopic dermatitis induced by 2,4-dinitrochlorobenzene (DNCB). Long-term application of DNCB to the ears of mice resulted in significantly increased IgE in the serum, and induced atopic dermatitis-like skin lesions, characterized by mast cell accumulation and skin tissue hypertrophy. Treatment with 4-CMTB (10 mg/kg, i.p.) significantly suppressed DNCB-induced changes in IgE levels, ear skin hypertrophy, and mast cell accumulation. Treatment with 4-CMTB reduced DNCB-induced increases in Th2 cytokine (IL-4 and IL-13) levels in the ears, but did not alter Th1 or Th17 cytokine (IFN-γ and IL-17) levels. Furthermore, 4-CMTB blocked DNCB-induced lymph node enlargement. In conclusion, activation of FFA2 ameliorated DNCB-induced atopic dermatitis, which suggested that FFA2 is a therapeutic target for atopic dermatitis.
The aim of this study was to determine the production of folate, short chain fatty acids (SCFAs), and antimicrobial activity exhibited by Lactobacillus plantarum G72 for potential dietary application in pregnant women. L. plantarum G72 has been reported to possess characteristic activities and functionality including β-galactosidase activity and antioxidant activities. L. plantarum G72 showed antibacterial activity against pathogenic bacteria (Listeria monocytogenes ATCC 15313, Salmonella typhimurium P99, Escherichia coli ATCC 25922, and Staphylococcus aureus KCCM 11335) using a modified method, and formation of the largest inhibition zone was observed against S. aureus KCCM 11335 (12.0-17.0 mm). The adherence of four food-borne pathogenic bacteria to HT-29 cells was inhibited by L. plantarum G72 (0.13 to 0.92 log CFU/ml). The most considerable inhibition of adherence to HT-29 cells was observed by using L. plantarum G72 against S. typhimurim P99. Additionally, folate production by L. plantarum G72 was 50.1 ng/ml, and L. plantarum G72 produced relatively more lactic acid (11,176.73 mg/kg) than acetic, propionic, or butyric acids. Therefore, the results of this study suggest that L. plantarum G72 may serve as a multifunctional food additive in the health industry.
We investigated the effects of fructooligosaccharides and chicory inulin on the profiles of cecal and fecal short-chain fatty acids (SCFAs) and fecal bile acids in rats. Thirty-six Sprague Dawley male rats weighing about 190 g were randomly divided among four treatments; control diet, control diet +6%(w/w) fructooligosaccharide (POS), control diet +6% chicory inulin oligosaccharide(CIOS), and control diet +6% chicory inulin(CI). The rats were pair-fed and experimental diets were maintained for 5 weeks. Cecal and fecal pH was significantly decreased in rats that were fed fructooligosaccharides and chicory inulin. Cecal propionate was significantly elevated in rats fed CIOS diets, and butyrate was lower in rats fed FOS and CI than control values. Cecal lactate was significantly higher in the FOS group than in the control group. The fecal excretions of acetate and total SCFA were 200-300% higher in rats that were fed fructooligosaccharides and chicory inulin than in the control group. Lactate excretion was highest in rats that were fed FOS, followed by those fed CIOS and CI. The cholic acid and total bile acid concentrations in feces were significantly lower in the rats that were fed fructooligosaccharides and chicory inulin. The deoxycholic acid concentrations in wet feces were significantly lower in the groups of rats that ate CIOS (0.186 mM), FOS (0.274 mM), and CI (0.362 mM) than in the control group (0.595 mM). Among the fructans, short-chain fructooligosaccharide was more effective at decreasing colonic pH and lactate production, but medium-chain chicory inulin oligosaccharide was more effective at increasing fecal butyrate and lowering the fecal secondary bile acid concentration.
The lipolytic yeast Candida aaseri SH14 contains three Acyl-CoA oxidases (ACOXs) which are encoded by the CaAOX2, CaAOX4, and CaAOX5 genes and catalyze the first reaction in the β-oxidation of fatty acids. Here, the respective functions of the three CaAOX isozymes were studied by growth analysis of mutant strains constructed by a combination of three CaAOX mutations in minimal medium containing fatty acid as the sole carbon source. Substrate specificity of the CaAOX isozymes was analyzed using recombinant C. aaseri SH14 strains overexpressing the respective genes. CaAOX2 isozyme showed substrate specificity toward short- and medium-chain fatty acids (C6-C12), while CaAOX5 isozyme preferred long-chain fatty acid longer than C12. CaAOX4 isozyme revealed a preference for a broad substrate spectrum from C6-C16. Although the substrate specificity of CaAOX2 and CaAOX5 covers medium- and long-chain fatty acids, these two isozymes were insufficient for complete β-oxidation of long-chain fatty acids, and therefore CaAOX4 was indispensable.
T cells are central players in the regulation of adaptive immunity and immune tolerance. In the periphery, T cell differentiation for maturation and effector function is regulated by a number of factors. Various factors such as antigens, co-stimulation signals, and cytokines regulate T cell differentiation into functionally specialized effector and regulatory T cells. Other factors such as nutrients, micronutrients, nuclear hormones and microbial products provide important environmental cues for T cell differentiation. A mounting body of evidence indicates that the microbial metabolites short-chain fatty acids (SCFAs) have profound effects on T cells and directly and indirectly regulate their differentiation. We review the current status of our understanding of SCFA functions in regulation of peripheral T cell activity and discuss their impact on tissue inflammation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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