Various plant growth regulators were tested for shoot proliferation of Tripterospermum japonicum, a rare and endangered species. Among the six different media tested, MS medium was the best for the shoot growth. Whereas BA, upto 3 mg/L, significantly increased shoot proliferation rate, it suppressed the rate at higher levels. Neither kinetin nor TDZ was so effective in proliferating shoots as BA. As for rooting, TDZ strongly inhibited it even at very low concentration though spontaneous rooting was frequently observed from the proliferated shoots during culture of lower concentration BA or kinetin. In contrast, shoot elongation was significantly promoted by $GA_3$. More than 90% of the proliferated plantlets could be transplanted via cuttings into pots containing artificial soil mixture where they rooted and resumed normal growth. Most of the plants bloomed to bear fruits in the following year.
Kim, Young-Seon;Jeong, Jae-Hun;Park, Jong-Suk;Eun, Jong-Seon
Plant Resources
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v.7
no.3
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pp.200-205
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2004
Sweet potato infected with a viral disease (SPFMV) showed irregular chlorotic patterns, so called feathering associated with faint or distinct ring spots that have purple-pigmented borders. SPFMV was eliminated from sweet potato plants using meristem tip culture. MS medium supplemented with BAP (2mg/L) and NAA (0.05 mg/L) was used for shoot proliferation and 1/2 MS medium for rooting of the plants. Highest percentage of regenerated plants (60%) was obtained from the optimum size (0.3-0.5mm) meristem tips. Of these, 60% plants were found negative for SPFMV by RT-PCR. Virus detection by RT-PCR was found to be a reliable method. Meristem-tip culture to produce SPFMV-free quality sweet potato and virus detection by RT-PCR is an efficient, time saving and reliable method for production of SPFMV-free tissue culture raised plants.
This study was conducted to elucidate the effect of light sources and explant types on in vitro shoot multiplication and rooting of a rare and endangered plant Abeliophyllum distichum. Both apical buds and axillary buds were used as explants under 4 different light sources, cool white florescent light (F), 100% blue light-emitting diode (LED) (B), 50% blue and 50% red LED mixture (BR), and 100% red LED (R). Clear difference was observed in terms of shoot proliferation by light sources types but not by position-dependent explant types. Multiple shoot induction rates were enhanced under both B and BR light sources. Spontaneous rooting was induced in shoot induction medium under B light source. Both the rates of rooting and numbers of roots per explant were higher in apical bud explants compared to axillary bud explants. Interestingly R light source stimulated shoot elongation but inhibited root development. Therefore, our results suggest that the use of apical bud explants under B or BR light sources is suitable for in vitro micropropagation of a rare and endangered plant species, Abeliophyllum distichum.
We have developed an in vitro micropropagation system via shoot formation from axillary buds using nodal segments of Corylopsis coreana. Explants from both juvenile tree (one-year-old greenhouse stock seedlings) and mature tree (ten-years-old tree in nursery) were compared with regard to propagation efficiency. Combined treatment of both BA and zeatin were effective on shoot proliferation since the best result was obtained on MS medium supplemented with 0.5∼3.0 mg/L zeatin and 0.2 mg/L BA. Generally, juvenile explants were better in both shoot proliferation and growth than mature explants. However, as the duration of in vitro culture was proceed to 6 months, explants from mature tree also produced three shoots per explant. Distinctive differences in rooting and adaptability to soil of shoots obtained from mother trees. Whereas shoots originated from juvenile explants rooted as high as 97%, those from adult explants showed 62% rooting. Similar result was also observed in soil acclimatization. The plantlets derived from juvenile plants survived 67%, while only 48% of those from adult trees survived. The results showed a possibility of the micropropagation of Corylopsis coreana through shoot formation from axillary buds. In addition, the advance of the research still remain to enhance the frequency of acclimatization of plantlets from mature trees for practical application.
Methods for shoot proliferation via pulse treatment onto the microshoots of Quercus acutissima, and ex vitro root induction using peat plug systems of the microshoots of 4 oak trees were described. Pulsing solution was prepared by the addition of BA and/or BA plus zeatin onto the aqueous WPM and sterilized distilled water. Using the solution, pulsing time was adjusted at different levels(0. 1, 2, 5. 9, and 24 hours). Although the effect of pulsing solution prepared by the addition of cytokinins onto the sterilized distilled water was slightly lower in shoot proliferation rate, a little higher in shoot elongation was observed compared with that of aqueous WPM. One hour of pulse treatment revealed best in shoot proliferation and its elongation, whereas the increment of pulsing time slightly suppressed the response. In addition, prolonged pulse time resulted high frequency of hyperhydric shoot appearance. Single treatment of BA was better in shoot proliferation than that of BA combination with zeatin, whereas the latter treatment usually showed rapid and healthy shoot growth. For ex vitro root induction using peat plug systems, black oaks(Q. acutissima and Q. variabilis) revealed excellent rootability compared with white oaks(Q. serrata and Q. mongolica). Shoot-tip necrosis of white oaks eras one of the big problems for survival. In this study, we discribed the effect of pulse treatment, successful ex vitro rooting system by the incorporation of peat plug, and the possibilities for the overcoming the obstacles on micropropagation of oaks.
In order to micropropagate uniform plantlets of Alocasia cadieri Chantrier in vitro, the shoot tips were cultured on media containing various concentrations of BA and thidiazuron (TDZ). Multiple shoot formation from shoot tips was very effective on medium containing 0.1mg/L TDZ. The formed shoots from shoot tips were separated into a shoot, and cultured on media with BA, TDZ, and NM combination for proliferation. The shoots were multiplied very vigorously on medium with 0.5mg/L TDZ and 0.5mg/L NAA. The rooting and growth of multiplied shoots were more effective on medium with 2.0g/L activated charcoal, rather than those with IBA and NAA. Rooted plantlets show high survival in soil mixed with perlite 1: vermiculite 1 or vermiculite alone.
Khaskheli, Allah Jurio;Ali, Muharam;Shah, Syad Zakir Hussain;Memon, Zohra Fatima;Awan, Saleem;Khaskheli, Muhammad Ibrahim;Khaskheli, Mohsin Ali;Magsi, Bilqees;Qambrani, Zareen;Khaskheli, Asad Ali
Journal of Plant Biotechnology
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v.48
no.2
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pp.86-92
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2021
The present study aimed to evaluate the initiation, proliferation potential, and mass clonal production ability of a micropropagation system for banana through tissue culture. A total of 60 explants were cultured on basal media supplemented with various concentrations of BAP and NAA. Banana plants regenerated on MS basal medium (control) without the addition of BAP + NAA showed a significantly (P < 0.05) lower survival rate with no signs of shoots up to the end of the experimental period. The results further revealed that the performance in MSS-XI medium was almost 89%, followed by MSS-IX and MSS-X media, both of which showed performance up to 88%. In contrast, the performance in the MSS-XVI medium was less than 60%, at the less duration of time and highly shoot induction detected at MSS-XIII medium. The maximum number of shoots (4.9) was observed in the medium supplemented with growth adjuster MSS-XI, followed by the MSS-XII medium (4.5). Surprisingly, the best performance was observed for the MSR-VII medium approximately 16 days after initiation, while the lowest performance was observed with MSR-XI (approximately 31 days). The maximum rooting percentage (98%) was observed in the MSR-V to MSR-VIII media (98%), while the minimum rooting percentage was observed in MSR-XI (approximately 45%).
Apical meristems of Wasabia japonica were cultured on Murashige and Skoog's medium supplemented with cytokinins alone or together with 1.0 mg/L IAA. Shoot initials could be induced from leaf primordia on apical meristems. Calli and roots were formed on the medium containing cytokinins and 1.0 mg/L IAA in combination after 30 days of culture, but there were no callus proliferation. Shoot organogenesis began after 60 days of culture and these small shoots elongated when transferred to a medium containing 1.0 mg/L BA or kinetin. Shoots were formed directly without callus induction from apical meristems all the explants on the medium containing cytokinins variously, and most of the shoots proliferated multiple shoots which could be divided to obtain plantlets. Shoot multiplication rate in response to cytokinins was best on the medium containing 1.0 mg/L BA or 2.0 mg/L zeatin. Divided plantlets rooted well on MS medium containing 0.01 mg/L IBA after 15~30 days of subculture and the rooted plantlets developed into whole plants with multiple shoots. After rooting, the regenerated plants were washed and transferred to the pots containing sterilized soil.
In order to micropropagate uniform plantlets of Philodendron cannifolium in vitro, the shoot tips were cultured on MS media supplemented with $0.5{\sim}10.0$ mg/L BA or $0.05{\sim}0.1$ mg/L thidiazuron(TDZ). The adventitious multi-bud clusters from basal part of shoots were formed on MS media containing $2.0{\sim}5.0$ mg/L BA or $0.05{\sim}0.1$ mg/L TDZ. But the shoots grown on MS media with TDZ showed necrosis by the lack of chlorophyll. The adventitious multi-bus clusters were cut into $5{\sim}7$ mm sections and cultured on MS media containing BA and TDZ for shoot proliferation. Shoots were proliferated vigorously on MS medium supplemented with $1.0{\sim}3.0$ mg/L BA with up to 30 shoots. But abnormally swollen hard calli were formed from basal parts of shoots on MS media with TDZ and high concentration of BA(10.0 mg/L). The proliferated shoots on same media also showed necrosis by the lack of chlorophyll. The shoot growth and rooting were favorable on MS media containing $0.5{\sim}2.0$ mg/L IBA. The rooted plantlets were acclimatizated effectively in soil mixed with perlite 1:vermiculite 1 or vermiculite alone. Fifteen mL of liquid medium containing 10 g/L activated charcoal and 30 g/L sucrose were added in same vessels after small shoots were proliferated to stimulate shoot growth and rooting. After 8 weeks in culture, the shoots were dipped into high concentration of IBA solution. and planted in soil mexed with perlite 1:vermiculite 1. The shoot growth and rooting were favorable in dipping treatments of $500{\sim}2,000$ ppm IBA solutions for 10 sec.
Cho, Kang Hee;Han, Bong Hee;Han, Jeom Hwa;Park, Seo Jun;Kim, Se Hee;Lee, Han Chan;Kim, Mi Young;Kim, Myung-Su
Journal of Plant Biotechnology
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v.45
no.4
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pp.382-391
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2018
The objective of this study was to determine the most effective medium condition of shoot proliferation and root formation for the efficient in vitro micropropagation of M.26 (Malus pumila Mill). Simple sequence repeat (SSR) markers were used to analyze the genetic diversity of micro-propagated and greenhouse grown M.26. Shoot proliferation was carried out in MS (Murashige and Skoog) containing benzyladenin (BA, $0.5{\sim}5.0mg{\cdot}L^{-1}$) and thidiazuron (TDZ, $0.01{\sim}0.1mg{\cdot}L^{-1}$). The highest number of shoots (10.67 shoots per explant) was induced by adding BA at a concentration $1.0mg{\cdot}L^{-1}$. TDZ treatments caused higher hyperhydricity rate in cultured explants than in BA treatments. There was no significant effect of both BA and auxin on shoot proliferation, and the optimum proliferation medium for M.26 was MS medium containing $1.0mg{\cdot}L^{-1}$ BA. To find a suitable medium composition for shoot rooting, we tested different concentrations indole-3-butyric acid (IBA) and ${\alpha}$-naphthaleneacetic acid ($0.5{\sim}5.0mg{\cdot}L^{-1}$), MS medium (1/4-1), sucrose ($0{\sim}30g{\cdot}L^{-1}$). The shoots showed good rooting on half-strength MS medium containing $1.0mg{\cdot}L^{-1}$ IBA and $15-20g{\cdot}L^{-1}$ sucrose. The rooting rate (100%), number of roots (10.45 ~ 13.60 roots per explant), root length (7.41 ~ 8.33 cm), and shoot length (4.93 ~ 5.38 cm) were good on this medium. Fifteen SSR primers were detected in a total of 30 alleles in 20 micro-propagated plantlets, all SSR profiles from micro-propagated plantlets were monomorphic and similar to greenhouse grown control plantlet M.26 plant. The results indicated that M.26 micro-propagated plantlets were genetically stable.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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