The baculovirus/insect cell expression system is of great value in the study of structure-function relationships in mammalian glucose-transport proteins by site-directed mutagenesis and for the large-scale production of these proteins for mechanistic and biochemical studies. In order to exploit this, the effects of substitution at the highly conserved residue glutamine 282 of the human erythrocyte-type glucose transporter have been examined by in vitro site-directed mutagenesis. The modified human transport protein has been expressed in Spodoptera frugiperda 21 cells by using the recombinant baculovirus AcNPV-GTL. To assess the functional integrity of the expressed transporter, measurements of the transport inhibitor cytochalasin B binding were performed, involving the membranes prepared from 4 days post infection with no virus, with wild-type virus or AcNPV-GTL virus. Data obtained showed that there was little or no D-glucose-inhibitable binding in cells infected with the wild type or no virus. Only the recombinant virus infected cells exhibited specific binding, which is inhibitable by D- but not by L-glucose. However, there was a notable reduction in the affinity for the potent inhibitor cytochalasin B when binding measurements of AcNPV-GTL were compared with those of AcNPV-GT, which has no substitution. It is thus suggested that although the modified and unmodified human transporters differed slightly in their affinity for cytochalasin B, the glutamine substitution did not interfere the heterologous expression of the human transporter in the insect cells.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.4
no.1
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pp.57-62
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2002
Cationic liposomes complexed with DNA have been extensively utilized for the delivery of reporter or therapeutic genes both in culture and in vivo. We investigated and determined the optimum conditions of a cationic liposome, composed of dimethyldioctadecy-lammonium bromide (DDAB) and dioleoyl phosphati-dylethanolamine UOPE), mediated a reporter plasmid expressing luciferase into insect cell lines (Sf-21 and Bm-N) and silkworm larvae. Together the data demonstrated that Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) genomic DNA (128 kb) was successfully transfected into Bm-5 cells using this liposome. These results suggest that DDAB/DOPE liposome will be useful as delivery agents for gene transfer to insect cells both in vitro and in vivo.
Kim, Jae-Su;Choi, Jae-Young;Roh, Jong-Yul;Lee, Han-Young;Jang, Seung-Sik;Je, Yeon-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.5
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pp.739-744
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2007
Insect cell lines and the control of infection for obtaining the maximum amount of polyhedrin-Cry1Ac-polyhedrin fusion protein from Bactrus in monolayer and suspension culture systems were tested. Growth rates of the Trichoplusia ni(High-Five) cell line in both culture systems were better than the other insect cell lines, Spodoptera frugiferda(Sf-9, Sf-21), Trichoplusia ni(Tn5), and Spodoptera exigua(Se301). The expression of the fusion protein in a monolayer culture showed that Se301 cells were 2.3-4.8 times more productive on a per cell basis than the other cell lines. However, in suspension culture, only High-Five cells were productive. High-Five cells infected with Bactrus at a multiplicity of infection(MOI) of 5 and a cell density of $3.0{\times}10^5$ cells per ml were more productive than the other infection condition in a suspension culture suitable for a large-scale production of baculovirus. In conclusion, for the large-scale production of Bactrus in vitro, High-Five cells showing good growth and high productivity are suitable.
Park, Jin-Yong;Kim, Hun;Hwang, Hi-Ku;Lee, Su-Jeen;Kim, Hyun-Sung;Hur, Byung-Ki;Ryu, Yeon-Woo;An, Chang-Nam;Kim, Jong-Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.1
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pp.35-40
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2004
Rotavirus virus-like particle (VLP) composed of VP2, VP6, and VP7 was expressed in the Baculovirus Expression Vector System (BEVS). Sf9 cell, a host of the baculovirus, was cultured from a 0.5-1 spinner flask to the 50-1 bioreactor system. Sf9 cell was maintained at cell density between 3.0E+05 and 3.0E+06 cells/ml and grew up to 1.12E+07 cells/ml in the bioreactor. Growth kinetics was compared under different culture systems and showed similar growth kinetics with 20.1-25.2 h of doubling time. Early exponentially growing cell culture was infected with three recombinant baculoviruses expressing VP2, VP6, and VP7 protein at 1.0, 2.0, and 0.2 moi, respectively. The expression of rotavirus proteins was confirmed by Western blot analysis and its three-layered virus-like structure was observed under an electron microscope. Rotavirus VLP was semipurified and immunized in ICR mice intramuscularly. Rotavirus-specific serum antibody was detected from 2 weeks after the immunization and lasted at least 21 weeks of the post-immunization, indicating its possible use as a vaccine candidate.
Hepatitis C virus (HCV) core proteins from two different isolates (HCV-1 and HCV-RH) were expressed in Spotioptera Jrugiperda (Sf9) insect cells. The RH core consisted of two major species of proteins (21 kDa and 19 kDa). On the other hand, the HCV-1 core was approximately 16 kDa in a SDS-PAGE gel. Both core proteins were phosphorylated in vivo on serine residues. Furthermore, the RH core but not HCV-1 core formed dimers, indicating that the protein conformation of the core in these two isolates is dfferent from one another. Immunofluorescence studies showed that the RH core was present in the cytoplasm, whereas the HCV-1 core was localized predominantly to the nucleus in recombinant baculovirus-infected insect cells. Since the major difference between the two isolates is the codon 9 of the core protein, a single amino acid substitution appears to play a major role in the protein conformation and these properties may reflect the different biological functions of core proteins in HCV-infected cells.
Spodoptera frugiperda IPLB-SF-21-AE cells were cultivated in a spin-filter bioreactor with continuous perfusion for the recombinant $\beta$-galactosidase production. At the perfusion rate of 0.06 $hr^{-1}$, the maximum cell density of insect cells in this bioreactor system reached 3.5$\times$$l0^6$ viable cells/ml using the Grace media containing 5% FBS and 0.3% Pluronic F-68. The recombinant $\beta$-galactosidase production of 8, 100 units per reactor volume was also achieved at this perfusion rate.
The baculovirus/insect cell expression system is of great value for the large-scale production of normal and mutant mammalian passive glucose-transport proteins heterologously for structural and functional studies. In most mammalian cells that express HepG2, this transporter isoform is predominantly located at the cell surface. However, it had been reported that heterologous expression of other membrane proteins using the baculovirus system induced highly vacuolated cytoplasmic membranes. Therefore, how a cell responds to the synthesis of large amounts of a glycoprotein could be an interesting area for investigation. In order to examine the subcellular location of the human HepG2 transport proteins when expressed in insect cells, immunofluorescence studies were carried out. Insect cells were infected with the recombinant baculovirus AcNPVHIS-GT or with wild-type virus at a MOI of 5, or were not exposed to viral infection. A high level of fluorescence displayed in cells infected with the recombinant virus indicated that transporters are expressed abundantly and present on the surface of infected Sf21 cells. The evidence for the specificity of the immunostaining was strengthened by the negative results shown in the negative controls. Distribution of the transporter protein expressed in insect cells was further revealed by making a series of optical sections through an AcNPVHIS-GT-infected cell using a confocal microscope, which permits optical sectioning of cell sample. These sections displayed intense cytoplasmic immunofluorecence surrounding the region occupied by the enlarged nucleus, indicating that the expressed protein was present not only at the cell surface but also throughout the cytoplasmic membranous structures.
Lee Eun-Sook;Kang Bum-Hyun;Heo Min-Suk;Lee Sam-Sun;Choi Hyun-Bae;Choi Soon-Chul;Park Tae-Won
Imaging Science in Dentistry
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v.31
no.3
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pp.135-143
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2001
Purpose : To evaluate the effect of all-trans-retinoic acid on radiosensitivity and radiation-induced apoptosis in NHOK, HEp-2 and FaDu cell lines. Material and Methods: We measured the changes in survival fraction at 2 Gy (SF2), α and β after treatment of retinoic acid (1μM) prior to irradiation with doses of 2, 4, 6 and 10 Gy and correlated the radiosensitizing effect of retinoic acid with them. Also, apoptosis induction was assayed with the flow cytometry on days 1,2, 3, 4 and 5 after irradiation (2, 10 and 20 Gy) combined with retinoic acid. Results and Conclusion: SF2 values for NHOK, HEp-2 and FaDu cell lines were 0.54, 0.64 and 0.41, respectively and the cell line of FaDu was the most radiosensitive. For cell lines of NHOK and HEp-2, pretreatment of cells with retinoic acid resulted in a significant decrease of the SF2 values. The α/β ratios of x-ray survival curve were 8.714 (NHOK), 4.098 (HEp-2) and 11.79 (FaDu). The α/β ratio for NHOK decreased on pretreatment with retinoic acid, whereas those for HEp-2 and FaDu increased. Radiation induced apoptosis in all cell lines but, retinoic acid did not affect the apoptosis.
Kang Mi-Ae;Heo Min-Suk;Lee Sam-Sun;Oh Sung-Ock;Lee Sul-Mi;Jeon In-Seong;Choi Soon-Chul;Park Tae-Won
Imaging Science in Dentistry
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v.33
no.3
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pp.143-149
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2003
Purpose: To investigate the radiosensitivity of the normal human oral keratinocytes (NHOK), and the effect of irradiation on cell cycle and protein expression. Materials and Methods: To evaluate the radiosensitivity of NHOK, the number of colonies and cells were counted after irradiation and the SF2 (survival fraction at 2Gy) value, and the cell survival curve fitted on a linear-quadratic model were obtained. LDH analysis was carried out to evaluate the necrosis of NHOK at 1, 2, 3, and 4 days after 2, 10, and 20 Gy irradiation. Cell cycle arrest and the induction of apoptosis were analyzed using flow cytometry at 1, 2, 3, and 4 days after 2, 10, and 200y irradiation. Finally, proteins related cell cycle arrest and apoptosis were analysed by Western blot. Results: The number of survived cell was significantly decreased in a dose-dependent manner. The cell survival curve showed SF2, α, and β values to be 0.568, 0.209, and 0.020 respectively. At 200y irradiated cells showed higher optical density than the control group. After irradiation, apoptosis was not observed but G2 arrest was observed in the NHOK cells. 1 day after 10 Gy irradiation, the expression of p53 remained unchanged, the p2l/sup WAF1/Cipl/ increased and the mdm2 decreased. The expression of bax, bcl-2, cyclin B1, and cyclin D remained unchanged. Conclusion: These results indicate that NHOK responds to irradiation by G2 arrest, which is possibly mediated by the expression of p21/sup WAFl/Cipl/, and that cell necrosis occurs by high dose irradiation.
In this study, we have tested whether the retrovirus vector system is applicable in transgenic cattle production. To overcome low infectivity of currently available retrovirus vector system we have directly microinjected retrovirus-producing cells into the perivitelline space of the day 1.5 embryos. The virus-producing cell line was designed to release replication-defective retrovirus encapsidated with Gibbon ape leukemia virus (GaLV) envelope protein. E. coli LacZ gene was used as a marker gene to facilitate evaluation of the transgene expression and X-gal staining at morula or blastocyst stage resulted in expression of E. coli LacZ gene The results in these experiments were summarized as follows : 1. The lowest concentration of polybrene necessary for efficient virus infection was Sf' g/ml. 2. Development rate from day 1.5 embryos microinjected with virus-producing cells to the morulae /blastocysts was 29%. 3. 21% of the morulae /blastocysts were LacZ+. 4. There was no evidence that the retrovirus-producing cells used in this study produced replication-competent retrovirus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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