The palmitoyl acyl carrier protein (ACP) specific thioesterase (EC 3.1.2.14) from Iris pseudoacorus was purified and characterized. The thioesterase which was very unstable in relatively high salt concentrations was eluted using a co-gradient of Triton X-100 and low concentration of KCl or Na-phosphate from Q-Sepharose, DEAE-Sepharose, and hydroxyapatite chromatography. SDS-PAGE analysis showed a single band with a molecular weight of 35,000. The native molecular weight of approximately 37,000 was estimated by Sephacryl S-200 chromatography, indicating that the enzyme is a monomer. The thioesterase activity was inhibited about 75% and 50% by N-ethylmaleimide (2 mM) and phenylmethylsulfonyl fluoride (2 mM). respectively. The N-ethylmaleimide-inactivation was protected by sodium palmitate but the inactivation with phenylmethylsulfonyl fluoride was not protected. Oxidation of thiols by 2 mM 5.5'-dithio-bis-(2-nitrobenzoic acid) resulted in 65% inactivation of the enzyme. These results suggest that a cysteinyl residue is essential to the catalytic reaction of the enzyme. The enzyme activity was increased by sodium citrate and also by $Cu^{2+}$
Glycosidase activities were tested from the grape berries, Vitis labruscana B. Takasumi. Among various glycosidases, $\alpha$-D-galactosidase was found to be the most active in the flesh and other glycosidases were considerably active in the order of the following: $\alpha$-D-mannosidase>$\alpha$-D-glucosidase>$\beta$-D-glucosidase>$\beta$-D-galactosidase. In the seeds, $\alpha$-D-glucosidase activity was the highest and other glycosidases such as $\alpha$-D-galactosidase, $\beta$-D-glucosidase, and $\beta$-D-galactosidase were still significantly active. The $\alpha$-D-galactosidase in the grape flesh was purified over 83-folds through salting-out with $(NH_4)_2SO_4$ and a series of chromatographies employing Sephadex G-50, Octyl-Sepharose, Q-Sepha- rose, and Biogel P-100. The enzyme was a monomer of 45 kDs as determined through SDS-PAGE and Sephacryl S-200 chromatography. The purified enzyme showed a preference of $\alpha$-D-galactose to $\beta$-D-galactose as a substrate about 5.4 times. Sulfhydryl specific reagents such as N-ethylmaleimide and iodoacetamide significantly inhibited the enzyme activity to the extents of 48 and 52% of its initial activity, respectively. The optimumpH range of $\alpha$-D-galactosidase was around 6.5-7.0. The enzyme activity increased by 46% in the presence of 1mM $Fe^{2+}$.
Kim Kwang-Soo;Kim Hye-Jung;Oh Deok-Kun;Cheong Jong-Joo;Rhee Sang-Kee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.4
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pp.647-650
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2006
D-Psicose 3-epimerase (DPE) catalyzes the interconversion of D-fructose to D-psicose by epimerizing the carbon-3 position. The DPE from Agrobacterium tumefaciens was cloned and expressed in Escherichia coli. The expressed enzyme was purified by affinity chromatography on an IMAC, gel filtration chromatography on a Sephacryl S-300 HR, and anion-exchange chromatography on a RESOURCE Q. The molecular mass of the purified enzyme was estimated to be about 135 kDa by Superdex 200 gel filtration chromatography, corresponding to a homotetramer. The enzyme produced crystals suitable for X-ray diffraction to a $2.0{\AA}$ resolution at 100 K. The crystals were found to belong to the orthorhombic space group $P2_12_12_1$, with unit-cell parameters a=102.4, b=113.0, and $c=131.8{\AA}$. In addition, the calculated packing parameter $(V_m)$ was $2.79{\AA}^3/Da$, the solvent content was 55.92%, and an asymmetric unit consisted of four monomers.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.27
no.5
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pp.808-812
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1998
Melania snail(Semisulcopira bensoni) is used as ingredient in Korean traditional soup and nutritional foods. Generally, lipoxygenase in several food products may produce off-flavors during their processing and storage. Therefore, the inactivation of lipoxygenase is required to make the better extracts from Melania sanil. Also, the quality on freshness of Melania snail may be evaluated by lipoxygenase activity. The lipoxygenae activity was the highest at 40~60% saturation among several concentrations in salting-ouot saturated solution of ammonium sulfate. The partial purification of lipoxygenase was successfully obtained by Sephacryl S-200 gel chromatography. The first peak among three peaks for protein determination showed the highest activity of lipoxygenase in 13~16 fractions among 100 fractions. The highest peak of lipoxygenase activity by ion exchange chromatography was shown at 0.1M NaCl. In the purification step, the specific activity was 20.8U/mg and activity yield was 19.8%. The optimum pH and temperature were pH6.0~8.0 and 3$0^{\circ}C$, respectively. Molecular weight of the lipoxygenase was estimated about 35kDa by SDS-PAGE.
Aly, Ibrahim Rabia;Diab, M.;El-Amir, A.M.;Hendawy, M.;Kadry, S.
Parasites, Hosts and Diseases
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v.50
no.1
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pp.37-43
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2012
Although schistosomicidal drugs and other control measures exist, the advent of an efficacious vaccine remains the most potentially powerful means for controlling this disease. In this study, native fatty acid binding protein (FABP) from $Fasciola$$gigantica$ was purified from the adult worm's crude extract by saturation with ammonium sulphate followed by separation on DEAE-Sephadex A-50 anion exchange chromatography and gel filtration using Sephacryl HR-100, respectively. CD1 mice were immunized with the purified, native $F.$$gigantica$ FABP in Freund's adjuvant and challenged subcutaneously with 120 $Schistosoma$$mansoni$ cercariae. Immunization of CD1 mice with $F.$$gigantica$ FABP has induced heterologous protection against $S.$$mansoni$, evidenced by the significant reduction in mean worm burden (72.3%), liver and intestinal egg counts (81.3% and 80.8%, respectively), and hepatic granuloma counts (42%). Also, it elicited mixed $IgG_1/IgG_{2b}$ immune responses with predominant $IgG_1$ isotype, suggesting that native $F.$$gigantica$ FABP is mediated by a mixed Th1/Th2 response. However, it failed to induce any significant differences in the oogram pattern or in the mean granuloma diameter. This indicated that native $F.$$gigantica$ FABP could be a promising vaccine candidate against $S.$$mansoni$ infection.
Kim, Ji-Yeon;Park, Nam-Jun;Yu, Young-Hyo;Park, Myung-Hwan
YAKHAK HOEJI
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v.41
no.5
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pp.615-621
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1997
Dehydropeptidase-I (DHP-I) was solubilized from porcine kidney by treatment with n-butanol and partially purified 19.25 fold by $(NH_4)_2SO_4$ precipitation, DEAE-Sepharose CL-6B ion exchange chromatography and Sephacryl S-300 HR chromatography with an overall yield of 19.16. DHP-I showed its optimal activity at pH 7.5 and 25$^{\circ}C$. Its activity was stable under neutral and alkaline conditions, but was disappeared under acidic condition. And DHP-I was heat-labile and its activity remained at 45$^{\circ}C$ for 3hrs. The enzyme was not inhibited by dicationic ions, while its activity was increased by $Co^{2+}$(1mM) and $Zn^{2+}$ (0.1mM). The enzyme was inhibited by EDTA and N-ethylmaleimide. The relative molecular mass of DHP-I was estimated to be approximately 100kDa by gel filtration chromatography. The $K_m$ value of DHP-I for glycyldehydrophenylalanine (GDHP) was 1.98mM. DWP20418 [(1R, 5S, 6S)-6-[1-(R)-Hydroxyethyl]-1-methyl-2-[(2S, 4S)-2-(piperazinylcarbonyl)-1-(R)-hydroxyethyl)pyrrolidine-4-thio]carbapen-2-em-3-carboxylic acid], compared with meropenem (MEPM), was rather easily hydrolized by DHP-I, while it was four times more resistant than imipenem (IPM) to DHP-I.
A procedure for extraction and purification of 8 kDa antigen of Brucella abortus RB51 was developed. Bacteria heat inactivated at $60^{\circ}C$, 30 min was extracted by 1% sarcosine and followed by fluid pressure liquid gel filtration chromatography of 2 series, Superose 12 HR 10/30 and Sephacryl S-100. There was produced $71.46{\mu}g/g$(wet) of 8 kDa antigen, and it resisted 1% trypsin, solved 1% triton X-100 higher than distilled water and inactivated 0.1% proteinase K. These results show that 8 kDa antigen may be a lipoprotein existed cell surface of B. abortus RB51. Also, we developed ELISA using purified 8 kDa surface antigen of Brucella abortus RB51 strain, its specificity and sensitivity was 95.0%, 98.6%, respectively. As compared with dot-blot assay using whole cell and ELISA using 8 kDa antigen, its correlation was 93.5%.
Xylose (glucose) isomerase was purified to homogeneity from cell-extracts of Streptomyces chibaensis J-59 via ammonium sulfate precipitation followed by chromatography on DEAE-cellulose, and gel filtration on Sephacryl S-300. The purified enzyme is a homotetramer with a native molecular mass of 180 kDa and a subunit molecular mass of 44 kDa. The amino acid N-terminal sequence of glucose isomerase from S. chibaensis J-59 was determined to be Ser-Tyr-Gln-Pro-Thr-Pro-Glu-Asp-Arg-Phe-Thr-Phe-Gly-Leu. The first 14 amino acids of the N-terminal sequence of the enzyme showed strong analogies with N-terminal sequences of glucose isomerase produced by other Streptomyces spp. The optimum pH and temperature for activity were 7.5 and 85, respectively. The purified enzyme required $Mg^{2+}$, $Co^{2+}$, and $Mn^{2+}$ for the activity, $Mg^{2+}$ being the most effective. The enzyme was not inhibited by $Ca^{2+}$, but was inhibited by $Hg^{2+}$, $Ag^+$, and $Cu^{2+}$. The $K_m$, $V_{max}$, and $k_{cat}$ values of S. chibaensis J-59 isomerase for glucose were 83 mM, 40.9 U/mg, and $1,843min^{-1}$, respectively. In the presence of $Co^{2+}$, cell-free enzymes retained 100% without loss of activities by the heat-treatment at $70^{\circ}C$ for 7 days. The enzyme retained 50% residual activity after heating at $85^{\circ}C$ for 13.5 h, at $90^{\circ}C$ for 126 min. The enzyme is more thermostable than any other glucose isomerases of Streptomyces spp.
We have isolated a water-extracted novel regulator for blood coagulation from an earthworm, Lumbricus rubellus. As a folk remedy, the earthworm has been known to facilitate blood circulation. After complete heat inactivation of endogenous proteases in the earthworm, an anticoagulant(s) was purified through ammonium sulfate fractionation and three consecutive gel permeation chromatography of Sephacryl S-300, Sephadex G-75, and G-150 by measuring activated partial thromboplastin time (APTT) The anticoagulant was further purified to 2,800 fold with a C4 reversed-phase HPLC This activity was stable under heat ($100^{\circ}C$ for 30 min) and acidic conditions (0.4 N HCl). The effects of this partially purified anticoagulant on thrombin were observed with various substrates such as N${\alpha}$-benzoyl-DL-arginine-p-nitroanilide (BApNA), H-D-phenylalanyl-L-pipecoyl-L-arginine-p-nitroanilide (S-2238), N${\alpha}$-p-tosyl-L-arginine methyl ester (TAME), and fibrinogen as a natural substrate. Only TAME hydrolysis, due to an esterase activity of the enzyme, was inhibited among the chromogenic substrates. In addition, the anticoagulant not only inhibited the conversion of fibrinogen to fibrin but also prolonged the fibrin clot formation monitored with the in vitro coagulation test. Based on these observations, we suggest the significance of measuring the ability of antithrombotic drugs to inhibit the esterase activity of thrombin. In this report, it was also shown that the earthworm indeed contained a water-extractable, heat- and acid-stable anticoagulant which could be used as a novel antithrombotic agent.
A strain producing ${\alpha}$-galactosidase and ${\beta}$-glucosidase was isolated from Kimchi. The isolated strain was identified as Weissella cibaria by 16S rDNA analysis and designated as Weissella cibaria K-M1-4. The enzyme activity of ${\alpha}$-galactosidase and ${\beta}$-glucosidase reached the maximum in the soy medium at $37^{\circ}C$ for 24 hr. The enzymes were purified by ethanol fractionation, DEAE sepharose fast flow, and sephacryl S-100HR column chromatography. ${\alpha}$-Galactosidase specific activity was shown by 576 Units/mg protein and the yield was 3.5% of the total activity of crude extracts. ${\beta}$-glucosidase specific activity was shown by 480 Units/mg protein and the yield was 2.9% of the total activity of crude extracts. The optimum temperature for ${\alpha}$-galactosidase was $60^{\circ}C$ and 43% of its original activity remained when it was treated at $80^{\circ}C$ for 30 min. For ${\alpha}$-galactosidase shows the optimum pH of 8.0 and is fairly stable between pH5.0 and pH9.0. The enzyme activity was increased in the presence of $Fe^{2+}$ and $Cu^{2+}$. The value of Km and Vmax for the enzyme were 0.98 mM and $1.81{\mu}$mole/min, respectively. The ${\beta}$-glucosidase has the optimum temperature of $50^{\circ}C$ and 46% of its original activity remained when it was treated at $80^{\circ}C$ for 30min. Its optimum pH of 7.0 and is fairly stable between pH5.0 and pH9.0. The enzyme activity was increased in the presence of $Fe^{2+},\;Co^{2+}$ and $Cu^{2+}$. The value of Km and Vmax for the enzyme were 1.24 mM and $6.81{\mu}$mole/min, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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