The collagenase gene from Vibrio parahaemolyticus 04 was subcloned into an expression vector pET-29b. The recombinant collagenase was expressed in Escherichia coli BL2l(DE3) and partially purified by Hi-Trap affinity and Sephacryl S-100 size exclusion chromatographies. The recombinant enzyme was purified by 43.7-fold and the yield was 73%. SDS-PAGE revealed that the molecular weight of the enzyme was approximately 35 kDa. Substrate specificity study of the enzyme displayed that the enzyme showed the highest activity with the type I collagen and the synthetic peptide, Z-GPGGPA, indicating that the enzyme was indeed a collagenase. The enzyme showed broad pH optimum around pH 6-12 and was stable between pH 5.5 and 11.5. The optimum temperature for the type I collagen degradation was $35^{\circ}C$. The thermostability measurement of the enzyme indicated that the enzyme was stable up to $55^{\circ}C$, but the activity was diminished quickly above $60^{\circ}C.$
An extracellular protease of Salmonella schottmulleri was purified from culture filtrate by using 0-75% ammonium sulfate precipitation, DEAE Sepharose Fast Flow ion exchange chromatography, Ultrogel HA chromatography and Sephacryl S-200 HR molecular sieve chromatography. To measure enzyme activity, synthetic dipeptide substrate (CBZ-arg-arg-AFC) with low molecular weight was employed as substrate. The molecular weight of the purified enzyme was approximately 80 kDa when determined by gel filtration on Sephacryl S-200 HR and 73 kDa when estimated by SDS-PAGE. The isoelectric point was 5.45. The activity of the purified enzyme was inhibited by metal chelating agesnts such as EDTA and 1.10-phenanthroline. The divalent cations, such as Ca$\^$2+/, Zn$\^$2+/, Fe$\^$2+/, Mg$\^$2+/ enhanced its activity. These results suggested that it was a metalloprotease. It had a narrow pH optimum of 6.5-7.5 with a maximum at pH 7.0 and a temperature optimum of 40.deg.C. It was stable at least for 1 week at 40.deg.C and maintained its activity for 24 hours at 50.deg.C, but it was rapidly inactivated at 65.deg.C. This protease was shown to be sensitive to sodium 50.deg.C, but it was rapidly inactivated at 65.deg.C. This protease was shown to be sensitive to sodium 50.deg.C, but it was rapidly inactivated at 65.deg.C. This protease was shown to be sensitive to sodium 50.deg.C, but it was rapidly inactivated at 65.deg.C. This protease was shown to be sensitive to sodium dodecyl sulfate (SDS) and was inactivated in a dose-dependent manner. However, it was resistant to Triton X-100 and the activity was enhanced to 32.3% with treatment of 0.025% Triton X-100.
Phytase(myo-inositol hexkisphosphate phosphohydrolase ; EC 3.1.3.8) was purified from the mucoas of rat intestinal. The molecular weight of enzyme was determined to be 160kDa by sephacryl S-200 gel filtration. Analysis of the purified enzyme o SDS-polyacrylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE) showen that it was composed of two different subunits and the molecular weight of its subunit was found to be 70kDa and 90kDa respectively, indicating that this enzyme is hetrodimer. The enzyme activities were activated in the presence of $ MgCl_{2}$, but inhibited by $ZnCl_{2}$, $MnCl_{2}$, and EDTA. The substrates tested, phytase showed the highest affinity for the enzyme at the physiological ph. The Km value for phytic acid(inositol-hexakisphosphate)was 0.31 mM at pH 7.4. rat intestinal mucosa phytase seems to play an important in the metabolism of inositol.
Blood coagulation and aggregation of platelet are crucial events in the pathogenesis of various ischemic diseases. The substance which can prevent blood coagulation and platelet aggregation was extracted from wood ear mushroom (Auricularia auricular-judae) and its anticoagulation activity was investigated. The dried A. auricular-judae was extracted with 0.1 N NaOH and its supernatant was further extracted with methanol and ethanol followed by $H_{2}O$. The resulting methanol soluble fraction showed significant antithrombotic activity in activated partial thromboplastin time, thrombin time, and prothrombin time assays with values of 100, 124, and 54 sec, respectively. This active substance was purified with DEAE-Sepharose CL6B and Sephacryl 400-HR and was found to be polysaccharide with the average molecular weight of over 150 kDa. This polysaccharide was xyloglucomannan of which the main component was mannose, and its anticoagulant activity was mostly mediated by inhibition of thrombin activity.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.23
no.3
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pp.490-495
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1994
Acid phosphatase (EC3.1.3.2) from carrots was partially purified by ammonium sulfate fractionation (30%-80%), Sephacryl S-200 gel filtration, cm-Sepharose CL-6B and DEAE -Sephacel ion exchange chromatography. The optimum ph and temperature of acid phosphatase from carrots were pH 5.5 and 55$^{\circ}C$, respectively. The enzyme was most stable at ph 6.0 and relatively unstable below pH 4.0 . The activation energy of the enayme was determined to be 10.6kcal/mole. The enzyme utilized p-nitrophenyl phosphate as a substrate among tested possible substrates, whereas it hydrolyzed 5' -IMP and 5'-GMP poorly. The Michaelis -Menten constant(Km) of the enzyme with p-nitrophenyl phosphate as a substrate was identified as 0.55mM. Amongtested metal ions and inhibitors, Al+++ Zn++, Cu++ , fluoride, metavanadate and molybdate ions inhibited the enzyme activity drastically.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.23
no.5
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pp.849-855
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1994
Actively growin Excherichia coli(KCTC 1039) cells were treated with paraquat (1, 1'-dimethyl-4, 4'-bipyridili-um dichloride) by cultivating them in the presence of 1.0mM paraquat. The treatment was carried out with or without shaking to understand the effect of oxygen on paraquat action to thebacterial superoxide dismutase (SOd). By the treatment with vigorous shaking , population growth of the organism almostly stopped and specific activities of SOD of the cells drastically decreased. On contrast ot it, the herbicide showed only l limited inhibitory action on bacterial growth and SOD activity by stationary treatment. Proteins prepared from parquat-treated cells divided into two peaks by Sephacryl column chormatogrpahy, while proteins from the intact cells formed a single peak. Cytoplasmic proteins and plasma membrane proteins of intact cells formed separated three peaks by Sephadex G-75 column chormatography. respectively. Among them the second peak disappeared by paraquat treatment , while the third peak became more apparent. Fractions from the first and the third peak showed SOD activity. Paraquat was detected from the same fractions.
해녀콩(Canavalia lineata L. DC) 잎에서 유도한 캘러스를 pH 8인 완충용액에 한 시간 동안 처리하면 pH 6에서 보다 arginase의 활성이 약 두 배로 증가했다. 캘러스에서 얻은 arginase의 조효소액을 Sephacryl S-200 컬럼에서 분획하면 분자량이 각각 380 kD과 179 kD으로 나타났는데 분자량이 큰 arginase의 분획은 pH 8 처리구에서 각각 상대적으로 많이 나타났다. 그리고 pH 6에 0.5 mM Mn2+를 첨가하였을 때도 380 kD arginase의 분획이 크게 나타났으며, pH 6 처리에서 얻은 179 kD arginase 분획에 pH 8 처리를 하면 380 kD 분획으로 쉽게 전이될 수 있었다. pH 6 처리 후 추출한 arginase는 Mn2+의 첨가로 활성이 크게 증가하여 pH 8 처리 후 추출한 arginase와 비슷한 활성을 보이나, pH 8 처리 후 추출한 arginase는 Mn2+의 첨가로 더 이상의 활성증가를 보이지 않았다. Mn2+이 없는 조건에서 두 arginase의 Km값과 Vmax를 조사한 결과, 380 kD arginase는 22 mM과 1.61 $\mu$mole urea.min-1.mg-1 protein, 그리고 179 kD arginase는 30 mM과 0.79 $\mu$mole urea.min-1.mg-1 protein으로 측정되었다.
Mussel adhesive protein (MAP) was extracted from Korean Mytilus edulis and then partially purified using Sephacryl S-300 gel permeation chromatography and reversed-phase high performance liquid chromatography. As an indicator of adhesiveness, is 3,4-dihydroxyphenylalanine (DOPA) content was determined. Its DOPA/protein ratio of 0.19 was higher than those of other reports, indicating a good adhesive. The partially purified MAP was confirmed by acid-urea polyacrylamide gel electrophoresis using cetylpiridinium bromide as a cationic detergent. Sea mussel hydrolysates were prepared using three commercial proteases to provide value-added functional materials and their angiotensin converting enzyme (ACE) inhibitory activities were determined. Among hydrolysates of sea mussel, Protamex was the best and further purification would improved ACE inhibitory activity.
Previously, we reported that the prothrombin kringle 2 (fragment 2), induced by LPS administration into rabbit, inhibited bFGF-stimulated BCE cell growth (Lee et al., 1998). In this study, we cloned and overexpressed the kringle 2 domain of rabbit and human prothrombin as a fusion protein with the pelB leader sequence in E. coli using the T7 promoter. The fusion protein was cleaved during translocation into the peri plasmic space, and cleaved recombinant protein was readily isolated from whole cell lysate by DEAE-Sepharose and Sephacryl S-200 gel filtration chromatography. Both the recombinant rabbit and human prothrombin kringle 2 showed very similar biochemical and functional characteristics to the rabbit prothrombin kringle 2 purified from rabbit serum, in terms of abnormal electrophoretic migration and endothelial cell growth inhibitory activity.
A periplasmic endoprotease, named protease Pi, was purified to homogeneity from Escherkchia coli by conventional procedure with insulin as substrate. This enzyme degrades insulin and glucagon to trichloroacetic acid-soluble meterials, but shows little or no hydrolysis of bovine serum albumin, casein or globin. Its molecular weight was 110, 000 when determined by gel filtration on Sephacryl S-300 and was 105, 000 when estimated by polyacrylamide gel electrophoresis in the presence of sodium dodecyl sulfate. Thus, it appears to be single polypeptide. This snzyme is metalloprotease, since it is completely inhibited by o-phenanthroline and can be activated by addition of divalent metal cations, such as $Mg^{2+}\;and\;Co^{2+}$. It is destinct from protease Ci, a cytoplasmic insulin degrading enzyme, since protease Pi is localized to the periplasm. Since protease Pi selectively degrades GTP cyclohydrolase I, it appears to play a role in the regulation of pteridine biosynthesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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