The objective of this study was to establish the optimal conditions for hypoosmotic swelling (HOS) test to assess the functional integrity of the membranes of boar fresh or frozen/thawed spermatozoa. When pooled semen sample was incubated for 30 min at $37^{\circ}C$ with different test solution of varied osmolarity, the highest percentage of HOS positive spermatozoa was observed in a 150 mOsmol fructose/Na-citrate solution (33.6%). Incubation time did not affect significantly the score of HOS positive spermatozoa observed in a 150 mOsmol fructose/Na-citrate solution at $37^{\circ}C$, but the osmolarity affected the score of HOS positive spermatozoa under the same condition above. Fresh semen was significantly better than frozen/thawed semen in semen parameters evaluated such as motility, viability, membrane integrity and lipid peroxidation (p<005). In the relationships of sperm parameters, motility vs viability, motility vs membrane integrity and viability vs membrane integrity were positively correlated ($0.82{\sim}0.94$) but lipid peroxidation vs other estimated factors was negatively correlated ($- 0.90{\sim}- 0.98$). Among the evaluation methods, motility vs Viability, motility vs membrane integrity and lipid peroxidation vs other estimated factors were significantly correlated (p<0.05). These results of this. study indicate that the optimal condition of HOST in boar spermatozoa is a 150 mOsmol fructose/Na-citrate solution for 30 min incubation at $37^{\circ}C$ and HOST can substitute the examination of motility, viability and lipid peroxidation.
Park, Yong-Seog;Lee, Sun-Hee;Han, Sang-Chul;Koong, Mi-Kyoung;Kim, Jong-Woo;Seo, Ju-Tae
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.30
no.2
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pp.165-169
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2003
Objective: To evaluate the results of CASA systems and to compare its results. Methods: Fifty semen sampales were analysed. Concentration, motility and forward progression were evaluated simultaneously on the same semen samples using Cell Soft System-3000 (CS system) and Sperm Quality Analyzer-V (SQA system). Results: Mean semen volume was $2.8{\pm}1.2\;ml$. Mean value of sperm concentration, motility, forward progression using CS system were $83.4{\pm}45.7{\times}10^6/ml$, $52.3{\pm}16.4%$ and $48.6{\pm}13.4%$, respectively. And mean value of sperm concentration, motility, forward progression using SQA system were $78.2{\pm}42.9{\times}10^6/ml$, $57.0{\pm}24.0%$ and $50.6{\pm}21.9%$, respectively. There were no statistical significancy of sperm concentration, motility, forward progression between the two devices. Conclusion: SQA system variables well correlated with the CS system. As a screening test for semen quality, CS system and SQA system is considered as useful in the management of male infertility.
The present study was conducted to investigate the effects of butylated hydroxytoluene (BHT) supplementation on diluted, cooled and frozen-thawed ram spermatozoa. After primary evaluation of collected ejaculates, only semen samples with motility of more than 70% and sperm concentration higher than $3{\times}10^3$ sperm/ml were used for cryopreservation. The selected semen samples were then pooled and diluted 1:4 with Tris Citrate Fructose Yolk (TCFY) extender supplemented with different concentrations of BHT (0.5, 10, 2.0 and 3.0 mM). As the control, semen was diluted and frozen in the diluent without BHT. Motility, progressive motility, viability, membranes and acrosome integrity were evaluated after dilution (part 1), cooling (part 2) and freezing and thawing (part 3). The results of the first part of the experiment showed that there were no significant difference between treatments in the motility, progressive motility, viability, membranes and acrosome integrity of spermatozoa, but the results with 2.0 mM BHT were slightly better than obtained with other levels of BHT and control extender. Significantly better results (p<0.05) were observed in the second part of the experiment for cooled spermatozoa characteristics, when extender was supplemented with 2.0 and 3.0 mM BHT. Furthermore, the results obtained in the third part of the experiment indicated that, after freezing and thawing, all evaluated semen characteristics were improved significantly (p<0.05) by increasing BHT levels, with the best results obtained for extender containing 2 mM BHT. Comparison of these results with those of control diluent, the effects of supplementation were significantly (p<0.01) better. However, the higher concentration of BHT (3.0 mM) reduced the motility, acrosomal integrity, viability and hypo-osmotic swelling response of spermatozoa compared to extender containing 2.0 mM BHT. In conclusion, the results obtained in this study showed that the semen quality of rams was improved when BHT was added to extender used before the freezing process.
Objective: This study was conducted to examine influence of skimmed milk-based extender (SM), INRA 96 extender and BotuSemen Gold extender on parameters of stallions' ejaculate during storage. Methods: In this study, 14 stallions between 4 and 20 years of age were monitored. Total and progressive motility, viability and morphology of sperm were evaluated at time intervals of 24, 48, and 72 hours after collection. Results: The total motility, progressive motility, and values of sperm with normal morphology were significantly higher in the INRA 96 and BotuSemen Gold extenders than in the SM (p<0.01). The sperm viability differed significantly in all extenders (p<0.01). The highest value of sperm viability was in INRA 96 (64.69%±0.67%) and lowest in SM (59.70%±0.81%). The highest differences occurred at 72 hours of storage. Values of total motility, progressive motility and sperm viability decreased over time (p<0.01). In case of sperm morphology there was no statistically significant decrease between 48- and 72-hour time intervals. Conclusion: It can be concluded that the extenders with a chemically defined composition have shown better indicators of insemination capabilities in ejaculates than the SM. The BotuSemen Gold extender is a suitable alternative to the INRA 96, when used within 48 hours; after 72 hours of storage, however, the INRA 96 showed a higher share of viable spermatozoa.
Jang H. Y.;Cheong H. T.;Kim C. I.;Park C. K.;Yang B. K.
Reproductive and Developmental Biology
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v.29
no.2
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pp.133-139
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2005
Oxidative stress is one of the major causes of failure in in vitro storage of boar semen. Reactive oxygen species (ROS) are known to be important mediators of such stress. The present study examined the effects of pyruvate and taurine on sperm motility and expression of BAD, Cytochrome c, Caspase-3 and Cox-2 protein in in vitro storage of boar semen, and tested the effect of semen treated with antioxidant with or without hydrogen peroxide on the development of IVM/IVF porcine embryos. Semen samples were transported to the laboratory at $17^{\circ}C$ within 2 hr after collection and were treated with different concentration of pyruvate $(1\~10mM)$ and taurine $(25\~100mM)$ with or without 250uM $H_2O_2$ respectively. The supplementation of pyruvate and taurine increased sperm motility in boar semen during in vitro incubation at $37^{\circ}C$. Expression of apoptosis protein (BAD, cytochrome c, caspase-3 and cox-2) were reduced in the group of boar semen treated with pyruvate and taurine when compared to the other groups. The developmental rates of IVM/IVF porcine embryos fertilized by semen treated with pyruvate and taurine were significantly increased when compared to control (P<0.005). These results indicate that supplementation of pyruvate and taurine as antioxidants in boar semen extender can improve the semen quality and increase in vitro development of porcine IVM/IVF embryos when boar semen treated with antioxidants was used for in vitro fertilization.
The aims of this study were to measure the ultrasonographic biometry of genitalia of the indigenous rams and observe the relationship of biometry on semen parameters. The epididymal volume was significantly reduced (p < 0.01) after semen collection compared with before collection for both left and right part in all rams. The cumulative results showed that although there was no significant difference in length, width and volume of epididymis between before and after semen collection, however the values were lower after collection. The epididymal length was significantly correlated with epididymal volume (p < 0.01), semen motility (p < 0.05) and semen morphology (p < 0.01). Epididymal width was only significantly correlated with epididymal volume (p < 0.01) not with the semen parameters. Epididymal volume had a significant correlation only with semen morphology (p < 0.01).The scrotal circumference had the significant correlation with semen density, mass activity, concentration and motility (p < 0.01). The epididymis had the similar or slightly increased echogenicity as compared to the normal testis. During whole study, some white spots were found on testis which did not affect the semen quantity and quality. Significant variation was observed only for semen concentration and motility among the rams (p < 0.05). The overall normal morphology was 90.5 ± 4.6% with highest percentage of coiled tail abnormalities.
The objective of this study was to investigate the effect of bacterial contamination on elapsed time after preservation on boar semen. Known numbers of Escherichia coli (E. coli) were inoculated to freshly ejaculated semen and sperm parameters such as viability, motility, agglutination, acrosome integrity and hypo-osmotic swelling test were performed during 7 days of liquid preservation. Semen samples were prepared using antibiotic free BTS extender and 4 different levels of E. coli were treated to semen with following concentrations; 3,000, 5,000, 7,000, 10,000 CFU/ml of sperms. Semen samples were preserved at $17^{\circ}C$ for 7 days in semen storage until analyzed. Aliquots were subjected to measure the sperm viability, motility and agglutination using computer assisted sperm analysis (CASA) system, acrosome integrity was performed using chlortetracycline (CTC) staining method and hypo-osmotic swelling test was performed using hypotonic solution from day 1 (day of semen collection) to 7. Detrimental effects on sperm motility and viability were observed 3 days after preservation at the level of 5,000 CFU/ml (p<0.05). Percentage of sperm abnormality was higher (p<0.05) in over 5,000 CFU/ml groups. Sperm agglutination rate was also significantly higher (p<0.05) in groups of 5,000 and 7,000 CFU/ml. The rate of acrosome reacted sperm was higher as preservation time goes in all the samples but the pattern was clearly higher among E. coli contaminated groups (p<0.05). The sperm membrane integrity in terms of hypo-osmotic test, E. coli affects little compared to other sperm parameters. The deleterious effects observed due to the bacterial contamination in semen suggest that importance of hygiene protocol to minimize the bacterial contamination during semen collection and processing.
This study was carried out to investigate the general characteristics, such as volume, pH, sperm motility and sperm concentration of the semen collected from Beagle dogs (age $24{\sim}48$ months, weight $10{\sim}15\;kg$) by using the method of digital manipulation of the penis, and the effect of preservation temperature and time on motility of fresh semen. Multiple ejaculates were collected from 4 male Beagles. The average volume, pH, motility and sperm concentration of the second fraction (contained with small volume of the third fraction) per ejaculation were $2.94{\pm}0.24(SD)\;ml$, $6.43{\pm}0.42(SD)$, $97.04{\pm}3.50(SD)%$ and $1.67{\pm}0.23(SD){\times}10^8\;cells/ml$, respectively. Average semen volume per ejaculate, semen pH, sperm motility and sperm concentration of the first fraction from the ejaculate were $1.24{\pm}0.20(SD)\;ml$, $6.03{\pm}0.26(SD)$, $1l.30{\pm}4.02(SD)%$ and $7.25{\pm}1.02(SD){\times}10^5\;cells/ml$. Those of second fraction were $2.52{\pm}0.32(SD)\;ml$, $6.32{\pm}0.31(SD)$, $96.25{\pm}3.52(SD)%$ and $2.35{\pm}0.35(SD){\times}10^8\;cells/ml$. Those of third fraction were $2.71{\pm}0.27\;(SD)\;ml$, $6.52{\pm}0.20(SD)$, $95.65{\pm}2.78(SD)%$ and $5.72{\pm}0.29(SD){\times}10^7\;cells/ml$. Motility of semen was higher at $17^{\circ}C$ preservation temperature than $5^{\circ}C$ or $36^{\circ}C$ during preservation period. When preservation temperature was $17^{\circ}C$, motility was $96.54{\pm}2.05(SD)%$ at 1 h, $90.20{\pm}3.90(SD)%$ at 6 h, $89.05{\pm}2.01(SD)%$ at 12 h, $78.21{\pm}3.50(SD)%$ at 18 h, $45.24{\pm}6.25\;(SD)%$ at 24 h and $30.75{\pm}17.24(SD)%$ at 30 h, respectively.
Kim, Sung Woo;Lee, Jae-Yeong;Kim, Chan-Lan;Ko, Yeoung-Gyu;Lee, Sung Soo
Korean Journal of Poultry Science
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v.48
no.4
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pp.185-191
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2021
Chicken spermatozoa have the ability to survive in low-temperature environments; however, the effects of low temperature on sperm motility and acrosome damage have not been studied in detail. The present study investigated semen longevity following dilution of rooster semen with Beltsville Poultry Semen Extender (BPSE) and Lake extender in preservation vessels (1.5 mL e-tube and 0.5 mL straw). Spermatozoa motility in the closed-type vessel (0.5 mL straw) was higher than that in the 1.5 mL e-tube on day 3 of preservation (68.6±3.1% vs. 22.1±5.7%). The motility of rooster semen diluted with BPSE in 0.5 mL straw was also higher than that of the Lake extender on day 3 of preservation (57.7±5.6% vs. 37.7±5.4%). Furthermore, acrosome intactness was higher in 0.5 mL straw than in the 1.5 mL e-tube, and the rate of acrosome cap damage increased with preservation days. The present study demonstrates that a closed 0.5-mL straw vessel could be used for low-temperature semen preservation, with an increased motility rate and acrosome integrity in fresh rooster semen.
The purpose of this study was to select high-quality boar semen after the glass wool filtration of extended boar semen. After collecting boar semen, its concentration, morphology, viability, and motility were examined according the glass wool's height and time. After glass wool filtration, the sperm concentration decreased, but the proportion of normal sperms and the sperm viability increased. Nevertheless, the sperm motility showed no changes. The above results showed that the glass wool filtration of boar semen is a method of obtaining sperms with relatively low abnormal rates and high viabilities.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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