Lactobacillus crispatus (L. crispatus) ZJ001 is highly adhesive to epithelial cells and expresses S-layer proteins. In this study, S-S-layer layer genes were sequenced and expressed in E. coli to characterize the function of proteins with this particular strain. L. crispatus ZJ001 harbored two S-layer genes slpA and slpB, and only slpA gene was expressed in the bacterium, as revealed by RT-PCR and immunoassays. The mature SlpA showed 47% amino acid sequence identity to SlpB. The SlpA and SlpB of L. crispatus ZJ001 were highly homologous at the C-terminal region to other Lactobacillus S-layer proteins, but were substantially variable at N-terminal and middle regions. Electron microscopic analysis indicated that His-slpA expressed in E. coli was able to form a sheet-like structure similar to the natural S-layer, but His-slpB formed as disc-like structures. In the cell binding experiments, HeLa cells were able to bind to both recombinant His-slpA and His-slpB proteins to the extent similar to the natural S-layer. The cell binding domains remain mostly in the N-terminal regions in SlpA and SlpB, as shown by high binding of truncated peptides SlpA2-228 and SlpB2-249. Our results indicated that SlpA was active and high binding to HeLa cells, and that the slpA gene could be targeted to display foreign proteins on the bacterial surface of ZJ001 as a potential mucosal vaccine vector.
A chimeric gene encoding enhanced green fluorescent protein (EGFP) and a S-layer protein from Lactobacillus brevis KCTC3102, and/or two copies of the Fe-binding Z-domain, a synthetic analog of the B-domain of protein A, was constructed and expressed in Escherichia coli BL21(DE3). The S-layer fusion proteins produced in a 500-1 fermentor were likely to be stable in the range of pH 5 to 8 and $0^{\circ}C$ to $40^{\circ}C$. Their adhesive property enabled an easy and rapid immobilization of enzymes or antibodies on solid materials such as plastics, glass, sol-gel films, and intestinal epithelial cells. Owing to their affinity towards intestinal cells and immunoglobulin G, the S-layer fusion proteins enabled the adhesion of antibodies to human epithelial cells. In addition, feeding a mixture of the S-layer fusion proteins and antibodies against neonatal calf diarrhea (coronavirus, rotavirus, Escherichia coli, and Salmonella typhimurium) to Hanwoo calves resulted in 100% prevention of neonatal calf diarrhea syndrome (p<0.01), whereas feeding antibodies only resulted in 56% prevention.
Bacillus species have been involved in metal association as biosorbents, but there is not a clear understanding of this chelating property. In order to evaluate this metal chelating capacity, cultures and spores from Grampositive bacteria of species either able or unable to produce surface layer proteins (S-layers) were analyzed for their capacity of copper biosorption. Only those endowed of S-layers, like Bacillus sphaericus and B. thuringiensis, showed a significant biosorption capacity. This capacity (nearly 50%) was retained after heating of cultures, thus supporting that structural elements of the envelopes are responsible for such activity. Purified S-layers from two Bacillus sphaericus strains had the ability to biosorb copper. Copper biosorption parameters were determined for strain B. sphaericus 2362, and after analyses by means of the Langmuir model, the affinity and capacity were shown to be comparable to other bacterial biosorbents. A competitive effect of $Ca^{2+}$ and $Zn^{2+}$, but not of $Cd^{2+}$, was also observed, thus indicating that other cations may be biosorbed by this protein. Spores that have been shown to be proficient for copper biosorption were further analyzed for the presence of S-layer content. The retention of S-layers by these spores was clearly observed, and after extensive treatment to eliminate the S-layers, the biosorption capacity of these spores was significantly reduced. For the first time, a direct correlation between S-layer protein content and metal biosorption capacity is shown. This capacity is linked to the retention of S-layer proteins attached to Bacillus spores and cells.
Zhou, Zhou;Peng, Donghai;Zheng, Jinshui;Guo, Gang;Tian, Longjun;Yu, Ziniu;Sun, Ming
BMB Reports
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v.44
no.5
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pp.323-328
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2011
We screened four B. thuringiensis strains whose parasporal inclusions contained the S-layer protein (SLP), and cloned two slp genes from each strain. Phylogenetic analysis indicated these SLPs could be divided into two groups, SLP1s and SLP2s. To confirm whether SLPs were present in the S-layer or as a parasporal inclusion, strains CTC and BMB1152 were chosen for further study. Western blots with isolated S-layer proteins from strains CTC and BMB1152 in the vegetative phase showed that SLP1s and SLP2s were constituents of the S-layer. Immunofluorescence utilizing spore-inclusion mixtures of strains CTC and BMB1152 in the sporulation phase showed that SLP1s and SLP2s were also constituents of parasporal inclusions. When heterogeneously expressed in the crystal negative strain BMB171, four SLPs from strains CTC and BMB1152 could also form parasporal inclusions. This temporal and spatial expression is not an occasional phenomenon but ubiquitous in B. thuringiensis strains.
The composition of biochemical components such as lipids, proteins and their amino acid components and inorganic elements in the ashes in unossified antlers from Cervus nippon Temminck var. mantchuricus grown in Korea were analyzed to obtain fundamental data for quality control. As a result, it was found that total lipids were 20.75% which was approximately similar contents with those of proteins (21.8%). Sixteen amino acids were identified from the hydrolysate of the protein fraction. Three gangliosides with very similar TLC patterns of those such as $GM_3$, $GM_1$ and $GM_{1a}$ were identified from the water soluble layer of Folch's partitions. Ash contents were revelaed to be much higher in the sponge layer (40.0%) than in the velvet layer (3.7%).
Kim, Ju-Won;Jo, You-Young;Kweon, Hae Yong;Kim, Dae-Won;Kim, Seong-Gon
Maxillofacial Plastic and Reconstructive Surgery
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v.40
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pp.10.1-10.6
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2018
Background: The objective of this study was to evaluate the changes in gene expression after incubation of cells with proteins released from different silk mat layers. Methods: A silk cocoon from Bombyx mori was separated into four layers of equal thickness. The layers were numbered from 1 to 4 (from the inner to the outer layer). The proteins were released by sonication of a silk mat layer in normal saline. The concentration of proteins was determined by spectrophotometry. They were incubated with RAW264.7 cells, and changes in the expression of genes were evaluated by cDNA microarray analysis and quantitative reverse transcriptase-polymerase chain reaction (qRT-PCR). Results: Layer 1 and 4 groups had higher protein concentrations compared to those in layer 2 and 3 groups. The genes associated with inflammation and angiogenesis showed significantly higher expression in layer 1 and 4 groups. The results of qRT-PCR were in agreement with those of the cDNA microarray analysis. Conclusions: The silk mat from the middle portion of the silkworm cocoon yielded a lower protein release and caused an insignificant change in the expression of genes that are associated with inflammation and angiogenesis.
For precise identification of a Lactobacillus K1 isolate, LC-MS/MS analysis of the putative surface layer protein was performed. The results obtained from LTQ-FT-ICR mass spectrometry confirmed that the analyzed protein spot is the surface layer protein originating from Lb. helveticus species. Moreover, the identified protein has the highest similarity with the surface layer protein from Lb. helveticus R0052. To evaluate the proteomic study, multilocus sequence analysis of selected housekeeping gene sequences was performed. Combination of 16S rRNA sequencing with partial sequences for the genes encoding the RNA polymerase alpha subunit (rpoA), phenylalanyl-tRNA synthase alpha subunit (pheS), translational elongation factor Tu (tuf), and Hsp60 chaperonins (groEL) also allowed to classify the analyzed isolate as Lb. helveticus. Further classification at the strain level was achieved by sequencing of the slp gene. This gene showed 99.8% identity with the corresponding slp gene of Lb. helveticus R0052, which is in good agreement with data obtained by nano-HPLC coupled to an LTQ-FT-ICR mass spectrometer. Finally, LC-MS/MS analysis of surface layer proteins extracted from three other Lactobacillus strains proved that the proposed method is the appropriate molecular tool for the identification of S-layer-possessing lactobacilli at the species and even strain levels.
Lactobacilli are normal constituents of the intestinal microbiota, and some strains show the capacity to bind to extracellular matrix proteins and components of the mucosal layer, which represents an adaptation to persist in this niche. A shotgun phage-display library of Lactobacillus casei BL23 was constructed and screened for peptides able to bind to fibronectin and collagen. Clones showing binding to these proteins were isolated, which encoded overlapping fragments of a putative transcriptional regulator (LCABL_29260), a hypothetical protein exclusively found in the L. casei/rhamnosus group (LCABL_01820), and a putative phage-related endolysin (LCABL_13470). The construction of different glutathione S-transferase (GST) fusions confirmed the binding activity and demonstrated that the three identified proteins could interact with fibronectin, fibrinogen, and collagen. The results illustrate the utility of phage display for the isolation of putative adhesins in lactobacilli. However, it remains to be determined whether the primary function of these proteins actually is adhesion to mucosal surfaces.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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