• 생명과학회지
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• 제23권2호
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• pp.222-227
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• 2013

건포도 발효 배양액으로부터 이산화탄소 생성능이 우수한 효모를 분리하였다. 분리 효모는 18S rDNA ITS 유전자 상동성을 비교하여 Saccharomyces cerevisiae로 동정하고 Saccharomyces cerevisiae MF10003로 명명하였다. 분리 효모 S. cerevisiae MF10003은 풍미 발생 야생효모인 S. ellipsoideus KCTC7243에 비하여 각각 1.9배 및 3.1배 우수한 이산화탄소 생성능 및 dough 발효 팽창능을 나타냈었다. 분리 효모는 glucose, fructose, sucrose, maltose를 기질로 하여 4시간 이내에 이산화탄소 발생력을 보여 주었다.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제14권3호
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• pp.213-218
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• 1986

B. amyloliquefaciens의 $\alpha$-amylase 유전자가 S. cerevisiae 내에서 형질발현하는 가를 조사하기 위하여 본, 연구에서 YRp7 plasmid에 B. amyloliquefaciens amylase유전자를 cloning하여 만든 pEA24를 형질전환시켰다. 먼저 YRp7 plasmid를 이용하여 형질전환 최적 조건을 검토하여 본 바, PH 7과 8사이, 반응온도 3$0^{\circ}C$에서 40%의 polyethylene glycol(MW 4,000)을 처리한 후 2 %의 agar를 함유한 재생배지에 중층도말 하였을 때 형질전환율이 가장 높았다. 형질전환주로부터 생성된 amylase의 활성을 측정한 결과, S. cerevisiae에서 약간의 amylase활성을 나타내어 최고 B. amyloliquefaciens의 2% 정도였고, 세포외효소는 검출되지 않았다. 이들 형질전환 주가 가지고 있는 pEA24 plasmid의 안정성을 조사한 결과 YRp7보다 불안정하였으며, 추출한 DNA를 전기영동하여 그 band를 확인하였다.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제16권2호
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• pp.136-141
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• 1988

고온 발효성인 Saccharomyces cerevisiae D-71과 내삼투압성인 Zygosaccharomyces rouxii SR-S를 여러 조건에서 배양하여 Zymolyase-20T에 대한 감수성을 조사하였다. Sacch. cerevisiae D-71의 glucan과 mannan 함량은 각각 l4.5%와 14.8% 이었고 Zygosacch. rouxii SR-S는 24.0%와 19.0% 이었다. 0.5% methionine 과 0,1% glucose를 함유한 wickerham 합성배지에 Sacch. cerevisiae D-71를 배양하여 얻은 세포의 Zymolyase-20T에 대한 감수성은 66% 이었고 $K_2$HPO$_4$와 aminobenzoic acid를 결핍시켰을 때 감수성이 가장 낮았다. 또한 0.5% peptone과 o.15% methionine 및 0.1% glucose를 함유한 wickerham 합성배지에 Zygosacch. rouxii SR-S를 배양하여 얻은 세포의 감수성은 80% 이었고 KI와 pyridoxine을 결핍시켰을 때 감수성이 가장 낮았다. $25^{\circ}C$에서 YMPG 배지에 Sacch. cerevisiae D-71를 접종하여 12시간 정치배양한 세포의 Zymolyase-20T에 대한 감수성은 76% 이었고 Zygosacch. reuxii SR-S를 같은 조건으로 30시간 배양한 세포의 감수성은 82%로서 wickerham 합성배지에서의 감수성보다 더 좋았다.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제30권4호
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• pp.293-297
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• 2002

효모 S. cerevisiae에서 B. stearothermophilus 유래의 CGTase를 발현 생산하였으며, 분비, 생산된 단백질을 정제하여 그 특성을 조사하였다. 재조합 효모 S. cerevisiae 2805/pVT- CGTS가 생산하는 CGTase의 분자량은 효모에서 발현될 때 고당쇄가 부가되어 야생형의 68kDa에 비해 15-160% 증가된 약 78-178 kDa으로 나타났다. 효모 S. cerevisiae에서 발현된 CGTase의 효소반응 최적활성조건은 pH7.0, $65^{\circ}C$였고, 열안정성에 있어서 $75^{\circ}C$에서 약 90%의 잔존활성을 가질 정도로 내열성이 개선되었다. 효모 S. cerevisiae에서 발현된 CGTase는 5% soluble starch를 기질로 약 40.2%의 CD 전환율 및 3 : 6 : 1의 $\alpha$-, $\beta$-, ${\gamma}$-CD의 생산 비율을 나타내어 야생형과 별다른 변화가 없었다.

• 한국환경보건학회지
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• 제23권4호
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• pp.21-25
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• 1997

A study on the removal of mercury by Saccharomyces cerevisiae and Aureobasidium pullulans was done, in which the model of adsorption isotherm and adsorption rate was proposed. The adsorption isotherm of mercury by S. cerevisiae was accorded with Langmuir model but A. pullulans was followed to Freundlich model. The amount of mercury removed by A. pullulans was higher than that of S. cerevisiae, but the adsorption rate of mercury by A. pullulans was slower than that of S. cerevisiae. In a rapid adsorption process, therefore, it is more useful to use S. cerevisiae as a biosobent.

• 미생물학회지
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• 제40권2호
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• pp.73-80
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• 2004

Coenzyme Q는 지용성 퀴논 유도체로서 미토콘드리아의 내막과 원핵생명체의 세포막에 위치하는 전자전달계에서 전자 운반체로 이용되며 또한 항산화제의 기능도 갖는다. Coenzyme Q의 생합성에 관여하는 Saccharomyces cerevisiae의 coq4 유전자에 유사성을 나타내는 Neurospora crassa coq-4유전자를 클로닝하여 S. cerevisiae coq4 돌연변이체에서 기능적으로 발현하였다. 상보된 S. cerevisiae 균주들은 coenzyme $Q_{6}$의 생산능력을 회복하였으며 정상적인 성장률을 보였다. 또한 linoleic acid 및 linolenic acid와 같은 불포화지방산에 대한 낮은 감수성을 보였다. N. crassa의 COQ4 단백질은 39.7 kDa의 분자량을 갖는 347개의 아미노산으로 구성되어 있는 것으로 예상되며, S. cerevisiae의 Coq4p와 35%의 일치도 및 52%의 유사도를 보인다.

• 한국미생물·생명공학회지
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• 제16권2호
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• pp.131-135
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• 1988

Lactobacillus acidophilus KFCC12731과 Saccharomyces cerevisiae KFCC32017을 두유 배지에 접종하여 산생성 조건을 검토하였다. L. acidophilus를 단독배양하는 것보다 S. cerevisiae와 혼합배양하는 것이 산생성이 많았다. 이 두 균을 대두유 배지에 혼합배양하였을 경우 최적조건은 다음과 같았다. 두유에 sucrose를 1,5% 또는 skim milk를 2.0~3.0% 첨가하고 L. acidophilus와 S. cerevisiae의 접종비율은 OD 600 값으로 3 : 7~8 : 2가 되게 접종하여 34$^{\circ}C$에서 12시간 이상 배양할 때 산생성이 최대가 되었다.

• Food Science and Biotechnology
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• 제17권6호
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• pp.1160-1164
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• 2008

An novel amylolytic yeast, Saccharomyces cerevisiae HA 27, isolated from nuruk, displayed resistance against high sugar (50% glucose) and alcohol (15%). Maximal production of amylolytic enzyme by S. cerevisiae HA 27 was achieved on 9 days of cultivation at the optimal temperature $20^{\circ}C$ and pH 6.0. The activity of amylolytic enzyme produced by S. cerevisiae HA 27 was stable, even at $70^{\circ}C$, and over a broad pH range (4.0-11.0). Also, the amylolytic enzyme of S. cerevisiae HA 27 showed optimal activity in pH 5.0 at $50^{\circ}C$. S. cerevisiae HA 27 exhibited 6.2%(v/v) alcohol fermentation ability using starch as a carbon source.

• 한국생물공학회:학술대회논문집
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• 한국생물공학회 2003년도 생물공학의 동향(XIII)
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• pp.753-757
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• 2003

외래 단백질 생산을 위한 숙주로는 Escherichia coli 및 Saccharomyces cerevisiae를 포함한 효모 균주들이 이용되어져 왔다. S. cerevisiae는 대장균에 비해 단백질의 접힘과 분비 능력이 우수하며, 안전한 균주(GRAS)로 알려져 있다. 그러나 S. cerevisiae의 단점은 대장균의 외래 단백질 발현양의 20% 이하 수준의 낮은 외래 단백질 발현율에 있다. 본 연구에서는 S. cerevisiae에서 외래 단백질의 발현을 향상시키기 위해 GAP promoter를 대상으로 분자진화를 수행하였으며, 이 결과 발현율이 360% 증가된 GAP promoter 변이체를 획득하였다.

• 한국식품과학회지
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• 제27권6호
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• pp.878-884
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• 1995

본 연구는 유청을 에탄올 발효에 이용하기 위하여 유청에 함유된 유당을 ${\beta}-D-galactosidase$로 가수분해한 후 Saccharomyces cerevisiae와 Kluyveromyces fragilis의 발효 조건을 비교하였으며, 효모의 특성인 pasteur effect를 이용하여 용존 산소의 조절에 의한 유청에서의 K. fragilis와 S. cerevisiae의 에탄올 발효 조건을 실험하였다. 또한 탁주의 제조에 에탄올 발효된 유청을 용수에 혼합, 응용하기 위한 최적 조건을 조사하였다. pH6.5로 조절된 유청에 0.7%(v/v)의 ${\beta}-D-galactosidase$를 첨가하여 30분만에 93%의 유당이 가수분해 되었다. 이를 배지로 이용하여 에탄올 발효한 결과 S. cerevisiae는 galactose를 이용하지 못하므로 에탄올 생산력이 K. fragilis에 비하여 낮았으나 glucose를 첨가한 배지에서는 S. cerevisiae의 에탄올 생산량이 K. fragilis 보다 증가하였다. 용존 산소를 조절하고 glucose를 첨가하여준 실험에서는 K. fragilis와 S. cerevisiae의 에탄올 생산량이 각각 18.9 g/l와 34.5 g/l로 에탄올 생산량이 11.8% 22.1% 증가하였다. 즉 용존산소를 조절한 조건에서는 S. cerevisiae의 에탄올 생산력이 더 우수하였다. 미분을 첨가한 에탄올 발효에서는 Aspergilus oryzae가 발효 60시간만에 80% 이상의 당화력을 보였으며, 이때 생산되는 에탄올의 양은 80.2 g/l였다.