Recombinant growth hormone (GH) is an effective treatment for short children who are born small for gestational age (SGA). Short children born SGA who fail to demonstrate catch-up growth by 2-4 years of age are candidates for GH treatment initiated to achieve catch-up growth to a normal height in early childhood, maintain a normal height gain throughout childhood, and achieve an adult height within the normal target range. GH treatment at a dose of $35-70{\mu}g/kg/day$ should be considered for those with very marked growth retardation, as these patients require rapid catch-up growth. Factors associated with response to GH treatment during the initial 2-3 years of therapy include age and height standard deviation scores at the start of therapy, midparental height, and GH dose. Adverse events due to GH treatment are no more common in the SGA population than in other conditions treated with GH. Early surveillance in growth clinics is strongly recommended for children born SGA who have not caught up. Although high dose of up to 0.067 mg/kg/day are relatively safe for short children with growth failure, clinicians need to remain aware of long-term mortality and morbidity after GH treatment.
Human growth hormone (hGH) forms antibody by repeated administration. The present study investigated to confirm formation of antibody by repeated subcutaneous administration of hGH for two months in rats and dogs. In this result, hGH-injected sera were significantly higher than control sera by 1:1,000,000 of dilution factor. After antibody formed sera (anti-hGH sera) and control sera were added to 30 $\mu\textrm{g}$/ml hGR, the complex incubated for overnight at $30^{\circ}C$. Anti-hGH sera decreased hGH contents about 90% compared to control sera. Also, body weight gain conducted decreased about 67% compared to control sera in hypophysectomised rat. Inconclusion, repeated administration of hGH formed antibody because hGH was foreign protein to rats and dogs. And formed antibody of hGH was blocked and decreased many efficacy of hGH, the antibody was proved to be neutralizing antibody. Thus, because neutralizing antibodies were decreased pharmacological effects of hGH, administration more than two months were no significance.
Kim, Jinsup;Yang, Aram;Cho, Sung Yoon;Jin, Dong-Kyu
Journal of mucopolysaccharidosis and rare diseases
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제3권2호
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pp.41-43
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2017
Prader-Willi syndrome (PWS) is a genetic disorder that is considered, especially on child, to cause poor feeding, hypotonia, failure to thrive, developmental delay and hypogonadism which is known to affect between 1 in 10,000 and 30,000 people. The children with PWS are viewed as affected by growth hormone (GH) insufficiency, although the exact mechanisms of GH deficiency are not fully understood. However, the benefits of GH treatment in children with PWS are well established. Myers, et al. (2006), Grugni, et al. (2016) indicated its positive effects on linear growth, body composition, motor function, respiratory function and psychomotor development. Despite of its effectiveness and advantages had been well known and proven in many other studies, there is only one recombinant GH product that is approved for PWS in Korea, $Genotropin^{(R)}$, till now. A phase III clinical study of GH treatment with $Eutropin^{TM}$, in 34 Korean PWS children is in progress, which is expected to have comparable effects and safety profile with the active control by assessing auxological changes such as height standard deviation score, body composition changes such as lean body mass and percent body fat, motor and cognitive development using Bayley scale, and safety profiles.
Park, Jin-Sung;Lee, Beom-Jun;Kang, Kyung-Sun;Tai, Joo-Ho;Cho, Jae-Jin;Cho, Myung-Haing;Inoue, Tohru;Lee, Yong-Soon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제10권3호
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pp.293-299
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2000
Many methods have been developed for screening chemicals with hormonal activity. Using recombinant yeasts expressing either human estrogen receptor [Saccharomyces cerevisiae ER + LYS 8127 (YER)] or androgen receptor [S. cerevisiae AR + 8320 (YAR)], we evaluated the hormonal activities of several chemicals by induction of ${\beta}-galactosidase$ activity. The chemicals were $17{\beta}-estradiol$ (E2), testosterone (T), ${\rho}-nonylphenol$ (NP), bisphenol A (BPA), genistein (GEN), 2-bromopropane (2-BP), dibutyl phthalate (DBP), di-(2-ethylhexyl) phthalate (DEHP), 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD), and butylparaben (BP). To assess the estrogenicity of NP, the result of the in vitro recombinant yeast assay was compared with an E-screen assay using MCF-7 human breast cancer cells and an uterotrophid assay using ovariectomized mice. In the YER yeast cells, E2, NP, BPA, GEN, and BP exhibited estrogenicity in a doseresponse manner, while TCDD did not. All the chemicals tested, except T, did not show androgenicity in the YAR yeast cell. The sensitivity of the yeast (YER) assay system to the estrogenic effect of NP was similar to that of the E-screen assay. NP was also estrogenic in the uterotrophic assay. However, in terms of convenience and costs, the yeast assay was superior to the E-screen assay or uterotrophic assay. These results suggest that the recombinant yeast assay can be used as a rapid tool for detecting chemicals with hormonal activities.
Human insulin is a hormone well-known to regulate the blood glucose level. Recombinant preproinsulin, a precursor of authentic insulin, is typically produced in E. coli as an inactive inclusion body, the solubilization of which needs the addition of reducing agents such as $\beta$-mercaptoethanol. To make authentic insulin, recombinant preproinsulin is modified enzymatically by trypsin and carboxypeptidase B. The effects of $\beta$-mercaptoethanol on the formation of human insulin derivatives were investigated in the enzymatic modification by using commercially available human proinsulin as a substrate. Addition of 1 mM $\beta$-mercaptoethanol induced the formation of various insulin derivatives. Among them, the second major one, impurity 3, was found to be identical to the insulin B chain fragment from $Phe_1$ to $Glu_{21}$. Minimization of the formation of insulin derivatives and concomitant improvement of the production yield of human insulin were achieved by the addition of hydrogen peroxide. Hydrogen peroxide bound with $\beta$-mercaptoethanol and thereby reduced the negative effects of $\beta$-mercaptoethanol considerably. Elimination of the impurity 3 and other derivatives by the addition of over 10 mM hydrogen peroxide in the presence of $\beta$-mercaptoethanolled to a 1.3-fold increase in the recovery efficiency of insulin, compared with those for the case without hydrogen peroxide. The positive effects of hydrogen peroxide were also confirmed with recombinant human preproinsulin expressed in recombinant E. coli as an inclusion body.
Lee, Dayong;Han, Soo Jin;Kim, Seul Ki;Jee, Byung Chul
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제45권4호
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pp.183-188
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2018
Objective: The purpose of this retrospective study was to evaluate the appropriateness of various follicle-stimulating hormone (FSH) starting doses in expected normal responders based on the nomogram developed by La Marca et al. Methods: A total of 117 first in vitro fertilization cycles performed from 2011 to 2017 were selected. All women were expected normal responders and used a recombinant FSH and flexible gonadotropin-releasing hormone antagonist protocol. The FSH starting dose was empirically determined (150, 225, or 300 IU). The FSH starting dose indicated by La Marca's nomogram was determined using female age and serum $anti-M{\ddot{u}}llerian$ hormone or basal FSH levels. If the administered dose was exactly the same as the proposed dose, the cycle was assigned to the concordant group (34 cycles). If not, it was assigned to the discordant group (83 cycles). Optimal ovarian response was defined as a total of 8-14 oocytes, hypo-response as < 8 oocytes, and hyper-response as > 14 oocytes. Results: Between the concordant and discordant group, ovarian response (optimal, 32.4% vs. 27.7%; hypo-response, 55.9% vs. 54.2%; and hyper-response, 11.8% vs. 18.1%) and the number of total or mature oocytes were similar. Ovarian hyperstimulation syndrome was rare in both groups (0% vs. 1.2%). The implantation rate, clinical pregnancy rate, miscarriage rate, and live birth rate were all similar. Conclusion: The use of the proposed FSH starting dose determined using La Marca's nomogram did not enhance the optimal ovarian response rate or pregnancy rate in expected normal responders. Individualization of the FSH starting dose by La Marca's nomogram appears to have no distinct advantages over empiric choice of the dose in expected normal responders.
Previous studies showed that recombinant equine chorionic gonadotropin ($rec-eCG{\beta}/{\alpha}$) exhibits both follicle-stimulating hormone (FSH) and luteinizing hormone (LH)-like activities in rat LHR- and FSHR-expressing cells. In this study, we analyzed signal transduction by eelFSHR and eelLHR upon stimulation with $rec-eCG{\beta}/{\alpha}$ and native eCG. The cyclic adenosine monophosphate (cAMP) stimulation in CHO-K1 cells expressing eelLHR was determined upon exposure to different doses (0-1,450 ng/mL) of $rec-eCG{\beta}/{\alpha}$ and native eCG. The $EC_{50$ values of $rec-eCG{\beta}/{\alpha}$ and native eCG were 172.4 and 786.6 ng/mL, respectively. The activity of $rec-eCG{\beta}/{\alpha}$ was higher than that of native eCG. However, signal transduction in the CHO PathHunter Parental cells expressing eelFSHR was not enhanced by stimulation with both agonist $rec-eCG{\beta}/{\alpha}$ and native eCG. We concluded that $rec-eCG{\beta}/{\alpha}$ and native eCG were completely active in cells expressing eelLHR, similar to the activity in the mammalian cells expressing LHRs. However, $rec-eCG{\beta}/{\alpha}$ and native eCG did not invoke any signaling response in the cells expressing eelFSHR. These results suggest that eCG has a potent activity in cells expressing eelLHR. Thus, we also suggest that $rec-eCG{\beta}/{\alpha}$ can induce eel maturation by administering gonadotropic reagents (LH), such as salmon pituitary extract.
NA KYU HEUM;KIM SEUNG CHUL;SEO KWANG SEOK;LEE SUNG HEE;KIM WON BAE;LEE KANG CHOON
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제15권2호
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pp.395-402
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2005
Biologically active recombinant human follicle stimulating hormone (rhFSH) was produced in Chinese hamster ovary cells and purified by a series of chromatographic steps. The chromatographic steps included anion-exchange chromatography (DEAE Sepharose F/F, Q Sepharose F/F), hydrophobic interaction chromatography (Source 15 PHE), and hydroxyapatite chromatography (Macro-Prep ceramic hydroxyapatite type I). A distinctive step of the purification process developed was the use of ZnCl$_2$ for the removal of non-glycosylated or lowly-glycosylated FSH and impurities through co-precipitation with Zn$^{2+}$. Purified rhFSH was identified and characterized by several physicochemical and biological methods such as gel electrophoresis, high-performance liquid chromatography, amino acid analysis, carbohydrate analysis, and biological activity. The overall yield of the purification was ~$30\%$. The rhFSH preparation obtained showed high purity (>$99\%$) and high in vivo potency (>16,000 IU/mg). Carbohydrate analysis suggested that the purified rhFSH contained approximately $40\%$ (w/w) carbohydrate with dior tri-antennary structure on average, which is somewhat more heavily sialylated than commercially available rhFSH. In conclusion, the results of these analyses established an identity of the purified rhFSH with natural FSH from human pituitary glands, and furthermore, the purified rhFSH preparation showed higher in vivo potency and was slightly more heavily sialylated than commercially available rhFSH.
The complexity and variability of both the biologicals and the bioassays used to test them led to the use of the reference standard- a sample of the product of defined purity and potency, against which all preparations of that product must be calibrated. In order to prepare and establish KFDA reference standard for recombinant human growth hormone (somatropin), somatropin substance was filled in ampoules in National Institute for Biological Standards and Control (NIBSC). The candidate KFDA reference standard for somatropin (designated as 98/674) was evaluated to determine the suitability of serving as a KFDA reference standard for somatropin by the collaborative study, in which 10 laboratories participated. Physicochemical analysis and in vivo bioassay were performed by direct comparison with the international somatropin standard 88/624. 98/674 was identified as somatropin by SDS-PAGE, IEF, peptide mapping, and HPLC. Determination of somatropin content by SE-HPLC yielded a mean estimate of 2.01 mg somatropin per ampoule. Data from the study also yielded mean values of 0.39 $\pm$ 0.26% for high molecular weight impurities by SE-HPLC and mean values of 2.13 $\pm$ 1.29% for somatropin related proteins by RP-HPLC. Estimates of relative potency by weight gain bioassay in the hypophysectomised rats showed that relative potency of KS 98/674 was 1.07 aganist IS 88/624. Based on the results of the collaborative study, the candidate reference standard for somatropin is suitable to serve as a KFDA reference standard for somatropin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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