The purpose of this study was to research the whitening effects of the extract from Angelica gigas Nakai, which is one of the most widely used herbal medicines in Asia. For whitening effects, the tyrosinase inhibition effect of the A. gigas Nakai extract was shown to be greater than 70% at 1,000 ${\mu}g/ml$ concentration. The result of measuring the cell toxicity effect of the extract from A. gigas Nakai on melanoma cells showed 99% toxicity at 500 ${\mu}g/ml$ concentration. The microphthalmia-associated transcription factor (MITF), tyrosinase related protein-1 (TRP-1), tyrosinase related protein-2 (TRP-2), and tyrosinase mRNA expression inhibitory effect by reverse transcription-PCR of the extract from A. gigas Nakai were decreased by 85.7%, 123.9%, 68.8%, and 208%, respectively, at 50 ${\mu}g/ml$ concentration. All these findings could verify that extract from A. gigas Nakai could have an effect on whitening. Moreover, extract from A. gigas Nakai has great potential as a cosmetic ingredient.
Expression of monokine induced by IFN-$\gamma$(Mig) mRNA is well-known to strictly depend on Interferon-$\gamma$(IFN-$\gamma$). Lipopolysaccharide (LPS) alone Is weakly effective on Mig mRNA expression in mouse Peritoneal macrophages. This study was undertaken to investigate the synergistic effect of LPS and IFN-$\beta$ on chemokine Mig gene expression in mouse peritoneal macrophages. Although IFN-$\beta$ alone was minimally effective, LPS plus IFN-$\beta$ synergized to produce a high level of Mig mRNh. The synergistic effect of LPS and IFN-$\beta$ (LPS/IFN-$\beta$) on Mig mRNA expression was strain-specific. The most effective synergistic effect of LPS/IFN-$\beta$ on the mRNh expression was found in simultaneous stimulation of LPS/IFN-$\beta$. This synergy was modulated at the level of the gene transcription and was not dependent on a new protein synthesis. Synergistic effect of LPS/IFN-$\beta$ also required the activation of $NF-_KB$. Accordingly, these data suggest that LPS/IFN-$\beta$ synergizes the expression of Mig mRNA through a process that depends on a pretranscriptional level and/or coincident Mig mRNA transcription.
Both direct and indirect environmental stress to brain were increase the expression of transcription factor c-fos in various populations of neurons. In this study, we examined whether the intraperitoneal injections of lidocaine at doses inducing convulsion within 10 min increased the level of c-fos mRNA and protein in forebrain areas. In situ hybridization using $[^{35}S]UTP-labeled$ antisense c-fos, cRNA increased c-fos mRNA levels though hippocampal formation, piriform cortex, septum, caudate-putamen, neostriatum, and amygdala within 2 hr. In parallel with the mRNA expression, c-FOS protein immunoreactivity was also observed in the same forebrain areas. In contrast to the seizure activity and widespread neuronal degeneration following a kainate treatment, injections of lidocaine did not produce neuronal death within 3 days. The present study indicates that lidocaine induces convulsion and c-fos expression without causing neurotoxicity.
Bacteriophage N4, a lytic phage specific for Esherichia coli K12 strain encodes single-stranded DNA-binding protein, N4SSB (bacteriophage N4-coded single-stranded DNA-binding protein). N4SSB protein is originally identified as a protein required for N4 DNA replication. N4SSB protein is also required for N4 late transcription, which is catalyzed by E. coli ${\sigma}^{70}$ RNA polymerase. N4 late transcription does not occur until N4SSB protein is synthesized. Recently it is reported that N4SSB protein is essential for N4 DNA recombination. Therefore N 4SSB protein is a multifunctional protein required for N4 DNA replication, late transcription, and N4 DNA recombination. In this study, a variety of mutant N4SSB proteins containing internal deletions or substitutions were constructed to define and characterize domains important for N4 DNA replication, late transcription, and N4 DNA recombination. Test for the ill vivo activity of these mutant N4SSBs for N4 DNA replication, late transcription, and N4 DNA recombination was examined. The results suggest that C-terminal 7 amino acid residues are important for the activity of N4SSB. Three lysine residues, which are contained in this region play important roles on N4SSB activity.
Kim, Eun-Mi;Jueson Maeng;Lim, Yong-Pyo;Yoonkang Hur
Journal of Photoscience
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v.7
no.2
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pp.73-78
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2000
To analyze molecular traits determining pigmentation between Pharbitis nill violet and white, Amplified Fragment Length Polymorphism(AFLP) and Differential Display Reverse Transcription(DDRT) experiments were carried out with either genomic DNAs or total RNAs isolated from both plants. Results of AFLP experiment in combination of 8 EcoRⅠ primers with 6 MseⅠ primers showed 41 violet-and 60 white-specific DNA bands. In the subsequent experiment, 22 violet-and 22 white-specific DNA fragments were amplified by PCR with DNAs eluted. The sizes of the fragments range from 200 to 600bp. DDRT using total RNA produced 19 violet-and 17 white-specific cDNA fragments, ranging from 200 to 600bp. The fragments obtained by both AFLP and DDRT had been cloned into pGEM T-easy vector, amplified and subjected to the nucleotide sequence analyses. As a result of Blast sequence analysis, most of them sequenced up to date showed no similarity to any Known gene, while few has similarity to known animal or plant genes. An AFLP clone V6, for example, has a strong sequence similarity to the human transcription factor LZIP-alpha mRNA and a DDRT clone W19 to Solanum tuberosum 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase mRNA.
Objective: Specific genomic sites can be recognized and permanently modified by genome editing. The discovery of endonucleases has advanced genome editing in pigs, attenuating xenograft rejection and cross-species disease transmission. However, off-target mutagenesis caused by these nucleases is a major barrier to putative clinical applications. Furthermore, off-target mutagenesis by genome editing has not yet been addressed in pigs. Methods: Here, we generated genetically inheritable α-1,3-galactosyltransferase (GGTA1) knockout Yucatan miniature pigs by combining transcription activator-like effector nuclease (TALEN) and nuclear transfer. For precise estimation of genomic mutations induced by TALEN in GGTA1 knockout pigs, we obtained the whole-genome sequence of the donor cells for use as an internal control genome. Results: In-depth whole-genome sequencing analysis demonstrated that TALEN-mediated GGTA1 knockout pigs had a comparable mutation rate to homologous recombination-treated pigs and wild-type strain controls. RNA sequencing analysis associated with genomic mutations revealed that TALEN-induced off-target mutations had no discernable effect on RNA transcript abundance. Conclusion: Therefore, TALEN appears to be a precise and safe tool for generating genomeedited pigs, and the TALEN-mediated GGTA1 knockout Yucatan miniature pigs produced in this study can serve as a safe and effective organ and tissue resource for clinical applications.
Formation of inclusion bodies is usually observed when foreign proteins are overexpressed in E. coli. The formation of inclusion bodies might be prevented by lowering the rate of protein synthesis, and appropriate regulation of the protein expression rate may lead to the soluble expression. In this study, human growth hormone (rhGH) was expressed in a soluble form by slowing down the protein synthesis rate, which was controlled in the transcriptional and translational levels. The transcriptional level was controlled by the regulation of the amount of RNA polymerase specific to the promoter in front of the rhGH gene. For lowering the rate of translation, the T7 transcription terminator-deleted vector was used to synthesize the longer mRNA of the target gene because the longer mRNA is expected to reduce the availability of tree ribosomes. In both methods, the percentage of soluble expression increased when the expression rate slowed down, and more than 93% of rhGH expressed was a soluble form in the T7 transcription terminator-deleted expression system.
This paper describes the development a of direct multiplex reverse transcription-nested polymerase chain reaction (PCR) method, devised for simultaneous detection and typing of influenza viruses. This method combines the direct reverse transcription reaction without RNA purification with the enhancement of sensitivity and specificity of nested PCR. The method successfully detected three major human influenza viruses: influenza virus A subtype 1 (H1N1) and subtype 3 (H3N2), and influenza B virus (B). The minimum number of virus particles (pfu/ml) necessary for detection in spiked saliva samples was 200 (H1N1), 140 (H3N2), and 4.5 (B). The method's sensitivity and simplicity will be convenient for use in clinical laboratories for the detection and subtyping of influenza and possibly other RNA viruses.
Getah virus (GETV) infection causes sporadic outbreaks of mild febrile illness in horses and reproductive failure in pigs. In this study, we established a reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) method to detect GETV from suspected virus-infected samples. The reaction conditions were optimized and validated by using RNA extracted from GETV propagated in cell culture. A GETV-specific GED4 primer set was designed and used to amplify a 177 bp DNA fragment from a highly conserved region of the E1 glycoprotein gene in the GETV genome. RT-PCR performed with this primer set revealed high sensitivity and specificity. In the sensitivity test, the GED4 primer set detected GETV RNA at the level of $10^{2.0}\;TCID_{50}/mL$. In the specificity test, the GED4 primer set amplified only a single band of PCR product on the GETV RNA template, without non-specific amplification, and exhibited no cross-reactivity with other viral RNAs. These results suggest that this newly established RT-PCR method is useful for accurate identification of GETV infection in animals.
Kim, Ju-Kon;Sohn, Seong-Han;Lee, Sug-Soon;Hwang, Young-Soo;Park, Jong-Sug
Applied Biological Chemistry
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v.38
no.6
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pp.522-527
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1995
To develop an antiviral agent for the rice black-streaked dwarf virus (RBSDV), a hammerhead type ribozyme, which has a potential target site on the genome segment 3, was designed. Oligonucleotides for the ribozyme and its substrate were synthesized, annealed, and cloned into a plasmid pBluescript II KS(+). Ribozyme and substrate RNAs were then synthesized by in vitro transcription with $T_3$ RNA polymerase, obtaining RNAs in expected size, 193 and 182 nucleotides, respectively. The substrate RNA was efficiently cleaved into two fragments when incubated with the ribozyme at $55^{\circ}C$, while the cleavage was not detected at $37^{\circ}C$. In addition, the segment 3 RNA of RBSDV was also cleaved into two fragments by the same ribozyme at $55^{\circ}C$. Taken together, our results demonstrated that the hammerhead ribozyme has an in vitro endonucleolytic activity and may be used as an antiviral agent in transgenic plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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