Caviedes, Miguel A.;Thornburg, Robert W.;Park, Sang-Gyu
Applied Biological Chemistry
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v.40
no.4
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pp.271-276
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1997
We have prepared several chimeric constructs containing the bacteriophage T7 RNA polymerase gene under control of the wound-inducible potato proteinase inhibitor II (pin2) promoter and have transformed Nicotiana tabacum plants with these constructs. Southern blot analyses indicate that either one or two copies of the gene constructs are present in the transgenic plants. Northern blot analyses indicate that mRNA encoding T7 RNA polymerase is expressed in a wound-inducible manner. We purified T7 RNA polymerase and prepared antiserum. This antiserum was used for Western blot analyses to demonstrate that a protein which is cross reactive with T7 RNA polymerase is produced. The molecular mass of this protein is 80 kDa, a size which is consistant with the nicked form of the polymerase as is often seen when expressed in E. coli. RNA polymerase assays were used to indicate that the nicked form of T7 RNA polymerase is active and capable of incorporating labeled nucleotides into transcripts in vitro. Analysis of transgenic plants did indeed show that wound-inducible activation of the T7 RNA polymerase permits the establishment of a genetic system to overexpress genes in plants using T7 RNA polymerase(Received March 20, 1997; accepted May 2, 1997)
Polyclonal antibodies against human DNA-dependent RNA polymerase II (HPP II) were generated from chicken egg yolk after immunization with RNA polymerase II as an antigen. The antibodies from egg yolk (IgY) were purified and characterized. IgY showed a specificity against DNA-dependent RNA polymerase II, and was a polyclonal antibody against 12 subunits of polymerase II. An amount of 0.35 mg of IgY was obtained freman HPP II-Sepharose affinity column using 10 eggs from a chicken immunized against RNA polymerase II as an antigen. These antibodies can be used for isolating the genes for RNA polymerase II components, and for in vitro transcription assays using HP-RNA polymerase II.
Using the PCR(polymerase chain reaction method), gone 1 of phage K11 coding for K11 phage RNA polymerase has been cloned and expressed under the control of lac promoter. K11 phage RNA polymerase was conventionally purified through the DEAE-sephacel and Affigel blue column chromatographies. The 0.2-0.3 M $NH_4Cl$ fractions of DAEA-sephacel column chromatography showed K11 phage RNA polymerase activity and further purification with Affigel blue column chromatography showed nearly single protein band on SDS-polyacryl amide gel. K11 phage RNA polymerase, which is one of the T7 group phage RNA polymerase (E. coil phage T7, T3 and Salmonella tyhimurium phage SP6 RNA polymerase), shares high degrees of homology with the other T7 group phage RNA polymerase. Previously we constructed T7 and SP6 promoter variants and revealed promoter specificity of T7 and SP6 RNA polymerase (Lee and Kang, 1993). To investigate the promoter specificity of K11 RNA polymerase in vitro K11 promoter activity was measured with SP6 promoter variants. The SP6 promoter variant share highest degrees of sequence homology with K11 promoter sequence show strongest promoter activity.
Embryonic genome activation (EGA) is the first major transition that occurs after fertilization, and entails a dramatic reprogramming of gene expression that is essential for continued development. Although it has been suggested that EGA in porcine embryos starts at the four-cell stage, recent evidence indicates that EGA may commence even earlier; however, the molecular details of EGA remain incompletely understood. The RNA polymerase II of eukaryotes transcribes mRNAs and most small nuclear RNAs. The largest subunit of RNA polymerase II can become phosphorylated in the C-terminal domain. The unphosphorylated form of the RNA polymerase II largest subunit C-terminal domain (IIa) plays a role in initiation of transcription, and the phosphorylated form (IIo) is required for transcriptional elongation and mRNA splicing. In the present study, we explored the nuclear translocation, nuclear localization, and phosphorylation dynamics of the RNA polymerase II C-terminal domain in immature pig oocytes, mature oocytes, two-, four-, and eight-cell embryos, and the morula and blastocyst. To this end, we used antibodies specific for the IIa and IIo forms of RNA polymerase II to stain the proteins. Unphosphorylated RNA polymerase II stained strongly in the nuclei of germinal vesicle oocytes, whereas the phosphorylated form of the enzyme was confined to the chromatin of prophase I oocytes. After fertilization, both unphosphorylated and phosphorylated RNA polymerase II began to accumulate in the nuclei of early stage one-cell embryos, and this pattern was maintained through to the blastocyst stage. The results suggest that both porcine oocytes and early embryos are transcriptionally competent, and that transcription of embryonic genes during the first three cell cycles parallels expression of phosphorylated RNA polymerase II.
Kim, Eun-Kyoung;Youn, Hye-Sook;Koo, Yong-Bom;Roe, Jung-Hye
Journal of Microbiology
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v.35
no.4
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pp.264-270
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1997
The structure of plasmid mlp1, a linear 10.2kb mitochondrial plasmid of Pleurotus ostreatus NFF A2 was determined by restriction enzyme mapping and partial sequencing. The plasmid encodes at least two proteins; a putative RNA polymerase showing homology to yeast mitochondrial RNA polymerase and to viral-encoded RNA polymerases, and a putative DNA polymerase showing significant homology to the family B thpe DNA polymerases. It also contains terminal inverted repeat sequences at both ends which are longer than 274 bp. A 1.6 kb EcoRI restriction fragment of m1p1 containing the putative RNA polymerase gene did not hybridize to the nuclear or motochondrial genomes from P. ostreatus, suggesting that it may encode plasmidspecific RNA polymerase. The gene fragment also did not hybridize with the RNA polymerase gene (RPO41) from Saccaromyces cerevisiae. The relationship between genes in m1p1 and those in another linear plasmid pC1K1 of Claviceps purpurea was examined by DNA hybridization. The result indicates that the genes for DNA and RNA polymerases are not closely related with those in C. purpurea.
Bifidobacterium bifidum OFR9 that exhibits acquired resistance to rifampicin and fluoroquinolones was selected by MNNG and multi-step mutation method. To investigate the resistance mechanism to rifampicin in the strain, RNA polymerase from B. bifidum parent strain and rifampicin-resistance OFR9 was partially purified and its sensitivity to rifampicin was assayed. The profile of RNA polymerase preparation of B. bifidum parent and B. bifidum OFR9 is similar to that of E. coli RNA polymerase that includes the basic subunits of ${\beta}$`, ${\beta},\;{\sigma},\;{\alpha}$ but which are a little different in size when they are compared with E. coli RNA polymerase subunits. RNA polymerase isolated from the parent strain was inhibited by 1${\mu}$g/ml rifampicin but that from B. bifidum OFR9 was not affected by 100${\mu}$g/ml concentration of rifampicin. RNA polymerase activity of B. bifidum OFR9 was maintained over 90% through that rifampicin concentration. This result is consistent with MIC values of in vitro test. It can be concluded that the mechanism of rifampicin resistance in B. bifidum OFR9 is due to an alteration of RNA polymerase.
Complementary DNA of the genomic RNA of odontoglossum ringspot virus Cymbidium strain (ORSV-Cy) was synthesized from polyadenylated viral RNA and cloned. Selected clones containing the viral RNA-dependent RNA polymerase gene of the virus has been sequenced by automated sequencing system. The complete nucleotide sequence of an open reading frame is 1377 base pairs in length, and encodes a protein of 458 amino acids about 52, 334 D. The 52 kD protein of ORSV shares four sequence motifs characteristic of viral RNA-dependent RNA polymerase. Comparison of the ORSV 52 kD protein sequence with that of other five viruses in tobamovirus group showed 76.0 to 60.7% homologies at the amino acid level and the conservation of the four motifs betwen the viruses.
T7 RNA polymerase is a single subunit RNA polymerase able to accomplish whole transcription process without auxiliary factors. In order to study transcription elongation mechanism of phage T7 RNA polymerse, stepwise walking of RNA polymerase was established by immobilizing biotinylated DNA template with streptavidin bead, series of active and stable elongation complexes were obtained, Transcripts were radio isotope labeled at the 16thm 17th and 18th nucleotide residues so stable elongation transcription complex of T7 RNA polymerase containing 22-40 nucleotide residues could be identified. We identified the positions of stablely formed transcription elongation complexes of termination site in intrinsic hairpin-independent PTH terminator sequence through the established stepwise walking of wild-type of mutant R173C T7 RNA polymerases. The results suggest that stable elongation transcription complexes were at the site of passing PTH terminator signal by mutant R173C RNA polymerase.
Dendrolimus punctatus tetravirus (DpTV) has been identified as a new member of the genus Omegatetravirus of the family Tetraviridae that may be related serologically to Nudaurelia capensis virus ($N{\omega}V$). To establish the function of DpTV RNA genome and to better understand the mechanism of viral replication, the putative RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) domain has been cloned and expressed in Escherichia coli. The recombinant protein was purified on a Ni-chelating HisTrap affinity column and demonstrated to initiate viral RNA synthesis in a primer-independent manner but not by terminal nucleotidyle transferase activity in the presence of $Mg^{2+}$ and RNA template. Mutation of the GDD to GAA interferes with the residues at the polymerase active site and metal ions, and thus renders the polymerase inactive.
Plasmid pGKV21 contains a 229-nucleotide (nt) single-strand DNA initiation (ssi) signal. Using asymmetric PCR, we prepared a small single-stranded (ss) DNA fragment of the ssi signal and, using the 229-nt ssDNA fragment, determined the requirements of RNA polymerase for priming and DNA-protein interaction. The ssi fragment prepared was able to generate primer RNAs with almost the same efficiency as the $M13{\Delta}lac182/229$ phage DNA. However, the cssi (complementary strand of the ssi signal) fragment could not synthesize primer RNAs. This result suggests that the 229-nt ssi signal functions in a strand specific manner. Gel retardation and DNase I footprinting demonstrated that the synthesized ssi fragment could interact with both E. coli RNA polymerase and SSB protein to synthesize primer RNA. In Escherichia coli [pWVAp], an addition of rifampicin resulted in an accumulation of ssDNA, indicating that the host-encoded RNA polymerase is involved in the conversion of ssDNA to double-stranded plasmid DNA.
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