다량의 페놀류 2차 대사산물과 다당류가 포함된 녹두 종자의 RNA를 Tris-buffer와 guanidium thiocyanate 용액을 이용하여 손쉽고 간편하게 고순도의 RNA를 분리하는 방법을 확립하였으며, 우리의 분리 방법을 이용하여 추출한 RNA를 사용하여 RT-PCR과 유전자 클로닝 등의 분석시험에 이용할 수 있었다.
Conventional methods for the isolation and purification of mRNA from Zygnema were unsuccessful because of its high amount of pigments and RNA interactive molecules. In particular, pigments were difficult to remove using conventional protocols because they interacted with RNA during pulverization of the materials. This resulted in total degeneration of RNA in two to three hours. To alleviate this problem, we developed an isolation method that utilized DEAE-cellulose resin. The pigments bound to DEAE anion exchange resin and separated from the RNA. Purified total RNA showed an yield of 50 μg per 100 mg of tissue with this method. The amplified 2nd strand cDNA was distributed 300 bp and over.
As an attempt to preserve resources in marine biological organisms, we first constructed a cDNA library from the red alga Porphyra yezoensis. The library construction method from P. yezoensis consists of three steps; those include protoplast presparation, RNA isolation, and phage library construction. Protoplast was prepared in order to remove much of the carbohydrate compounds which are characteristics of algal cell walls. Carbohydrate contamination in the purified RNA may inhibit further enzyme reactions, those carbohydrates should be removed. RNA samples prepared from protoplast still seemed to contain residual amount of carbohydrate because mRNA isolation with conventional method failed. We therefore developed a method with Poly ATtract mRNA isolation system. The constructed phage library was tested by analyzing cDNA insert in phage vector from randomly picked ten independent white plagues. All of the phages contained cDNA inserts with sizes ranging 0.5kb and 2.0kb.
Total RNA was isolated from two months old wheat, rice, tobacco and sweet potato. The procedure used was simple and provided pure RNA preparation. Lysis of plant tissue in a buffer with guanidine thiocyanate and CsCl density gradient centrifugation separated RNA from the rest of the cellular components. Subsequent cholroform/1-butanol extraction and ethanol precipitation were necessary to ensure contaminant-free RNA preparation. Storage of the lysed plant tissue in the buffer with guanidine thiocyanate preserved the sample for two months without noticeable RNA degradation.
본 논문에서는 올리고-dT 자성입자와 측면방향 자기영동 기술을 기반으로 하는 초고속 RNA 추출칩을 소개한다. 센자성 와이어에 유도된 고구배자장에 의해 RNA가 결합된 올리고-dT 자성입자를 분리함으로써 용해된 혈액으로부터 고속으로 RNA를 추출하였다. 유속이 20 ml/h까지 자성입자를 80% 이상의 효율로 분리할 수 있었으며, 분리시간은 총 1분 이내였다. 추출된 시료로부터 단백질에 대한 RNA 흡광비율(absorbance ratio of RNA to protein: A260/A280)이 1.7 이상임을 확인하였고, 따라서 추출된 RNA가 매우 순수함을 보였다. 추출된 RNA를 사용하여 cDNA 합성과 PCR을 수행하였으며, 이로부터 개발된 초고속 RNA 추출칩이 적은 양의 시료만으로 간편하며 빠르고 정교한 RT-PCR을 수행하는데 실용적임을 확인하였다.
Extracellular microvesicles are membranous nano-sized cellular organelles secreted by a variety of cells under normal and pathological conditions and heterogeneous in size ranging from 30 nm to $1{\mu}m$. They carry functional microRNAs that can influence immunity and development. For a particular application of microvesicles, choice of isolation method is particularly important; however, their isolation methods from colostrum in particular have not been described clearly. In this work, differential ultracentrifugation as a conventional method, ultracentrifugation with some modification such as additional precipitations, ultrafiltration, sucrose gradient separation and ExoQuick$^{TM}$ as a commercial reagent were compared. The goal was to compare mainly microvesicular total microRNA yield, distribution and purity among the methods then select the best isolation method for bovine colostrum microvesicles based largely on microRNA yield with the view of applying the vesicles in work where vesicular microRNA cargo is the target bioactive component. Highest yields for vesicular microRNA were obtained using conventional methods and among them, subsequent ultracentrifugation with 100,000 g and 135,000 g conventional method 2 was selected as it had the highest RNA to protein ratio indicating that it pelleted the least protein in relation to RNA an important factor for in vivo applications to assess microvesicle functionalities without risk of contaminating non-vesicular biomaterial. Microvesicles isolated using conventional method 2 were successfully internalized by cells in vitro showing their potential to deliver their cargo into cells in vitro and in vivo in case of functional studies.
용균성 야생 점액세균 204균주를 국내 토양으로부터 순수분리하였고, 분리균주의 16S rRNA 부분 염기서열을 결정하였다. Ribosomal Database Project(RDP) II를 이용하여 분리균주 각각의 16S rRNA 염기서열을 분석한 결과 전체 분리균주의 65%를 차지하는 132 균주들이 Myxococcus 속에 속할 것으로 예상되었으며, 29%를 차지하는 59 균주들이 Corallococcus 속, 4 균주가 Archangium 속, 그리고 4 균주가 Stigmatella 속에 속할 것으로 분석되었다. 그리고 나머지 5 균주는 알려진 균주와의 유연관계가 멀어 분류가 확실하지 않았다. 한편, 16S rRNA염기서열의 비교분석은 분리균주의 50%가 16S rRNA부분 염기서열상에 적어도 한 염기 이상의 차이를 지니고 있음을 보여주었다. 하지만 동일한 염기서열을 지니는 것으로 분석된 균주에서도 서로 다른 집락모서리를 형성하는 등 다른 균주로 판명되는 것으로 보아 전체 분리균주는 다양성이 81% 이상인 다양한 균주들인 것으로 사료되었다.
A rapid, simple and efficient method to extract RNA from the adult polyps of a soft coral, marine cnidarian, Scleronephthya gracillimum $(K\ddot{u}kenthal)$; was developed in this study. The highest yield and purity of RNA was obtained with the lysis solution containing 35 mM EDTA, 0.7 M LiCl, 7.0% SDS, and 200 mM Tris-Cl (pH 9.0). Approximately $40{\mu}g$ of total RNA was extracted from 200 mg of liquid nitrogen-pulverized polyp tissue. The ratio of absorbance at 260 nm and 280 nm ranged from 1.8 to 2.0. The results of the reverse transcription polymerase chain reaction (RTPCR) with ${\beta}-actin$ gene specific primers and Northern blot analysis using the same gene probe revealed that the RNA extracted by our method had high quality, and was sufficient for subsequent molecular biological analyses. This method was effective for RNA extraction from other soft coral species which belong to the genus Dendronephthya.
Oh, Sangnam;Park, Mi Ri;Son, Seok Jun;Kim, Younghoon
한국축산식품학회지
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제35권4호
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pp.459-465
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2015
Bovine milk provides essential nutrients, including immunologically important molecules, as the primary source of nutrition to newborns. Recent studies showed that RNAs from bovine milk contain immune-related microRNAs (miRNA) that regulate various immune systems. To evaluate the biological and immunological activity of miRNAs from milk products, isolation methods need to be established. Six methods for extracting total RNAs from bovine colostrums were adopted to evaluate the isolating efficiency and expression of miRNAs. Total RNA from milk was presented in formulation of small RNAs, rather than ribosomal RNAs. Column-combined phenol isolating methods showed high recovery of total RNAs, especially the commercial columns for biofluid samples, which demonstrated outstanding efficiency for recovering miRNAs. We also evaluated the quantity of five immune-related miRNAs (miR-93, miR-106a, miR-155, miR-181a, miR-451) in milk processed by temperature treatments including low temperature for long time (LTLT, 63℃ for 30 min)-, high temperature for short time (HTST, 75℃ for 15 s)-, and ultra heat treatment (UHT, 120-130℃ for 0.5-4 s). All targeted miRNAs had significantly reduced levels in processed milks compared to colostrum and raw mature milk. Interestingly, the amount of immune-related miRNAs from HTST milk was more resistant than those of LTLT and UHT milks. Our present study examined defined methods of RNA isolation and quantification of immune-specific miRNAs from small volumes of milk for use in further analysis.
Sphacelaria is a filamentous brown algal genus that can be epibiotic on macroalgae, marine plants, and sea turtles. Its important role in benthic ecosystems, exposure to different stressors (e.g., grazing), and use as a model organism make Sphacelaria ideal for assessing physiological responses of organisms to environmental inputs. Single-cell RNA sequencing is a powerful new probe for understanding environmental responses of organisms at the molecular (transcriptome) level, capable of delineating gene regulation in different cell types. In the case of plants, this technique requires protoplasts ("naked" plant cells). The existing protoplast isolation protocols for Sphacelaria use non-commercial enzymes and are low-yielding. This study is the first to report the production of protoplasts from Sphacelaria fusca (Hudson) S.F. Gray, using a combination of commercial enzymes, chelation, and osmolarity treatment. A simple combination of commercial enzymes (cellulase Onozuka RS, alginate lyase, and driselase) with chelation pretreatment and an increased osmolarity (2512 mOsm/L H2O) gave a protoplast yield of 15.08 ± 5.31 × 104 protoplasts/g fresh weight, with all the Sphacelaria cell types represented. Driselase had no crucial effect on the protoplast isolation. However, the increased osmolarity had a highly significant and positive effect on the protoplast isolation, and chelation pretreatment was essential for optimal protoplast yield. The protocol represents a significant step forward for studies on Sphacelaria by efficiently generating protoplasts suitable for cellular studies, including single-cell RNA sequencing and expression profiling.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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