Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.27
no.5
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pp.507-512
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2005
This research focuses on the development and application of a method for the detection of m-toluate in soils using a genetically engineered bioluminescent bacteria, Pseudomonas putida mt-2 KG1206. KG1206 produces light by direct (m-toluate and benzoate) and indirect (toluene analogs) inducers. For detection of m-toluate in soil system, 9.9 mL strain was amended with 0.1 mL soil ethanol extractant. A high correlation ($r^2>0.97$) was observed between bioluminescence and m-toluate concentration. The unknown concentrations of m-toluate in soil samples were pre-determined using a method developed based on bioluminescence activity of strain with extracted inducers. Values between by LC analysis and bioluminescence activity show moderate statistical results. These results demonstrate the feasibility of recombinant bioluminescent microorganism, engineered to generate a quantifiable bioluminescence signal in response to specific pollutants, may serve as combined sensing and reporting tools in environmental monitoring.
The RNAI mutation of Saccharomyces cerevisia is a recessive and temperature sensitive lethal mutation which interferes with the production of mRNA, rRNA, and tRNA. However, the precise role of RNAI gene have not been revealed until yet. We have cloned rna1-1 mutant gene from rna1-1 mutant yeast strain(R49 ; trpl, ura3-52, rna1-1). The 3.4kb BglII fragment of wild type RNAI clone(81-2-6) contains whole RNAI gene. The genomic southern blotting with BglII digested R49 genomic DNA as a probe shows the unique and identical band with wild type 3.4kb BglII fragment. Therefore, We prepared partial BglII genomic library(3~4kb BglII fragments) into BamH I site of pUC19. The rna 1-1 mutant clone was screened with Digoxigenin(DIG)-lableled probe by high density colony hybridization. The 5'-flanking region of rna1-1 gene was sequenced by dideoxy chain termination method. The 5'-flanking sequence of RNAI gene contains three TATA-like sequence ; TAATA, TATA and TTTTAA at position of -67, -45, and -36 from first ATG codon respectively. The 5'-flanking region of wild type RNA I gene from ATG codon to -103nt was deleted with Bal31 exonuclease digestion, generating $pUC{\Delta}$/RNA I. After constructing $pYEP{\Delta}RNA$ I (consists of -103nt deleting RNA I gene, URA3 gene, $2{\mu}m$ rep. origin), pYEPrna1-1(consists of Xba I fragment of pUCrna1-1. URA3 gene, $2{\mu}m$ rep. origin), and pYEPRNAI. each plasmid was transformed into host strain(trpl, ura3-52, rna1-1) by electroporation, respectively. Yeast transformant carrying $pYEP{\Delta}RNA$ I did not complement the thermal sensitivity of rna1-1 gene. It means that TATA-like sequences in 5'-flanking region is not TATA sequence for transcribing RNAI gene and there may be other essential sequence in upstream region for the transcription of RNAI gene.
Intimin, the product of eae gene in EHEC O157:H7, is required for intimate adherence. In this study, the C-terminaI region(281 amino acids) of the EHEC OI57:H7 intimin were expressed as a protein fusion with (His)$_6$ which was used to raise antiserum in rabbits. The antiserum reacted in western blot with a 94kDa outer membrane protein of EHEC O157:H7. It was observed that the antibody titers both in egg yolk and serum appeared in 2${\sim}$4 weeks after immunization with fusion protein. At the time of 8 weeks, the titre of egg yolk was found to be higher than that of sera. According to the results of neutralization test, chicken egg-yolk antibody(lgY) against the recombinant intimin strongly reacted to EHEC O157:H7. We conclude that a truncated recombinant intimin could be used as an immunogen to elicit antibody(lgY) against O157:H7.
With the use of Agrobacterium and gene-gun, cold regulated gene (BN115) has been injected in Chrysanthemum leaf disc and transgenic plants have been produced successfully on the selection media containing phytohormone. To determine the presence of the transferred cold regulated gene (BN115) in the transgenic Chrysanthemum, PCR-amplification indicated the presence of that gene. Real-Time PCR for confirmation of the putative transgenic plants was established. The copy number of cold regulated gene (BN115) is extrapolated on the basis of a standard curve. Serial dilutions of known number of gene copies were in triplicates. In this diagram, PCR cycles are plotted against the fluorescence intensity. The cycle at which the fluorescence reaches a threshold cycle is inversely proportional to the starting amount of target DNA.
The study performed to identify the type of ESBL against strains which are producing extendedspectrum ${\beta}$-lactamases and isolated from sewage in Suyeong sewage disposal plant, Busan Environmental Corporation. By the standard activated sludge method, Suyeong sewage disposal plant purify living and lavatory sewage gathering from the northeast Busan and the facility purify total 550,000 tons of living sewage disposal a day. 14 strains were isolated by double disk synergy test and the third generation cepha-antibiotics test. Indole, methyl-red, Voges-Proskauer, Simmon's citrate, decarboxylasedihydrolase and sugar-fermentation tests identified as Klebsiella pneumoniae (n=4) and Escherichia coli (n=10). Plasmid-mediated transmission test against isolated 14 strains proved 11 strains transmitted resistance to recipient E. coli J53 (sodium $azide^R$, $ceftazidime^S$). 9 strains of conjugant were expressed ESBL genes transferred from parental strain but 2 conjugants did not expressed. The type of ESBL from each strain was determined by isoelectric focusing points, DNA and amino acids sequencing. The results indicated that the types of ESBL transmitted to recipient E. coli J53 were TEM-1, the parental TEM type and SHV-12 type.
For producing single cell protein from the agricultural waste, heat treatment and antibiotics on the growth of Cellulomonas sp. KL-6, isolated in rotting leaf and the adjacent soil mixture, were examined. The organism was able to grow until 5 min. at $65^{\circ}C$, 1 min. at $75^{\circ}C$ and 1/4 min. at $85^{\circ}C$ in gradually rising temperatures. It can be Seen that preheating the suspension at $48^{\circ}C$ results in a marked decrease in heat resistance. On heating at temperature of $55^{\circ}C$ for 30 min., strain KL-6 was more resisted in the 0.1 M phosphate buffer when such substrates as casamino acid (1%), yeast extract (1%) or xylose (5%) were added to it whereas this organism was appeared weaker resistances in 0.1 M phosphate buffer when cysteine (0.03 M), sodium citrate (1%) or casein (1%) were in fused into it. Test strain was susceptible to penicillin-G $(1.563\;{\mu}g/ml)$ and ampicillin $(3.125\;{\mu}g/ml)$, but the organism was resisted to kanamycin $(>200\;{\mu}g/ml)$. The treatment of strain KL-6 with sodium dodecyl sulfate (SDS) resulted in the elimination of R-plasmid from the host strain and the elimination rate with SDS $(10{\sim}30\;{\mu}g/ml)$ was about $9.2{\sim}31.2%$, respectively.
Sporulation in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe has been regarded as an important model of cellular development and differentiation. S. pombe cells proliferate by mitosis and binary fission on growth medium. Deprivation of nutrients especially nitrogen sources, causes the cessation of mitosis and initiates sexual reproduction by malting between two sexually compatible cell types. Meiosis is then followed in a diploid cell in the absence of nitrogen source. DNA fragment complemented with the mutations of sporulation gene was isolated from the S. pombe gene library constructed in the vector, pDB 248' and designated as pDB (spo 5)1. We futher analyzed six recombinant plasmids, pDB (spo 5)2, pDB(spo 5)3, pDB(spo 5)4, pDB(spo 5)5, pDB(spo 5)6, pDB(spo 5)7, and found each plasmids is able to rescue the spo 5-2, spo 5-3, spo 5-4, spo 5-5, spo 5-6, spo 5-7, mutations, respectively. Mapping of the integrated plasmid into the homologous site of the S. pombe chromosomes demonstrated that pDB (spo 5)1, and pDB (spo 5)R1 contained the spo 5 gene. Transcipts of spo 5 gene were analyzed by Northern hybridization. Two transcripts of 3.2 kb and 25 kb were detected with 5 kb Hind III fragment containing a part of the spo 5 gene as a probe. The small mRNA (2.5 kb) appeared only when a wild-type strain was cultured in the absence of nitrogen source in which condition the large mRNA (3.2 kb) was produced constitutively. Appearance of a 2.5 kb spo 5-mRNA depends upon the function of the mei1, mei2 and mei3 genes.
Background: Cancer is a major threat to the public health whether in developed or in developing countries. As the most common primary malignant tumor, the morbidity and mortality rate of lung cancer continues to rise in recent ten years worldwide. Chemotherapy is one of the main methods in the treatment of lung cancer, but this is hampered by chemotherapy drug resistance, especially MDR. As a component of the 60S large ribosomal subunit, ribosomal protein L39-L gene was reported to be expressed specifically in the human testis and human cancer samples of various tissue origins. Materials and Methods: Total RNA of cultured drug-resistant and susceptible A549 cells was isolated, and real time quantitative RT-PCR were used to indicate the transcribe difference between amycin resistant and susceptible strain of A549 cells. Viability assay were used to show the amycin resistance difference in RPL39-L transfected A549 cell line than control vector and null-transfected A549 cell line. Results: The ribosomal protein L39-L transcription level was 8.2 times higher in drug-resistant human lung cancer A549 cell line than in susceptible A549 cell line by quantitative RT-PCR analysis. The ribosomal protein L39-L transfected cells showed enhanced drug resistance compared to plasmid vector-transfected or null-transfected cells as determined by methyl tritiated thymidine (3H-TdR) incorporation. Conclusions and Implications for Practice: The ribosomal protein L39-L gene may have effects on the drug resistance mechanism of lung cancer A549 cells.
Kim, Sung Chan;Kang, Seung Ha;Choi, Eun Young;Hong, Yeon Hee;Bok, Jin Duck;Kim, Jae Yeong;Lee, Sang Suk;Choi, Yun Jaie;Choi, In Soon;Cho, Kwang Keun
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.29
no.1
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pp.126-133
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2016
A gene from Actinomyces sp. Korean native goat (KNG) 40 that encodes an endo-${\beta}$-1,4-glucanase, EG1, was cloned and expressed in Escherichia coli (E. coli) $DH5{\alpha}$. Recombinant plasmid DNA from a positive clone with a 3.2 kb insert hydrolyzing carboxyl methyl-cellulose (CMC) was designated as pDS3. The entire nucleotide sequence was determined, and an open-reading frame (ORF) was deduced. The ORF encodes a polypeptide of 684 amino acids. The recombinant EG1 produced in E. coli $DH5{\alpha}$ harboring pDS3 was purified in one step using affinity chromatography on crystalline cellulose and characterized. Sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis/zymogram analysis of the purified enzyme revealed two protein bands of 57.1 and 54.1 kDa. The amino terminal sequences of these two bands matched those of the deduced ones, starting from residue 166 and 208, respectively. Putative signal sequences, a Shine.Dalgarno-type ribosomal binding site, and promoter sequences related to the consensus sequences were deduced. EG1 has a typical tripartite structure of cellulase, a catalytic domain, a serine-rich linker region, and a cellulose-binding domain. The optimal temperature for the activity of the purified enzyme was $55^{\circ}C$, but it retained over 90% of maximum activity in a broad temperature range ($40^{\circ}C$ to $60^{\circ}C$). The optimal pH for the enzyme activity was 6.0. Kinetic parameters, $K_m$ and $V_{max}$ of rEG1 were 0.39% CMC and 143 U/mg, respectively.
It has been known that streptomycin resistance in bacteria can occur as a results of chromosomal mutation or through gene acquisition or both. Chromosomal mutations for resistances are point mutations in the rpsL gene, which alter ribosomal protein S12. Acquired resistance has occurred when an $Sm^R$ plasmid carrying transposon Tn5393 with tandem strA-strB gene is transferred by conjugation. A total of 686 isolates of Xanthomonas smithii subsp. citri causal agent of citrus canker disease were collected from 26 citrus orchards in Jeju Island in 2003 and 2004 seasons. Forty-nine of 111 isolates from streptomycin non-sprayed orchards in 2003 season were resistant to streptomycin. Of 107 isolates from orchards sprayed one time with streptomycin, 58 isolates were resistant, and 166 of 221 isolates from orchards sprayed two times with streptomycin were resistant. In 12 orchards sprayed three or more times with streptomycin, 219 of 247 isolates were resistant to streptomycin. Twenty-five isolates of X. smithii subsp. citri were surveyed to identify the mechanisms of streptomycin resistance in this study. Twenty-one of these 25 isolates were resistant to streptomycin, and it was proven by PCR assay that 18 of the 21 streptomycin resistant isolates have the strB gene. In sixteen of the 21 streptomycin resistant isolates, it was occurred a point mutation altered codon lysine (AAG)-41 of rpsL gene to arginine (AGG). The streptomycin-sensitive isolates easily acquired the resistance by mixed culture with resistant isolates. The strB gene was amplified from the isolates that acquired the resistance by mixed culture, and one isolate of them was also point-mutated in codon 41 of rpsL gene to be resistant. In this study, most of the streptomycin-resistant isolates of X. smithii sub sp. citri in Jeju island expressed the resistance by both chromosomal point mutation and gene acquisition, and the resistance was easily acquired through conjugation by culture mixed with streptomycin resistant and sensitive strains.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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