Ion channel inhibitors are widely used for pharmacological discrimination between the different channel types as well as for determination of their functional role. In the present study, we tested the hypothesis that 4-aminopyridine (4-AP) could affect the large conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel ($BK_{Ca}$) currents using perforated-patch or cell-attached configuration of patch-clamp technique in the rabbit pulmonary arterial smooth muscle. Application of 4-AP reversibly inhibited the spontaneous transient outward currents (STOCs). The reversal potential and the sensitivity to charybdotoxin indicated that the STOCs were due to the activation of $BK_{Ca}$. The $BK_{Ca}$ currents were recorded in single channel resolution under the cell-attached mode of patch-clamp technique for minimal perturbation of intracellular environment. Application of 4-AP also inhibited the single $BK_{Ca}$ currents reversibly and dose-dependently. The membrane potential of rabbit pulmonary arterial smooth muscle cells showed spontaneous transient hyperpolarizations (STHPs), presumably due to the STOC activities, which was also inhibited by 4-AP. These results suggest that 4-AP can inhibit $BK_{Ca}$ currentsin the intact rabbit vascular smooth muscle. The use of 4-AP as a selective voltage-dependent $K^+$ (KV) channel blocker in vascular smooth muscle, therefore, must be reevaluated.
The vasorelaxant effects of KR-30075 in guinea-pig pulmonary, bovine coronary and renal arterial strips contracted by either$K^+$depolarization, phenylephrine, or prostaglandin $F_{2a}$($PGF_{2a}$) were evaluated. KR-30075 was more potent than imazodan as a vasorelaxant against $PGF_{2a}$-induced contractions in bovine coronary and renal arteries, whereas against$K^+$induced contractions KR-30075 was less potent than imazodan in guieapig pulmonary arteries and more potent in bovine coronary arteries. KR-30075 was more potent against contractions induced by phenylephrine or $PGF_{2a}$ than the contractions induced by $K^+$ This profile of activity for KR-30075 was similar to that of imazodan and dissimilar from the calcium entry blocking agent nifedipine. There was no vascular selectivity of KR-30075 between bovine coronary and renal arterial strip preparations. In conclusion, this study shows that KR-30075 represents the vasorelaxant effects on guinea-pig pulmonary, bovine coronary and renal arteries without specific vascular selectivity. The vasorelaxant profile of KR-30075, with different sources of vascular smooth muscle, is unlike that of calcium entry blocking agent and more similar to the profile of the agent that inhibit cyclic nucleotide phosphodiesterase.
microRNAs (miRNAs) are a class of small, non-coding RNAs that play critical posttranscriptional regulatory roles typically through targeting of the 3'-untranslated region of messenger RNA (mRNA). Mature miRNAs are known to be involved in global cellular processes, such as differentiation, proliferation, apoptosis, and organogenesis, due to their capacity to target multiple mRNAs. Thus, imbalances in the expression and/or activity of miRNAs are involved in the pathogenesis of numerous diseases, including pulmonary arterial hypertension (PAH). PAH is a progressive disease characterized by vascular remodeling due to excessive proliferation of pulmonary artery endothelial cells (PAECs) and pulmonary artery smooth muscle cells (PASMCs). Recently, studies have evaluated the roles of miRNAs involved in the pathogenesis of PAH in these pulmonary vascular cells. This review provides an overview of recent discoveries on the role of miRNAs in the pathogenesis of PAH and discusses the potential for miRNAs as therapeutic targets and biomarkers of PAH.
Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a progressive and devastating disease whose pathogenesis is associated with a phenotypic switch of pulmonary arterial vascular smooth muscle cells (PASMCs). Bone morphogenetic protein (BMP) signaling and potassium two pore domain channel subfamily K member 3 (KCNK3) play crucial roles in PAH pathogenesis. However, the relationship between BMP signaling and KCNK3 expression in the PASMC phenotypic switching process has not been studied. In this study, we explored the effect of BMPs on KCNK3 expression and the role of KCNK3 in the BMP-mediated PASMC phenotypic switch. Expression levels of BMP receptor 2 (BMPR2) and KCNK3 were downregulated in PASMCs of rats with PAH compared to those in normal controls, implying a possible association between BMP/BMPR2 signaling and KCNK3 expression in the pulmonary vasculature. Treatment with BMP2, BMP4, and BMP7 significantly increased KCNK3 expression in primary human PASMCs (HPASMCs). BMPR2 knockdown and treatment with Smad1/5 signaling inhibitor substantially abrogated the BMP-induced increase in KCNK3 expression, suggesting that KCNK3 expression in HPASMCs is regulated by the canonical BMP-BMPR2-Smad1/5 signaling pathway. Furthermore, KCNK3 knockdown and treatment with a KCNK3 channel blocker completely blocked BMP-mediated anti-proliferation and expression of contractile marker genes in HPAMSCs, suggesting that the expression and functional activity of KCNK3 are required for BMP-mediated acquisition of the quiescent PASMC phenotype. Overall, our findings show a crosstalk between BMP signaling and KCNK3 in regulating the PASMC phenotype, wherein BMPs upregulate KCNK3 expression and KCNK3 then mediates BMP-induced phenotypic switching of PASMCs. Our results indicate that the dysfunction and/or downregulation of BMPR2 and KCNK3 observed in PAH work together to induce aberrant changes in the PASMC phenotype, providing insights into the complex molecular pathogenesis of PAH.
Kim, Sung Eun;Yin, Ming Zhe;Kim, Hae Jin;Vorn, Rany;Yoo, Hae Young;Kim, Sung Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제24권1호
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pp.111-119
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2020
In vascular smooth muscle, K+ channels, such as voltage-gated K+ channels (Kv), inward-rectifier K+ channels (Kir), and big-conductance Ca2+-activated K+ channels (BKCa), establish a hyperpolarized membrane potential and counterbalance the depolarizing vasoactive stimuli. Additionally, Kir mediates endothelium-dependent hyperpolarization and the active hyperemia response in various vessels, including the coronary artery. Pulmonary arterial hypertension (PAH) induces right ventricular hypertrophy (RVH), thereby elevating the risk of ischemia and right heart failure. Here, using the whole-cell patch-clamp technique, we compared Kv and Kir current densities (IKv and IKir) in the left (LCSMCs), right (RCSMCs), and septal branches of coronary smooth muscle cells (SCSMCs) from control and monocrotaline (MCT)-induced PAH rats exhibiting RVH. In control rats, (1) IKv was larger in RCSMCs than that in SCSMCs and LCSMCs, (2) IKv inactivation occurred at more negative voltages in SCSMCs than those in RCSMCs and LCSMCs, (3) IKir was smaller in SCSMCs than that in RCSMCs and LCSMCs, and (4) IBKCa did not differ between branches. Moreover, in PAH rats, IKir and IKv decreased in SCSMCs, but not in RCSMCs or LCSMCs, and IBKCa did not change in any of the branches. These results demonstrated that SCSMC-specific decreases in IKv and IKir occur in an MCT-induced PAH model, thereby offering insights into the potential pathophysiological implications of coronary blood flow regulation in right heart disease. Furthermore, the relatively smaller IKir in SCSMCs suggested a less effective vasodilatory response in the septal region to the moderate increase in extracellular K+ concentration under increased activity of the myocardium.
Although the $Ca^{2+}-activated\;K^+\;(I_{K,Ca})$ channel is known to play an important role in the maintenance of resting membrane potential, the regulation of the channel in physiological condition is not completely understood in vascular myocytes. In this study, we investigated the role of cytoplasmic $Mg^{2+}$ on the regulation of $I_{K,Ca}$ channel in pulmonary arterial myocytes of the rabbit using the inside-out patch clamp technique. $Mg^{2+}$ increased open probability (Po), but decreased the magnitude of single channel current. $Mg^{2+}-induced$ block of unitary current showed strong voltage dependence but increase of Po by $Mg^{2+}$ was not dependent on the membrane potential. The apparent effect of $Mg^{2+}$ might, thus, depend on the proportion between opposite effects on the Po and on the conductance of $I_{K,Ca}$ channel. In low concentration of cytoplasmic $Ca^{2+},\;Mg^{2+}$ increased $I_{K,Ca}$ by mainly enhancement of Po. However, at very high concentration of cytoplasmic $Ca^{2+},$ such as pCa 5.5, $Mg^{2+}$ decreased $I_{K,Ca}$ through the inhibition of unitary current. Moreover, $Mg^{2+}$ could activate the channel even in the absence of $Ca^{2+}.\;Mg^{2+}$ might, therefore, partly contribute to the opening of $I_{K,Ca}$ channel in resting membrane potential. This phenomenon might explain why $I_{K,Ca}$ contributes to the resting membrane potential where membrane potential and concentration of free $Ca^{2+}$ are very low.
Propofol is known to cause vasorelaxation of several systemic vascular beds. However, its effect on the pulmonary vasculature remains controversial. In the present study, we investigated the effects of propofol on human pulmonary arteries obtained from patients who had undergone surgery. Arterial rings were mounted in a Multi-Myograph system for measurement of isometric forces. U46619 was used to induce sustained contraction of the intrapulmonary arteries, and propofol was then applied (in increments from $10-300{\mu}m$). Arteries denuded of endothelium, preincubated or not with indomethacin, were used to investigate the effects of propofol on isolated arteries. Propofol exhibited a bifunctional effect on isolated human pulmonary arteries contracted by U46619, evoking constriction at low concentrations ($10-100{\mu}m$) followed by secondary relaxation (at $100-300{\mu}m$). The extent of constriction induced by propofol was higher in an endothelium-denuded group than in an endothelium-intact group. Preincubation with indomethacin abolished constriction and potentiated relaxation. The maximal relaxation was greater in the endothelium-intact than the endothelium-denuded group. Propofol also suppressed $CaCl_2$-induced constriction in the 60 mM $K^+$-containing $Ca^{2+}$-free solution in a dose-dependent manner. Fluorescent imaging of $Ca^{2+}$ using fluo-4 showed that a 10 min incubation with propofol ($10-300{\mu}m$) inhibited the $Ca^{2+}$ influx into human pulmonary arterial smooth muscle cells induced by a 60 mM $K^+$-containing $Ca^{2+}$-free solution. In conclusion, propofol-induced arterial constriction appears to involve prostaglandin production by cyclooxygenase in pulmonary artery smooth muscle cells and the relaxation depends in part on endothelial function, principally on the inhibition of calcium influx through L-type voltage-operated calcium channels.
Single smooth muscle cells of the rabbit pulmonary artery were isolated by treatment with collagenase and elastase. Using the patch clamp technique, potassium channel activity was recorded from the inside-out membrane patch. The channel had a sin히e channel conductance of about 360 pS in symmetrical concentration of K on both sides of the patch, 150 mM, and had a linear current-voltage relationship. During the application of 10 mM tetraethylammonium (TEA) to the intracellular membrane surface, the amplitude of single channel current was reduced and very rapid flickering appeared. The open probability $(P_0)$ of this channel was increased by increasing positivity of the potential across the patch membrane, with e-fold increase by 20 mV depolarization, and by increasing the internal $Ca^{2+}$ concentration. These findings are consistent with those of large conductance Ca-activated K channels reported in other tissues. But the shortening of the mean open time by increasing $[Ca^{2+}]_i$, was an unexpected result and one additional closed state which might be arisen from a block of the open channel by Ca binding was suggested. The $P_0-membrane$ potential relationship was modulated by internal pH. Decreasing pH reduced $P_0$. Increasing pH not only increased $P_0$ but also weakened the voltage dependency of the channel opening. The modulation of Ca-activated K channel by pH was thought to be related to the mechanism of regulation of vascular tone by the pH change.
Seung Beom Oh;Suhan Cho;Hyun Jong Kim;Sung Joon Kim
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제28권1호
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pp.49-57
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2024
While arterial tone is generally determined by the phosphorylation of Ser19 in myosin light chain (p-MLC2), Thr18/Ser19 diphosphorylation of MLC2 (pp-MLC2) has been suggested to hinder the relaxation of smooth muscle. In a dual-wire myography of rodent pulmonary artery (PA) and mesenteric artery (MA), we noticed significantly slower relaxation in PA than in MA after 80 mM KCl-induced condition (80K-contraction). Thus, we investigated the MLC2 phosphorylation and the expression levels of its regulatory enzymes; soluble guanylate cyclase (sGC), Rho-A dependent kinase (ROCK) and myosin light chain phosphatase target regulatory subunit (MYPT1). Immunoblotting showed higher sGC-α and ROCK2 in PA than MA, while sGC-β and MYPT1 levels were higher in MA than in PA. Interestingly, the level of pp-MLC2 was higher in PA than in MA without stimulation. In the 80K-contraction state, the levels of p-MLC2 and pp-MLC2 were commonly increased. Treatment with the ROCK inhibitor (Y27632, 10 µM) reversed the higher pp-MLC2 in PA. In the myography study, pharmacological inhibition of sGC (ODQ, 10 µM) slowed relaxation during washout, which was more pronounced in PA than in MA. The simultaneous treatment of Y27632 and ODQ reversed the impaired relaxation in PA and MA. Although treatment of PA with Y27632 alone could increase the rate of relaxation, it was still slower than that of MA without Y27632 treatment. Taken together, we suggest that the higher ROCK and lower MYPT in PA would have induced the higher level of MLC2 phosphorylation, which is responsible for the characteristic slow relaxation in PA.
Purpose: Abnormal potassium channels expression affects vessel function, including vascular tone and proliferation rate. Diverse potassium channels, including voltage-gated potassium (Kv) channels, are involved in pathological changes of pulmonary arterial hypertension (PAH). Since the role of the Kv1.7 channel in PAH has not been previously studied, we investigated whether Kv1.7 channel expression changes in the lung tissue of a monocrotaline (MCT)-induced PAH rat model and whether this change is influenced by the endothelin (ET)-1 and reactive oxygen species (ROS) pathways. Methods: Rats were separated into 2 groups: the control (C) group and the MCT (M) group (60 mg/kg MCT). A hemodynamic study was performed by catheterization into the external jugular vein to estimate the right ventricular pressure (RVP), and pathological changes in the lung tissue were investigated. Changes in protein and mRNA levels were confirmed by western blot and polymerase chain reaction analysis, respectively. Results: MCT caused increased RVP, medial wall thickening of the pulmonary arterioles, and increased expression level of ET-1, ET receptor A, and NADPH oxidase (NOX) 4 proteins. Decreased Kv1.7 channel expression was detected in the lung tissue. Inward-rectifier channel 6.1 expression in the lung tissue also increased. We confirmed that ET-1 increased NOX4 level and decreased glutathione peroxidase-1 level in pulmonary artery smooth muscle cells (PASMCs). ET-1 increased ROS level in PASMCs. Conclusion: Decreased Kv1.7 channel expression might be caused by the ET-1 and ROS pathways and contributes to MCT-induced PAH.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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