In order to investigate the action mechanism of protein kinase C on $K^+$ channel in osteoblastic cell, effects of phorbol 12, 13-dibutyrate on human osteoblast-like cells (G292) were studied by patch clamp technique with cell-attacked configuration. 111 this experiment, 45pS ion channel was dominant in G292 cell line according to their approximate conductances in symmetrical 140mM KCl saline at holding potential of 60mV. In torrent-voltage relationship, reversal potential was 5.5mV at the condition of potassium enriched saline in the pipette and -27 mV at the condition of standard extracellular saline In the pipette. Phorbol 12, 13-dibutyrate 10nM increased the open probability of 45pS channel and staurosporine, an inhibitor of protein kinase C, suppressed this effect. Phorbol 12,13-dibutyrate moved the reversal potential of 45pS channel to more negative potential and increased the single channel current at the same membrame potential. In order to check the activation of protein kinase C in G292 cell by phorbol 12,13-dibutyrate, western blot of protein kinase C was performed. Phorbol 12,13-dibutyrate $0.1{\mu}M$ translocated protein kinase C from cellular compartment to membrane compartment of the cell. These findings suggest that phorbol 12,13-dibutyrate, one of phorbol esters, activate 45pS channel In G292 cell and affect cell membrane potential, that regulate cellular function.
AMP-activated protein kinase (AMPK) is an important cellular fuel sensor. Its activation requires phosphorylation at Thr-172, which resides in the activation loop of the ${\alpha}1$ and ${\alpha}2$ subunits. Several AMPK upstream kinases are capable of phosphorylating AMPK at Thr-172, including LKB1 and CaMKK${\beta}$ ($Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase kinase${\beta}$). AMPK has been implicated in the regulation of physiological signals, such as in the inhibition of cholesterol fatty acid, and protein synthesis, and enhancement of glucose uptake and blood flow. AMPK activation also exhibits several salutary effects on the vascular function and improves vascular abnormalities. AMPK is modulated by numerous hormones and cytokines that regulate the energy balance in the whole body. These hormone and cytokines include leptin, adiponectin, ghrelin, and even thyroid hormones. Moreover, AMPK is activated by several drugs and xenobiotics. Some of these are in being clinically used to treat type 2 diabetes (e.g., metformin and thiazolidinediones), hypertension (e.g., nifedipine and losartan), and impaired blood flow (e.g., aspirin, statins, and cilostazol). I reviewed the precise mechanisms of the AMPK activation pathway and AMPK-modulating drugs.
Ginsenoside-Rg$_{1}$(G-Rg$_{1}$) has been shown to stimulate DNA synthetic activity in SK-HEP-1 cells. This study was therefore designed to determine in SK-HEP-1 cells whether the stimulatory effect of G-Rg$_{1}$ may be mediated by protein kinase C (PKC) which is known to play a key role in the signal transduction pathway leading to the cell proliferation. Using the tn situ PKC assay method, the PKC enzyme activity was determined in SK-HEP-1 cell cultures in response to G-Rg$_{1}$ at 3*10$^{-5}$ M or phorbol 12-myristate 13-acetate(PMA) at 10$^{-6}$ M which in the enzyme activity by 1.5- and 7-fold, respectively. Furthermore, G-Rg$_{1}$, was also able to synergistically increase the enzyme activity by 11-fold m the cell cultures in the presence of PMA. These stimulatory effects of G-Rg$_{1}$ or PMA on the DNA synthetic activity and the PKC activity were ablished by a specific PKC inhibitor, GF109203X. These results suggest that the stimulatory effect of G-Rg$_{1}$ on the DNA synthetic activity may be partly due to stimulation of PKC-mediated signal transduction pathway leading to the proliferation of SK-HEP-1 cells.
Tamoxifen, an antiestrogen, has previously been shown to induce apoptosis in HepG2 human hepatoblastoma cells through activation of the pathways independent of estrogen receptors, i.e., intracellular $Ca^{2+}$ increase and generation of reactive oxygen species (ROS). However, the mechanism of tamoxifen to link increased intracellular $Ca^{2+}$ to ROS generation is currently unknown. Thus, in this study we investigated the possible involvement of calmodulin, a $Ca^{2+}$ activated protein, and $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II in the above tamoxifen-induced events. Treatment with calmodulin antagonists (calmidazolium and trifluoroperazine) or specific inhibitors of $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II (KN-93 and KN-62) inhibited the tamoxifen-induced apoptosis in a dose-dependent manner. In addition, these agents blocked the tamoxifen-induced ROS generation in a concentration-dependent fashion, which was completely suppressed by intracellular $Ca^{2+}$ chelation. These results demonstrate for the first time that, despite of its well-known direct calmodulin-inhibitory activity, tamoxifen may generate ROS and induce apoptosis through indirect activation of calmodulin and $Ca^{2+}$/calmodulin-dependent protein kinase II in HepG2 cells.
The mitogen-activated protein(MAP) kinase signal transduction pathway represents an important mechanism by which mitogen, such as serum and PMA, regulate cell proliferation and differentiation. Target substrates of the MAP kinase are located within several compartments containing plasma membranes and nucleus. We now report that serum addition induces proliferation of the P388 murine leukemia cell, but PMA does not, while both serum and PMA treatment cause translocation of the MAP kinase, mainly p42$^{mapk}$ isoform, from cytosol into the nucleus, which was monitored by immunoblot analysis using polyclonal anti-ERK1 antibodies. We investigated whether the MAP kinase was capable of phosphorylating c-Jun protein and GST-fusion proteins, the P562$^{kk}$N-terminal peptides (1-77 or 1-123 domain) of the T cell tyrosine kinase, using the partially purified MAP kinase by SP-sephadex C-50, phenyl superose and Mono Q column chromatography. We found that the partially purified MAP kinase was able to phosphorylate c-Jun protein and the GST-fusion protein expressed using E.coli DH5$\alpha$ which is transformed with pGEX-3Xb plasmid vector carrying of p562$^{kk}$N-terminal peptide-encoding DNA. These results imply that tyrosine kinase receptor/Ras/Raf/MAP kinase pathway is a major mechanism for mitogen-induced cell proliferation in P388 murine leukemia cell and that the various MAP kinase isoforms may have their own target substrates located in distinct subcellular compartments.
Expedments were perfonned to examine the role of cAMP-dependent protein kinase (PK-A) and diacylglycerol-dependent protein kinase (PK-C) during the meiodc resumption and the first mitotic cell cycle of mouse embryogenesis. Mejoric GV oocytes and one-cell embryos derived from in vitro fertilization were cultured in vitro, and morphological changes in response to activators of PK-A and PK-C were examined. Treatments with a membrane-permeable cAMP analog, dbcAMP (0.1 mg/mi), phosphodiesterase inhibitor, IBMX (0.1 mM), biologically active phorbol ester, WA (10 nglmi), or a synthetic diacylglycerol, sn-diC8 inhibited resumption of melosis. Combination of PK-A and PK-C activator brought about furiher inhibition. On the contrary, dbcAMP (0.1 mg/mi), IBMX (0.2 mM), WA (10 nglml), and sn-diC8 (0.5 mM) did not inhibit pronucleus membrane breakdown (PNBD) when added S or G2 phase of cell cycle. However, activators of PK-C inhibited cleavage of one-cefl embryos. This result indicates that the action mechanism of PK-A and PK-C on dissolution of nuclear membrane in primary meiotic arrest oocytes may be different from that of mitotic one-cell embryos.
The present study was undertaken to demonstrate whether or not bradykinin activates a phospholipase D in rabbit kidney proximal tubule cells. By measuring the formation of [$^3$H]phosphatidic acid and [$^3$H]phosphatidylethanol we could elucidate the direct stimulation of phospholipase D by bradykinin. Bradykinin leads to a rapid increase in [$^3$H]phosphatidic acid and [$^3$H]diacylglycerol, and [$^3$H]phosphatidic acid formation preceded the formation of [$^3$H]diacylglycerol. This result suggests that some phosphatidic acid seems to be formed directly from phosphatidylcholine by the action of phospholipase D, not from diacylglycerol by the action of diacylglycerol kinase. In addition, the other mechanisms by which phospholipase D is activated was examined. We have found that phospholipase D was activated and regulated by extracellular calcium ion and pertussis toxin-insensitive G protein, respectively. It has also been shown that bradykinin may activate phospholipase D through protein kinase C-dependent pathway. In conclusion, we are now, for the first time, strongly suggesting that bradykinin-induced activation of phospholipase D in the rabbit kidney proximal tubule cells is mediated by a pertussis toxin-insensitive G protein and is dependent of protein kinase C.
G protein coupled receptors (GPCRs) transmit various extracellular signals into the cells. Upon binding of the ligands, conformational changes in the extracellular and/or transmembrane (TM) domains of CPCRs were propagated into the cytoplasmic (CP) domain of the molecule leading to the activation of their cognate heterotrimeric C proteins and kinases. Constitutively active GPCR mutants causing the activation of C Protein signaling even in the absence of ligand binding are of interest for the study of activation mechanism of GPCRs. Two classes of constitutively active mutations, categorized by their effects on the salt bridge between Ell3 and K296, were found in the TM domain of rhodopsin. Opsin mutants containing combinations of the mutations were constructed to study the conformational changes required for the activation of rhodopsin. Rhodopsin chromophore regenerated with 11-cis-retinal showed a thermal stability inversely correlated with its constitutive activity. In contrast, rhodopsin mutants exhibited a binding affinity to an agonist, all-trans-retinal, in a constitutive activity-dependent manner. In order to test whether the conformational changes responsible for the activation of trans-ducin (Gt) are the same as the conformation required for the recognition of rhodopsin kinase, analysis of the mutants were carried out with phosphorylation by rhodopsin kinase. Rhodopsin mutants containing combinations of different classes of the mutations showed a strong synergistic effect on the phosphorylation of the mutants in the dark as similar to that of Gt activation. The results suggest that at least two or three kinds of segmental and independent conformational changes are required for the activation of rhodopsin and the conformational changes responsible for activating rhodopsin kinase and Gt are similar to each other.
To investigate whether phospholipase $A_2$pathway is involved in histamine release of rat peritoneal mast cells, we measured histamine release in the presence of various enzyme inhibitors involved in eicosanoid pathway, such as phospholipase $A_2$, cyclooxygenase and lipoxygenase. Phospholipase $A_2$inhibitors, manoalide and OPC, significantly inhibited histamine release induced by 100 $\mu$M ATP and 1$\mu$g/ml compound 48/80. Cyclooxygenase inhibitors, ibuprofen and indomethacin, significantly inhibited ATP-induced histamine release and lipoxygenase inhibitors, baicalein and caffeic acid, also significantly inhibited. To investigate the involvement of protein kinase in ATP- and compound 48/80-induced histamine release, we observed effects of protein kinase inhibitors on histamine release. Bisindolmaleimide (protein kinase C antagonist) dose-dependently inhibited both ATP and compound 48/80-induced histamine release. Tyrosine kinase inhibitors (methyl 2,5-dihydroxy cinnamate and genistein) dose-dependently inhibited ATP and compound 48/80-induced histamine release. Protein kinase C and tyrosine kinase seem to be involved in histamine release induced by ATP and compound 48/80. These results suggest that phospholipase $A_2$pathway as well as protein kinase C and tyrosine kinase are involved in histamine release of rat peritoneal mast cells by ATP and compound 48/80.
Background: Ginsenoside Rg3 (G-Rg3) is the major bioactive ingredient of Panax ginseng and has many pharmacological effects, including antiadipogenic, antiviral, and anticancer effects. However, the effect of G-Rg3 on mast cell-mediated allergic inflammation has not been investigated. Method: The antiallergic effects of G-Rg3 on allergic inflammation were evaluated using the human and rat mast cell lines HMC-1 and RBL-2H3. Antiallergic effects of G-Rg3 were detected by measuring cyclic adenosine monophosphate (cAMP), detecting calcium influx, and using real-time reverse transcription polymerase chain reaction, enzyme-linked immunosorbent assay, Western blotting, and in vivo experiments. Results: G-Rg3 decreased histamine release from activated mast cells by enhancing cAMP levels and calcium influx. Proinflammatory cytokine production was suppressed by G-Rg3 treatment via regulation of the mitogen-activated protein kinases/nuclear factor-kappa B and receptor-interacting protein kinase 2 (RIP2)/caspase-1 signaling pathway in mast cells. Moreover, G-Rg3 protected mice against the IgE-mediated passive cutaneous anaphylaxis reaction and compound 48/80-induced anaphylactic shock. Conclusion: G-Rg3 may serve as an alternative therapeutic agent for improving allergic inflammatory disorders.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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