A bacterial strain, which showed the high protease activity at low temperature and the high tolerance for the surfactant, was isolated from soil and identified as Xanthomonas sp. YL-37. The optimal temperature, initial pH, and cultivation time for the production of the alkaline protease by Xanthomonas sp. YL-37 were 20$\circC , 11.0, and 84 hours, respectively. In the jar fermenter culture of Xanthomonas sp. YL-37, the alkaline protease activity was about 15,000 DU/ml/-broth after cultivating for 108 hours. The optimal pH and temperature for the protease activity were 70$\circC and 11.0, respectively. The protease was relatively stable at the pH range of 7.0~12.0 and at the temperatures below 50$\circC . The protease activity at 20$\circC was about the level of 40% of its activity at 70$\circC . The enzyme was suggested as a serine protease because the enzyme activity was inhibited by phenylmethane sulfonyl fluoride, a serine modifier.
solvent-tolerant bacterium strain, MH6, was isolated by hydrophilic organic solvent DMSO enrichment in the medium and identified as Serratia marcescens. The extracellular protease with novel organic-solvent-stable properties from strain MH6 was purified and characterized. The molecular mass of the purified protease was estimated to be 52 kDa on SDS-PAGE. The open reading frame (ORF) of the MH6 protease encoded 504 amino acids with 471 amino acid residues in the mature protease. Based on the inhibitory effects of EDTA and 1,10-phenathroline, the MH6 protease was characterized as a metalloproteinase. The enzyme activity was increased in the presence of $Ni^{2+}$, $Mg^{2+}$, and $Ca^{2+}$. The protease could also be activated by the nonionic surfactants Tween 80 (1.0%) and Triton X-100 (1.0%). The protease showed remarkable solvent stability in the presence of 50% (v/v) solutions of long-chain alkanes and long-chain alcohols. It was also fairly stable in the presence of 25% solutions of hydrophilic organic solvents. Owing to its high stability in solvents and surfactants, the MH6 protease is an ideal candidate for applications in organic catalysis and other related fields.
The aims of the present studies were to understand the physiolosical and genetic characters of Streptomyces sp. isolated from soil. It revealed that Streptomyces sp. SMF301 had very fast growth rate and produced extracellular protease and heavily sporulated on rich media. It also showed $\beta$-lactamase activity and pigment production. Nonsporulating mutants were isolated after NTG or acriflavin treatment and their characters were compared with the parent strain. It was found that the mutants obtained by acriflavin treatment and ghier characters were compared with the parent strain. It was found that the mutants obtained by acriflavin treatment lost the pigment formation and $\beta$-lactamase production. Protease actibity of the mutant was lowered and the pH optimum was changed toward neutral. It was found that the changes were resulted from the reduction of alkaline protease biosynthesis in the bald mutant. Therefore it is considered that sporulation, pigment formation, $\beta$-lactamase production, and alkaline protease production in Streptomyces sp. might be controlled with a closely related relationship.
Objective: The effects of a crude protease extracted from Cordyceps militaris (CM) mushrooms on the postmortem tenderization mechanism and quality improvement in spent hen breast were investigated. Methods: Different percentages of the crude protease extracted from CM mushrooms were introduced to spent hen breast via spray marination, and its effects on tenderness-related indexes and proteolytic enzymes were compared to papain. Results: The results indicated that there was a possible improvement by the protease extracted from CM mushroom through the upregulation of endogenous proteolytic enzymes involved in the calpain system, cathepsin-B, and caspase-3 coupled with its nucleotide-specific impact. However, the effect of the protease extracted from CM mushroom was likely dose-dependent, with significant improvements at a minimum level of 4%. Marination with the protease extracted from CM mushroom at this level led to increased protein solubility and an increased myofibrillar fragmentation index. The sarcoplasmic protein and collagen contents seemed to be less affected by the protease extracted from CM mushroom, indicating that substrate hydrolysis was limited to myofibrillar protein. Furthermore the protease extracted from CM mushroom intensified meat product taste due to increasing the inosinic acid content, a highly effective salt that provides umami taste. Conclusion: The synergistic results of the proteolytic activity and nucleotide-specific effects following treatments suggest that the exogenous protease derived from CM mushroom has the potential for improving the texture of spent hen breast.
Among 63 Bacillus strains grown at $60^{\circ}C$ from sixteen samples of homemade Korean soybean paste, one strain was selected for producing the thermostable protease. The isolate has been identified as Bacillus licheniformis on the basis of its 16S rDNA sequence, morphology and biochemical properties. Culture filtrate of the isolate showed maximal protease activity at the reaction condition of $60-65^{\circ}C$ and pH 11. The culture filtrate retained more than 87% of initial protease activity after incubation for 30 min at $60^{\circ}C$ without substrate. In order to develop the medium composition, effects of ingredients including nitrogen sources, carbon sources, metal ions and phosphate were examined for protease production of the isolate. Lactose and soytone peptone were the most effective carbon and nitrogen source for the enzyme production. After the late logarithmic growth phase the isolate began to produce the protease, and the maximum protease productivity was reached to 550 unit/ml in the optimized medium consisting of lactose (3%), soytone peptone (1.5%), $MgSO_4$ (0.1%), $K_2HPO_4$ (0.03%), and $KH_2PO_4$ (0.03%) at 28 h of incubation.
Pronase, a protease produced for commercial purpose by Streptomyces griseus, was composed of serine protease, alkaline protease, aminopeptidase and carboxypeptidase complex, and it has been widely used as anti-inflammatory drugs for human therapy. In this study, we developed a new integration vector, pHJ101 derived from pSET152, containing strong promoter, ermE, to overexpress a certain protease gene. Specific PCR primers for cloning of sprA (a gene for S. griseus protease A) and sprB (a gene for S. griseus protease B) genes were designed from the basis of nucleotide sequence in databases and amplified by PCR. Plasmid pHJ201 and pHJ202 were constructed by inserting of amplified each gene in a vector pHJ101. S. griseus HA and S. griseus HB were respectively obtained by conjugal process of a parent strain, S. griseus IFO 13350 with the recombinant Escherichia coli harboring plasmid pHJ201 or pHJ202. When protease activity was measured in flask cultivation, produced protease levels of S. griseus HA and S. griseus HB increased about 5.3 times and 5 times, respectively, more than that of parent strain. And, the constructed integrating plasmid pHJ101 was applicable for overexpression of a certain gene in Streptomyces sp.
The activity change of mulberry seeds protease was compared during germination for 5 days at 28$^{\circ}C$ in the dark place after daily hormone injection of different concentration. The protease from germinated mulberry seeds for 4 days was partially purified and the enzyme characteristics was investigated. The protease activity of mulberry seeds treated by hormone was highest with 10 $\mu$m GA3 followed by 10 $\mu$M zeatin and 10 $\mu$M kinetin. The protease activity of mulberry seeds was increased by 14% with 10ml agar culture that control at 4th day of germination. The protease from mulberry seeds was purified 313 fold by DEAE-Toyo-pearl 650M, Butyl-Toyopearl, Hydrozylapatite and Toyopearl HW 55M. After purification, the specific activity of the enzyme was 175 units/mg. Optimum pH and temperature of protease from mulberry seeds was 5.0 and 37$^{\circ}C$, respectively. The protease was stable below 37$^{\circ}C$ and the enzyme activity was decreased by 50%, when incubated at 52$^{\circ}C$ for 10minutes. The protease activity of mulberry seeds was inhibited by metal ions such as mercury, iron, zinc, copper, but activited by magnesium, choromium, aluminium ions. The Km value of the protease was 0.89mM with azocasein as a subscribe.
The purpose of this research was to investigate the production and characterization of alkaline protease from Micrococcus sp. PS-1 newly isolated from seawater. Micrococcus sp. PS-1 was grown in Luria-Bertani (LB) medium. Its optimal temperature and pH for growth were $30^{\circ}C$ and 7.0, respectively. The effect of nitrogen sources was investigated on optimal enzyme production. A high level of alkaline protease production occurred in LB broth containing 2% skimmed milk. The protease was purified in a 3-step procedure involving ultrafiltration, acetone precipitation, and dialysis. The procedure yielded a 16.43-purification fold, with a yield of 54.25%. SDS-PAGE showed that the enzyme had molecular weights of 35.0 and 37.5 kDa. Its maximum protease activity was exhibited at pH 9.0 and $37^{\circ}C$, and its activity was stable at pH 8.0-11.0 and $25-37^{\circ}C$. The protease activity was strongly inhibited by PMSF, EDTA, and EGTA. Taken together, the results demonstrate that the protease enzyme from Micrococcus sp. PS-1 probably belongs to a subclass of alkaline metallo-serine proteases.
This study was performed to investigate the protease activity from fruit body of Sarcodon aspratus and its features. The specific protease activity was increased with the increasing purification steps, 2.62 times by desalting, 17 times by CMC column chromatography, 113.8 times by DEAE-Sephadex A-50 column chromatography, and 728.3 times by Sephadex G-75 column chromatography. Proteases were identified as two different enzymes having different isoelectric points at pH 4.35 (its recovery rate 8%) and pH 4.7 (its recovery rate 3.5%). Those proteases were purified by 3,025 folds and 3,257 folds in terms of specific activity. Two proteases having different isoelectric points had similar enzymatic properties. This protease was estimated to be 43,000 daltons of molecular weights by SDS-PAGE. This protease with optimum pH 4 was almost stable in the pH range of 4~7. Optimal temperature of protease activity was 40 to 50℃, and the protease activity was completely inhibited at 70℃ for 30 min.
An attractive target for anti-herpes chemotherapy is the herpes simplex virus 1 (HSV-1) protease encoded by the UL26 gene. HSV-1 protease is essential for DNA packaging and virus maturation. To perform high throughput for potent inhibitors, the efficient production of larger amounts of highly purified enzyme and protease activity assay method must be established. In this report, expression in E. coli and purification of the protease gene of HSV-1 strain F was investigated. The protease gene was cloned pET28, and the nucleotide sequence of protease catalytic domain of HSV-1 compared strain F with other strains (KOS and CL101). In these results the F strain was different in base sequence. However, the amino acid sequence was identifical. The HSV-1 protease was purified with His-tagged affinity column. The analysis of HSV-1 protease activity was performed by high performance liquid chromatography.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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