Xylan 분해 균주인 Bacillus stearothermophilus No. 236 분리균의 $\beta$-xylosidase 생산 유전자(xylA)의 염기 서열 및 transcription start site를 결정한 이전 연구 결과에 의하면 xylA 유전자는 매우 특이하게 UUG codon에서 translation이 시작되며 initiation codon 15dp 윗쪽에는 promoter로 추정되는 염기 서열을 가지고 있는 것으로 분석되었다. 이와 같은 xylA 유전자 promoter region의 구조는 E. coli에 클로닝된 xalA 유전자를 이용한 실험 결과로도 확인되었다. xalA promoter의 -10 element는 CATAAT로서 6개의 염기 중 5개가 그리고 -35 element의 경우는 TTGTTA로서 6개의 염기 중 4개가 consensus sequence와 일치되었으나 두 hexamer 사이의 거리가 최적 거리에서 크게 벗어난 12 bp인 것으로 분석되었다. 본 연구에서는 $\beta$-xylosidase의 대량 생산을 위한 연구의 일환으로 xalA promoter sequence의 체계적 구조 변화에 의한 promoter strength에 미치는 효과를 E. coli와 B. subtilis두 숙주 세포에서 조사 분석해 본 결과, 첫째로 두 promoter elements사이의 거리를 최적거리인 17 bp로 바꾸었을 때 xalA의 발현율은 E. coli에서는 1.6배, B. subtilis에서는 2.5배 정도 증가함을 보여주었다. 그리고 -35 element는 consensus sequence와 같이 5'쪽에서 네번째 위치에 있는 T$\longrightarrow$A로 변이 시켰을 때 E. coli경우 2.3배, 특히 B. subtilis에서는 35배나 되는 가장 높은 promoter 활성의 증가를 보였다. 그러나 -10 sequence의 경우 consensus sequence와 같이 5' 쪽에서 첫번째 위치에 있는 C$\longrightarrow$T로 transition시켰을 때 예상외로 오히려 발현율이 5~15배까지 낮아지는 특이한 결과를 얻었다. 따라서 본 연구 결과 xalA promoter의 경우 -10 sequence인 CATAAT의 C와 -35 element의 두 염기가 promoter활성에 있어 가장 중요한 염기임을 알 수 있었다.
The strength and regulatory characteristics of the heat-inducible HSA1, HSA2 and TPS1 promoters were compared with those of the well-established, carbon source-regulated FMD promoter in a Hansenula polymorpha-based host system in vivo. In addition, the Saccharomyces cerevisiae-derived ADH1 promoter was analysed. While ADH1 promoter showed to be of poor activity in the foreign host, the strength of the heat shock TPS1 promoter was found to exceed that of the FMD promoter, which at present is considered to be the strongest promoter for driving heterologous gene expression in H. polymorpha.
A polymeric adhesion promoter was synthesized to improve the adhesive strength of the Ni lead frame/epoxy composite. Poly(itaconic acid-co-acrylamide) (IAcAAM) was prepared by copolymerizing itaconic acid and acrylamide. We compared the adhesive strength between the Ni lead frame and epoxy composite according to the molecular weight of IAcAAM. The molecular weight of IAcAAM was controlled using an initiator, which made it possible to use IAcAAM in the epoxy molding compound (EMC) manufacturing process by modulating the melting temperature. The adhesive strength of Ni lead frame/epoxy composite increased with the addition of IAcAAM to the epoxy composite. In addition, as the molecular weight of IAcAAM increased, the adhesive strength of the Ni lead frame/epoxy composite slightly increased. We confirmed that IAcAAM with an appropriate molecular weight can be used in the EMC manufacturing process and increase the adhesive strength of the Ni lead frame/epoxy composite.
To analysis a promoter strength of Atographa californica nucler polyhedrosis virus (AcNPV) IE1 gene, an immediate viral gene, ${\beta}$-glactosidase gene as a reporter gene was introduced under the control of the IE1 promoter. The restriction fragment containing IE1 promoter and ${\beta}$-galctosidase gene from pAcIE1-gal were inserter into pBacPAK9 to yield transfer vector pAcNPV-IE1-gal. The pAcNPV-IE1-gal was cotransfected with AcNPV genomic DNA BacPAK6 into Sf9 cells to produce recombinant baculovirus AcNPV-IE1-gal. In addition, recombinant bacvulovirus AcNPV-gal, which express ${\beta}$-galac-tosidase under the control of the polyhedrin promoter, was constrer, was constructed to compared with AcNPV-IE1-gal. The recombinant viruses were respectively infected into Sf9 cells and characterized by the virus titer and expression of ${\beta}$-galactoxidase in Sf9 cells. The promoter strength of IE1 and polyhedrin promoters was determined by the amount of ${\beta}$-galactosidase secreted into medium by viral infection. The titer of AcNPV-IE1-Gal determined by plaque assays in Sf9 cells was similar to that of AcNPV-gal. However, expression level of ${\beta}$-galactosidase by AcNPV-IE1-gal was significantly lower than that by AcNPV-gal. In conclusion, promoter strength of IE1 was approximately 25-fold lower than that of polyhedrin.
Polyetherimide와 실리콘 사이의 RIE 처리 및 알루미늄 킬레이트 계열의 adhesion promoter 처리에 따른 접착력과 고온고습환경에서의 신뢰성 변화를 연구하였다. 실험 방법으로는 180$^{\circ}$ 필 테스트 및 <85$^{\circ}C$ 85%> 테스트, SEM, AFM, 증류수 접촉각 실험이 수행되었다. $^O_2$ RIE 실험 결과 초기 접착력은 RIE 처리시간에 따라 약간의 변화를 가져왔으나 고온고습 환경에서의 저항성은 급격히 떨어지는 것이 관찰되었고 이것은 표면 거칠기의 영향이 아닌 표면의 친수성 정도에 따른 것으로 나타났다. Al-chelate adhesion promoter의 경우 초기 접착력에는 변화가 없으나 고온 고습환경에서의 저항성이 크게 증가하였는데 이것은 표면이 소수성으로 변한 데 따른 것으로 나타났다.
Staphylokinase (SAK) was produced in B. subtilis using two different promoter systems, i.e. the P43 and sacB promoters. To maximize SAK expression in B. subtilis, fermentation control strategies for each promoter were examined. SAK, under P43, a vegetative promoter transcribed mainly by $\sigma$(sup)B containing RNA polymerase, was overexpressed at low dissolved oxygen (D.O.) levels, suggesting that the sigB operon is somewhat affected by the energy charge of the cells. The expression of SAK at the 10% D.O. level was three times higher than that at the 50% D.O. level. In the case of sacB, a sucrose-inducible promoter, sucrose feeding was used to control the induction period and induction strength. Since sucrose is hydrolyzed by two sucrose hydrolyzing enzymes in the cell and culture broth, the control strategy was based on replenishing the loss of sucrose in the culture. With continuous feeding of sucrose, WB700 (pSAKBQ), which contains the SAK gene under sacB promoter, yielded ca. 35% more SAK than the batch culture. These results present efficient promoter-dependent control strategies in B. subtilis host system for foreign protein expression.
본 연구에서는 Saccharomyces cerevisiae를 이용해서 neoagarobiose hydrolase (NABH)를 효율적으로 생산하기 위한 NABH558 유전자 발현시스템을 구축하였다. ADH1 promoter와 GAL10 promoter 하류에 NABH558 유전자를 가진 pAMFα-NABH plasmid와 pGMFα-NABH plasmid는 S. cerevisiae 2805 균주에 형질전환되었다. 2805/pAMFα-NABH 균주는 YPD (2% dextrose) 배지에서 가장 높은 NABH 효소 활성(0.069 unit/ml/DCW)을 보였고, 2805/pGMFα-NABH 균주의 경우는 배지의 조성과 상관없이 비슷한 수준의 NABH 활성(0.02-0.027 unit/ml/DCW)을 보였다. RT-PCR을 통한 NABH558 유전자의 transcription level은 NABH 활성 증가에 따라 비슷한 수준으로 증가되었음을 확인할 수 있었다. 또한 재조합균주에서 생산된 NABH는 agarose를 galactose와 AHG로 분해하였다. 따라서 NABH558 유전자의 발현에는 ADH1 promoter를 사용하는 것이 더 효율적이며 GAL10 promoter와 비교해서 최대 3배정도 높은 활성의 재조합 NABH를 생산할 수 있음을 알 수 있었다.
본 연구에서는 GALl, GALl, GALlO 및 GAP promoter 하류에 reporter 유전자인 K. marxianus의 inulinase 유전자(lNUl)를 연결하여 각각의 재조합 plasmid들을 구축하고, 이들로 형질전환된 S. cerevrswe를 회분배양(YPOG 배지 )하여 외래 유전자 발현에 미치는 promoter의 영향을 비교.검토하 였다. 재조합 효모의 최종 균체농도는 36-39 00600 값을 보여 promoter에 따른 큰 차이를 보이지 않았으나, 포도당 소모기간 동안 비증식속도는 평균 $0.24 h^{-1}$로 유지되다가 galactose 소모기간 동안에 GAL promoter 함유 효모배양의 경우 $0.04-0.06 h^{-1}$, pYIGP 함유 재조합 효모배양은 $0.10 h^{-1}$로 감소하였다. 포도당 고갈 후 inulinase 발현은 시작되었고 균체외 inulinase의 발현 수준은 배양 72시간에 4.3 (GALl promoter), 4.0 (GAL7 promoter), 3.8 (GAL10 promoter) 및 1.6 (GAP promoter) unit/mL에 도달하였다. 평판배지상에서의 활성염색과 회분배양의 결과(최종발현양 및 초기 inulinase 말현속도), inulinase 발현에 미치는 promoter 세기 는 GALl > GALlO > GAL7 > GAP 순임을 알 수 있었다. GAL promoter가 배양말기까지 78 % 이상의 높은 plasmid 안정성을 보인 반면에, GAP promoter의 경우 55%의 낮은 plasmid 안정성을 보였다. 또한, 재조합 inulinase는 promoter 종류에 상관없이 98% 이상 배양액으로 분비되였다.
Escherichia coli 의 superoxide 라디칼 유도발현성 유전자의 탐색을 위하여 먼저 superoxide 라디칼에 의하여 발현이 유도되는 프로모터를 탐색하였다. 이를 위햐여, 프로모터 탐색벡터인 pJAC4 를 이용하여 E. coli MG1655 균주로부터 프로모터 library 를 구성하였다. Ampicillin 농도구 배정판법을 이용하여 프로모터 세기가 다른 클론들을 구별하여 프로모터 세기가 약한 것부터 중간정도까지 383개의 클론을 선별하였다. 이들 프로모터 클론들의 superoxide 라디칼 유도발현성을 paraquat 를 첨가한 ampicilin 농도구배평판에서 조사하였다. 이중 3개의 클론이 paraquat 에 의하여 유도됨을 확인하였고, 유도배율은 1.4-4배 정도이었다. 이들 프로모터의 염기서열을 결정한 결과 기종의 database 에 등록되어 있는 E. coli 염기서열들과는 다른 새로운 유전자임을 알았다. 이들 프로모터에 대하여 primer 연장법과 SS1 뉴클리아제 분석을 총하여 전사개시 자리를 결정하였고, paraquat 처리시 mRNA 의 양이 증가함을 관찰하였다. 특히 클론5의 경우는 두개의 전사개시 위치를 가지고 있으며, paraquat 처리시 상위 부분의 전사개시자리가 성택적으로 사용됨을 알 수 있었다. 프로모터 서열을 검색한 결과, RNA 중합효소($E\sigma^{70}$)에 의햐여 인지되는 -10과 -35부위를 가진 클론은 클론 5 뿐이었고, 나머지는 보존된 염기서열을 찾을 수 없었다. 이는 이들 프로모터들이 독특한 부류에 속하는 종류들로서, 새로운 전사조절인자를 요구할 가능성을 시사한다.
To construct an efficient Bacillus subtilis expression vector, strong promoters were isolated from the chromosomal DNA libraries of Clostridium acetobutylicum ATCC 4259, Thermoactinomyces sp. E79, and Bacillus thermoglucosidasius KCTC 3400. The $P_{C27}$ promoter cloned from the clostridial chromosmal DNA showed a 5-fold higher promoter strength than the $P_{SP02}$ promoter in the expression of the cat gene, and its sequence was estimated as an upstream region of the predicted hypothetical gene (tet-R family bacterial transcription regulator gene) in C. acetobutylicum. As a promoter element, $P_{C27}$ exhibited putative nucleotide sequences that can bind with bacterial RNAP and the 3'end of the 16S rRNA just upstream of the start codon. In addition, the promoter activity of $P_{C27}$ was distinctively repressed in the presence of glucose. Using $P_{C27}$ as the promoter element, a glucose controllable B. subtilis expression vector was constructed and the lipase gene from Staphylococcus haemolyticus KCTC 8957P was expressed in B. subtilis. When compared with the lipase expression by the T7 promoter induced by IPTG in E. coli, the $P_{C27}$ promoter showed about a 1.5-fold higher expression level in B. subtilis than that without induction.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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