Hiwi, a human homologue of the Piwi family, plays an important role in stem cell self-renewal and is overexpressed in various human tumors. This study aimed to determine whether an RNA interference-based strategy to suppress Hiwi expression could inhibit tumor growth in a xenograft mouse model. A rare population of $SSC^{lo}\;Alde^{br}$ cells was isolated and identified as lung cancer stem cells in our previous study. Plasmids containing U6 promoter-driven shRNAs against Hiwi or control plasmids were successfully established. The xenograft tumor model was generated by subcutaneously inoculating with lung cancer stem cell $SSC^{lo}\;Alde^{br}$ cells. After the tumor size reached about 8 mm in diameter, shRNA plasmids were injected into the mice via the tail vein three times a week for two weeks, then xenograft tumor growth was assessed. In nude mice, intravenously delivery of Hiwi shRNA plasmids significantly inhibited tumor growth compared to treatment with control scrambled shRNA plasmids or the vehicle PBS. No mice died during the experiment and no adverse events were observed in mice administered the plasmids. Moreover, delivery of Hiwi shRNA plasmids resulted in a significant suppressed expression of Hiwi and ALDH-1 in xenograft tumor samples, based on immunohistochemical analysis. Thus, shRNA-mediated Hiwi gene silencing in lung cancer stem cells by an effective in vivo gene delivery strategy appeared to be an effective therapeutic approach for lung cancer, and may provide some useful clues for RNAi gene therapy in solid cancers.
출아효모 Saccharomyces cerevisiae에서 RNA-binding 단백질인 Tho1은 mRNA가 전사되는 동안 초기 mRNA에 결합하여 mRNP 생성과 성숙한 mRNA의 핵에서 세포질로의 방출에 관여하는 것으로 여겨진다. 분열효모 Schizosaccharomyces pombe에서도 Tho1과 유사한 단백질을 암호화하는 유전자(spTho1로 명명)를 찾아 그 특성을 조사하였다. 이배체 S.pombe 균주에 하나의 spTho1 유전자만을 결실시킨 후 4분체분석을 수행한 결과, 이 유전자는 생장에 반드시 필요하지 않았다. 또한 spTho1 결실 돌연변이는 mRNA의 핵에서 세포질로의 방출도 정상적으로 보였다. 그러나 티아민에 의해 발현이 조절되는 강력한 프로모터를 이용하여 spTho1를 과발현시키면, 세포의 생장이 억제되었으며 $poly(A)^+$ RNA가 핵 안에 축적되었다. 이와 같은 결과들은 spTho1 유전자가 필수적이지는 않지만 mRNA의 핵에서 세포질로의 방출에 관여하고 있음을 시사한다.
Kim, Mi-Jin;Kim, Sang-Hyuk;Lee, Jae-Hyung;Seo, Jin-Ho;Lee, Jong-Hwan;Kim, Jong-Hyun;Kim, Yeon-Hee;Nam, Soo-Wan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제18권12호
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pp.1938-1944
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2008
The procpb gene encoding human procarboxypeptidase B (proCPB, GeneBank access code AJ224866) was cloned and its Pichia expression plasmid, $pPIC9{\alpha}$/hproCPB (9.2 kb), was constructed, in which procpb was under the control of the AOXl promoter and connected to the downstream of the mating factor ${\alpha}$-1 ($MF{\alpha}1$) signal sequence. The plasmid was linearized by digestion with Sacl, and integrated into the genome of P. pastoris strain GS115. By culturing of Pichia transformant on methanol medium, the human proCPB was successfully expressed and secreted into the culture supernatant. Moreover, Western blot analysis of the extracellular proteins showed proCPB bands clearly at a molecular mass of 45 kDa, confirming the expression of proCPB with its right size. The CPB activity reached about 3.5 U/ml and 12.7 U/ml in the flask and fermentor batch cultures of Pichia transformant, respectively. No CPB enzyme activity was found in the intracellular fraction. When the fed-batch cultivation was performed with methanol and glycerol mixture as a feeding medium, the extracellular CPB activity was increased to 42.0 U/ml, which corresponds to a 3.3-fold higher level of CPB activity than that of batch culture. The $K_m$ and $k_{cat}$ values of recombinant human CPB enzyme for hippuryl-$_L$-Arg as a substrate were estimated to be 0.16 mM and $11.93\;sec^{-1}$, respectively.
Pseudomonas fluorescens KLR101 was found to be capable of producing polyhydroxyalkanoate (PHA) using various sugars and fatty acids with carbon numbers ranging from 2 to 6. The PHA granules consisted mainly of a poly(3-hydroxybutyrate) homopolymer and/or poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate) copolymer. Genomic DNA of P. fluorescens was fractionated and cloned into a lambda library, in which a 5.8-kb fragment that hybridized to a heterologous phaC probe from Ralstonia eutropha was identified. In vivo expression in Klebsiella aerogenes KC2671 (pUMS), restriction mapping, Southern hybridization experiments, and sequencing data revealed that PHA biosynthesis by P. fluorescens relied upon a polypeptide encoded by a 1,683-bp non-operonal ORF, which was preceded by a possible -24/-12 promoter and highly similar to DNA sequences of a gene encoding PHA synthase in the genus Pseudomonas. In vivo expression of the putative PHA synthase gene ($phaC_{Pf}$) in a recombinant Escherichia coli strain was investigated by using glucose and decanoate as substrates. E. coli (${phaC_{Pf}}^+$, pUMS) grown in medium containing glucose accumulated PHA granules consisting mainly of 3-hydroxybutyrate, whereas only a trace amount of 3-hydroxydecanoate was detected from an E. coli fadR mutant (${phaC_{Pf}}^+$) grown in medium containing decanoate. In vitro enzymatic assessment experiments showed that 3-hydroxybutyryl-CoA was efficiently used as a substrate of purified $PhaC_{Pf}$, suggesting that the putative PHA synthase of P. fluorescens utilizes mainly short-chain-length PHA precursors as a substrate.
Kim, Seung-Chang;Lee, Seung-Hwan;Kim, Bum-Soo;Kim, Tae-Hun;Seong, Hwan-Hoo;Oh, Sung-Jong;Yoon, Du-Hak;Choi, Bong-Hwan
Journal of Animal Science and Technology
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제53권6호
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pp.511-516
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2011
Fas gene known to associate with intramuscular fat content in Korean cattle was selected for DNA marker development. Fas (APO-1, CD95), a member of the tumor necrosis factor (TNF) receptor superfamily, is a cell membrane protein that mediates apoptosis (programmed cell death). We discovered single nucleotide polymorphisms (SNPs) within Fas gene in order to develop novel DNA markers at genomic level. Of this gene to search for SNP, sequences of whole exon and 1kb range of both front and back of the gene using 24 cattle were determined by direct-sequencing methods. As a result, 16 SNPs in exon, 37 SNPs in intron and 2 SNPs in promoter region, a total of 55 SNPs were discovered. In these SNPs, thirty-one common polymorphic sites were selected considering their allele frequencies, haplotype-tagging status and Linkage Disequilibrium (LD) for genotyping in larger-scale subjects. Selected SNPs were confirmed genotype through SNaPshot method (n=274) and were examined for possible genetic association of Fas polymorphisms with carcass weight (CWT), eye muscle area (EMA), and backfat thickness (BF). So, the SNP have been identified significant g.-12T>G, g.1112T>G and g.32548T>C. These results suggest that polymorphism of Fas gene was associated with meat quality traits in Hanwoo.
Background: Our previous study had identified the SNP (g.81966377T > C) and indel (g.81966364D > I) located in the promoter of APM1 to have a significant effect on marbling in Hanwoo. APM1 encodes an adipocytokine called adiponectin, which plays a significant role in lipogenesis. The aim of this study was to verify and validate the effect of the SNP and indel on marbling and other carcass traits in a large, representative, countrywide population of Hanwoo cattle. The carcass traits measured were marbling (MAR), backfat thickness (BFT), loin eye area (LEA), and carcass weight (CAW). Results: Primers were designed to amplify 346 bp of the genomic segment that contained the targeted SNP (g.81966377) and the indel (g.81966364). After data curation, the genotypes of 8,378 individuals identified using direct sequencing analysis estimated frequencies for C (0.686) and T (0.314) respectively showing genotype frequencies for CC (0.470), CT (0.430) and TT (0.098). The genotypes were significantly associated with MAR, BFT and LEA. The indel had significant effect on marbling (P < .0001) with strong additive genetic effects. The allele frequencies was estimated at (DEL, 0.864) and insertion (INS, 0.136) presenting genotypes of D/D (75.63 %), D/I (21.44 %), and I/I (2.92 %). Significant departure from Hardy-Weinberg equilibrium was not detected for both the SNP and the indel. Conclusion: The SNP genotypes showed significant association with MAR, BFT and LEA with strong additive genetic effects, while the indel was significantly associated with MAR. The results confirmed that the variants can be used as a genetic marker for improving marbling in Hanwoo.
The gene encoding Thermus sp. T351 alkaline phosphatase (T351 APase) was cloned and sequenced. The gene consisted of 1,503 bp coding for a protein with 500 amino acid residues including a signal peptide. The deduced amino acid sequence of T351 APase showed relatively low similarity to other Thermus APases. The T351 APase gene was expressed under the control of the T7lac promoter on the expression vector pET-22b(+) in Escherichia coli BL21 (DE3). The expressed enzyme was purified by heat treatment, and $UNO^{TM}$ Q and $HiTrap^{TM}$ Heparin HP column chromatographies. The purified enzyme exhibited high activity at extremely alkaline pHs, reaching a maximum at pH 12.0. The optimum temperature of the enzyme was $80^{\circ}C$, and the half-life at $85^{\circ}C$ was approximately 103 min. The enzyme activity was found to be dependent on metal ions: the addition of $Mg^{2+}$ and $CO^{2+}$ increased the activity, whereas EDTA inhibited it. With p-nitrophenyl phosphate as the substrate, T351 APase had a Michaelis constant ($K_{m}$) of $3.9{\times}10^{-5}M$. The enzyme catalyzed the hydrolysis of a wide variety of phosphorylated compounds.
Choi, Jae Young;Kim, Yang-Su;Wang, Yong;Kang, Joong Nam;Roh, Jong Yul;Shim, Hee Jin;Woo, Soo-Dong;Jin, Byung Rae;Je, Yeon Ho
Molecules and Cells
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제28권1호
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pp.19-24
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2009
The goal of this study was to create a novel baculovirus expression system that does not require recombinant virus purification steps. Transfection of insect cells with transfer vectors containing barnase under control of the Cotesia plutellae bracovirus (CpBV) promoters ORF3004 or ORF3005 reduced cell growth. Co-transfection with bApGOZA DNA yielded no recombinant viruses and nonrecombinant backgrounds. To further investigate the detrimental effects of barnase on insect cells, two recombinant bacmids harboring the barnase gene under control of the CpBV promoters, namely bAcFast-3004ProBarnase and bAcFast-3005ProBarnase, were constructed. While no viral replication was observed when only the recombinant bacmids were transfected, recombinant viruses were generated when the bacmids were co-transfected with the transfer vector, pAcUWPolh, through substitution of the barnase gene with the native polyhedrin gene by homologous recombination. Moreover, no non-recombinant backgrounds were detected from unpurified recombinant stocks using PCR analysis. These results indicate that CpBV promoters can be used to improve baculovirus expression vectors by means of lethal gene expression under the control of these promoters.
한국생명과학회 2005년도 국제학술심포지움 The 44th Annual Meeting of Korean Society for Life Science
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pp.23-36
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2005
Bax, a mammalian pro-apoptotic member of the Bcl-2 family, induces cell death when expressed In yeast. To investigate whether .Bax expression can induce cell death in plant, we produced transgenic Arabidopsis plants that contained murine Bax cDNA under control of a glucocorticoid-inducible promoter. Transgenic plants treated with dexamethasone, a strong synthetic glucocorticoid, induced Bax accumulation and cell death, suggesting that some elements of cell death mechanism by Bax may be conserved among various orgarusms. Therefore, we developed novel yeast genetic system, and cloned several Plant Bax Inhibitors (PBIs). Here, we report the function of two PBIs In detail. PBIl is ascorbate peroxidase (sAPX). Fluorescence method of dihydrorhodamine123 oxidation revealed that expression of Bax in yeast cells generated reactive oxygen species (ROS), and which was greatly reduced by co-expression with sAPX. These results suggest that sAPX inhibits the generation of ROS by Bax, which in turn suppresses Bax-induced cell death in yeast. PBI2 encodes nucleoside diphosphate kinase (NDPK). ROS stress strongly induces the expression of the NDPK2 gene in Arabidopsis thaliana (AtNDPK2). Transgenic plants overexpressing AtNDPK2 have lower lovels of ROS than wildtype plants. Mutants lacking AtNDPK2 had higher levels of ROS than wildtype. H$_{2O2}$ treatment induced the phosphorylation of two endogenous proteins whose molecular weights suggested they are AtMPK3 and AtMPK6. In the absence of H2O2 treatment, phosphorylation of these proteins was slightly elevated in plants overexpressing AtNDPK2 but markedly decreased In the AtNDPK2 deletion mutant. Yeast two-hybrid and in vitro protein pull-down assays revealed that AtNDPK2 specifically interacts with AtMPK3 and AtMPK6. Furthermore, AtNDPK2 also enhances the MBP phosphorylation activity of AtMPK3 i'n vitro. Finally, constitutive overexpression of AtNDPK2 in Arabidopsis plants conferred an enhanced tolerance to multiple environmental stresses that elicit ROS accumulation In situ. Thus, AtNDPK2 appears to play a novel regulatory role in H2O2-mediated MAPK signaling in plants.
To construct transformed Bm5 cells, Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV)IE1 gene, an immediate early viral gene was firstly used in this study. AcNPV IE1 gene, which shares on 95.3% uncleotide sequence homology with Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) IE1 gene, was isolated and cloned into pBluescript. Neomycin gene from pKO-neo was inserted under the control of the IE1 promoter to yield pAcIE1-neo. The plasmid pAcIE1-neo was transfected into Bm5 or Sf9 cells, and neomycin-resistant cells were selected in TC100 medium containing 10% fetal bovine serum (FBS) and 1 mg/$m\ell$ G418 for two weeks. Individual clones were picked and each was amplified for further characterization. The genomic DNA from neomycin-resistnt cells was isolated and characterized by PCR using AcNPV IE1 gene-specific primers and by Southern blot analysis using neomycin gene probe. We concluded that AcNPV IE1 gene was functional in B. moridrived Bm5 cells as well as Spodaptera frugiperda-derived Sf9 cells to produce stably-transformed insect cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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