the pupose of this study was to investigate the effects of gonadotropin and nitric oxide (NO) on the expression of mouse follicular bad and bax genes that are known induce apoptosis. Large and midium size follicles of immature mice were obtained at 0, 24, and 48 hours time intervals after Pregnant Mare's Serum gonadotropins(PMSG, 5 I.U.) injection. Preovulatory follicles collected at 24 hrs after PMSG injection were cultured with or without various chemicals such as gonadotropin, gonadotropin Releasing hormone(GnRH), testosterone, Sodium nitroprusside (SNP) for 24 hrs at $37^{\circ}C$. After 24 hrs culture, the culture media was used for nitrite assay and total RNA was extracted, subjected to RT-PCT for the analyses of bad and bax expression. We found that expression of bad and bax genes in follicles was markedly reduced before and after in vivo priming with hCG. When the preovulatory follicles were cultured for 24 hrs in culture media with PMSG and hCG, the expression of bad and bax genes was decreased. Moreover, SNP (NO generating agent) can significantly suppress the expression of bad and bax genes in follicles when apoptosis was induced by GnRH agonist and testosterone. At the same time, nitrite production of culture media was increased in GnRH agonist + SNP, testosterone + SNP and SNP treated groups than control group. These data demonstrated for the first time that peptide hormones and NO may play important roles in the regulation of mouse follicular differentiation and may prevent apoptosis via supressing the expression of bad and bax genes.
Follicular atresia is a universal and characteristic phenomenon of both non-mammalian and mammalian vertebrates. Generally it is estimated that greater than 99% of follicles become atretic in higher domestic animals and human. The number of selected follicles developing to the preovulatory stage are thus fewer. Follicles can become atretic at any stage of development. The previous studies emphasized on descriptive and retrospect aspects of a limited population of the fully grown preovulatory follicle. The main efforts in ovarian physilogical researches are focused on follicular development culminating in ovulation but recent advances have resulted in a better understanding of atresia. Nowadays, recent studies are concentrated on the induction of atresia in a selected population of follicles and of the associated cellular, endocrine, biochemical and molecular changes. The factors initiating atresia and follicle selections are worthy of investigations. Another intriguing question is whether one can predict when a follicle will become atretic, i.e., what biochemical markers indicate that a follicle is destined for atresia. It is generally agreed that atretic process may vary even in antral follicles at different stages of their differentiations and among species. The dicisive factors are follicular responsiveness and the hormonal milieu. Some generalizations can be made on the basis of experimental induction of atresia. Alteration of the pattern of follicular steroid production is associated with the initiation stage of atretic process. Atresia appears to be a process unfolding gradually and affecting progressively in increasing number of functions and components of the follicle. The oocyte may be the latest to be afflicted in the atretic process. The high steroidogenic activity of atretic follicles lends support to the notion that atresia is not necessarily a degenerative process and that atretic follicles may play an essential role in ovarian physiology. The simultaneous occurence of growth and atretic processes may render the search for regulatory mechanisms involved in atresia difficult extremely. The questions such as how follicles are selected to undergo ovulation rather than atresia or what the mechanism of atresia is remain unanswered. However, the factors regulating or modifying ovarian hormonal milieu for the initiation of follicular growth and maturation or of atresia are being elucidated.
Morphometric observation on the ovarian follicles of ICR strain-female mice has been conducted to investigate the effect of induced inflammation on the follicular populations. Inflammation was induced by administering 25${\mu}\ell$ of turpentine oil intraperitoneally 2 times at the interval of 3 days. Mice showing 5-day estrous cycle about 20 days after induction of inflammation are placed in experimental group. Normal follicles of 100~399$\mu\textrm{m}$ in diameter increased at estrus but those of over 400$\mu\textrm{m}$ decreased. super-ovulation increased the number of normal follicles of over 400$\mu\textrm{m}$. The number of normal follicles of over 400$\mu\textrm{m}$ 48 hours after superovulation was not significantly different between experimental and control groups. Present results indicated that the number of preovulatory follicles 48 hours after PMSG injection did not decrease in the mice which showed regular estrous cycle even after the induction of inflammation.
Seo, You-Mi;Jeon, Mee-Jin;Kim, Tae-Seong;Chun, Sang-Young
대한생식의학회:학술대회논문집
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2006.06a
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pp.6-11
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2006
Our previous study demonstrates a rapid activation of atypical PKC${\zeta}$ by the ovulatory dose of LH/hCG. The present study was therefore designed to identify PKC${\zeta}$ regulated-genes in rat ovarian preovulatory granulosa cells. Preovulatory granulosa cells cultured in the presence of myristoylated PKC${\zeta}$ pseudosubstrate peptide were subjected to identify differentially expressed genes by using anneling control primer RT-PCR. As a result, among sixteen genes identified, six genes (testin, glypican-4, retrovirus SC1, connective growth factor, aminolevulinic acid synthase1 and serum- inducible kinase) were rapidly stimulated by hCG. Northern blot analysis demonstrated that all these genes were rapidly stimulated by hCG and declined thereafter. In situ hybridization analysis revealed the expression of these genes in granulosa cells of preovulatory follicles. The present study demonstrates time- and cell-specific expression of PKC${\zeta}$-regulated genes, and may imply that these genes play a specific role(s) during LH-induced ovulation.
In mammalian ovary, steroidogenic acute regulatory (StAR) protein mediates the true rate-limiting step of transport of cholesterol from outer to inner mitochondrial membrane. Appropriate expression of StAR gene represents an indispensable component of steroidogenesis and its regulation has been found to be species specific. However, limited information is available regarding StAR gene expression during estrous cycle in buffalo ovary. In the present study, expression, localization and hormonal regulation of StAR mRNA were analyzed by semi-quantitative RT-PCR in buffalo ovary and partial cDNA was cloned. Total RNA was isolated from whole follicles of different sizes, granulosa cells from different size follicles and postovulatory structures like corpus luteum and Corpus albicans. Semi-quantitative RT-PCR analyses showed StAR mRNA expression in the postovulatory structure, corpus luteum. No StAR mRNA was detected in total RNA isolated from whole follicles of different size including the preovulatory follicle (>9 mm in diameter). However, granulosa cells isolated from preovulatory follicles showed the moderate expression of StAR mRNA. To assess the hormonal regulation of StAR mRNA, primary culture of buffalo granulosa cells were treated with FSH (100 ng/ml) alone or along with IGF-I (100 ng/ml) for 12 to 18 h. The abundance of StAR mRNA increased in cells treated with FSH alone or FSH with IGF-I. However, effect of FSH with IGF-I on mRNA expression was found highly significant (p<0.01). In conclusion, differential expression of StAR messages was observed during estrous cycle in buffalo ovary. Also, there was a synergistic action of IGF-I on FSH stimulation of StAR gene.
This study was conducted to analyze the expression pattern of inhibitor of DNA binding proteins (Id)1 and Id2 mRNA on folliculogenesis in rat ovary. The ovaries were obtained from 27 days old Sprague-Dawley rat, fixed, dehydrated, and paraffin embedded. For in situ hybridization, anti-sense and sense Idl and Id2 cRNA probes were prepared and applied to the ovarian section. The ovarian sections were coated with NTB-2 emulsion. After that, the slides were developed and counterstained with hematoxylin and eosin staining. In oocytes, the hybridizational signals of Id1 mRNA were strong in primordial and primary follicles, however, there were no signals in that of atretic or preovulatory follicles. The Id2 mRNA signals were also strong in the oocytes of primordial, primary and secondary follicles. Interestingly, the Id2 mRNA was expressed specifically granulosa cells, but nor in oocyte or theca cells in dominant and preovulatory follicles. Based on these results, Id1 and Id2 mRNA was expressed specifically at follicle stages and follicular tissue and might be closely related with follicle development.
Effects of daidzein on expression of mRNAs of gonadotropin receptors (FSHR, LHR) and P450 aromatase (P450arom) were evaluated in ovarian follicles of white silky fowls. The hens were 13 months old in the post-peak period of egg laying and were randomly allocated as control and daidzein-treated groups, with daidzein supplemented to the basal diet at 10 mg/kg for 7 consecutive weeks. The mRNA expression of related genes was measured by semi-quantitative RT-PCR in the granulosa layers of the preovulatory follicle (PRF: F1, F2 ...) and follicular layers of the small yellow follicle (SYF), large white follicle (LWF) and atretic follicle (ATF). Results showed that daidzein supplementation significantly increased the number of SYF and LWF (p<0.05). The relative abundance of the FSHR mRNA decreased in the granulosa layers from F3 to F1, but LHR mRNA displayed opposite developmental changes. P450arom mRNA was highest in the SYF, but was very low in the granulosa layers after follicles finished selection. Treatment with daidzein resulted in increased mRNA expression of FSHR in F3 granulosa layer, LHR in granulosa layers of F3 to F1 and P450arom in LWF (p<0.05). These results indicated that dietary supplementation of daidzein up-regulated mRNA expression of gonadotropin receptors and P450arom to improve the development of preovulatory follicles in white silky fowls after the peak-laying period.
The purpose of the present study was to set up basic information of size and status of ovaries by using ultrasonography to retrieve in vivo matured oocytes with ovum pick- up method. Ovaries were collected from the abattoir in Jeju in May and June which is breeding season. When the size of ovaries on ultrasonography was compared with real size measured by caliper, no significant difference was shown (p<0.05). The number of preovulatory follicles (>21mm) was investigated with ultrasonography and naked eyes. Ultrasonography group had 0.83 preovulatory follicles per ovary and naked-eye group had 0.75 preovulatory follicle per ovary and their average size was 2.86 cm and 2.34 cm, respectively. The average number of follicle was 4.25 with ultrasonography and 4.38 with naked eyes. There was no significant difference considering the size of follicle and number of follicle between ultrasonography and actual size except for the size of preovulatory follicle, suggesting that information of ultrasonography is able to use for OPU or other reproductive technology of mare.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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