There are concerns about the introduction and spread of plant pests and pathogens with globalization and climate change. As commercial control agents have not been developed for plant viruses, it is important to prevent virus spread. In this study, we developed a multiplex polymerase chain reaction (PCR) detection method to rapidly diagnose and control three DNA (papaya golden mosaic virus, Lindernia anagallis yellow vein virus, and melon chlorotic leaf curl virus) and two RNA (papaya leaf distortion mosaic virus and lettuce chlorosis virus) viruses that infect papaya. Specific primer sets were designed for the virus coat protein. Performing PCR, clear bands were observed with no non-specific reaction. Our multiplex PCR method can simultaneously detect small amounts of DNA/RNA to diagnose five viruses infecting papaya and prevent the spread of the virus.
Polymerase chain reaction (PCR) was evaluated for the early detection of Aujeszky's disease virus (ADV) DNA from virus-infected cell cultures. For the purposes, the Korean ADV NYJ1-87 was propagated in swine kidney (SK) cells and subjected to the amplification of DNA (217 bp) by PCR using sense and antisense primers specific to gp50 gene of the ADV. In detection of cell-associated viral DNA, reliable PCR conditions were determined as 30 cycles of reaction consisting 1 minute each of denaturation at $94^{\circ}C$, annealing at $55^{\circ}C$ and polymerization at $72^{\circ}C$. The PCR encountered best results with reagent mixtures of $50{\mu}l$ containing $200{\mu}M$ dNTPs, $0.2{\mu}M$ each sense and antisense primers, 1 mM $MgCl_2$ and 10% (v/v) template DNA in the final concentrations. ADV-specific DNAs were detected as early as 6, 6, and 9 hours post-infection, respectively, from lysates of the SK cells infected with ADV of $10^3$, $10^2$ and $10^1\;TCID_{50}/ml$ by this condition. In culture supernatant, the DNAs were detected from ADV of as low infectivity as $10^ {-3}\;TCID_{50}/ml$ by the reduced reagent concentrations and 30 cycles of 1 minute each of denaturation at $94^{\circ}C$ and annealing at $55^{\circ}C$, and 2 minutes of polymerization at $72^{\circ}C$. The lowest amount of detectable ADV DNA was 1 fg. In conclusion, the PCR condition established in the present study was recognized as a feasible alternative to time-consuming procedures in isolation and characterization of the virus.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.12
no.8
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pp.3517-3522
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2011
Contamination of public bath water by waterborne pathogens can cause disease outbreaks and contribute to background rates of disease. The aim of this study is to determine the prevalence of waterborne pathogens in public baths. A total of 30 water samples were collected from 30 different public baths in seoul, Korea. Pathogens in water samples were concentrated by 0.45 ${\mu}m$ nitrocellulose membrane filter, analyzed by both cultivation and polymerase chain reaction-reverse blot hybridization (PCR-REBA) of partial 16S rRNA gene. Various microorganisms including Escherichia coli and Shigella spp. were identified by microbiological cultivation. E. coli, Shigella spp., Salmonella spp., Pseudomonas spp. and Mycobacterium spp. were identified by PCR-REBA. Our results suggest that appropriate hygiene practice and continuous monitoring is needed for reducing health risk associated with public bath houses.
Background: The polymerase chain reaction (PCR) test is important for the confirmatory diagnosis of tuberculosis (TB) caused by Mycobacterium tuberculosis. The aim of this study was to analyze the yield of repeated PCR testing in patients with confirmed pulmonary TB. Methods: The medical records of 130 patients, who had more than two consecutive PCR tests and a M. tuberculosis-positive sputum culture from August, 2006 to December, 2007, were retrospectively reviewed for the purposes of this study. A positive TB-PCR test was defined as at least one positive test result. Results: The cumulative positive PCR test rate was 80% (104/130), with gradually increasing rates of positive findings upon the first, second and third TB-PCR tests with 52.3%, 68.5% and 75.4%, respectively. However, further testing did not increase the positive rate further. Conclusion: Repeated PCR testing at least three times for M. tuberculosis is helpful for diagnosis of pulmonary TB.
This paper focused on the detection of the genetically modified soybean (Glycine max L. MERRILL) samples to search for the speedy analysis methods. We have identified the PCR (polymerase chain reaction) assay with a newly developed technique called DHPLC (denaturing high performance liquid chromatography) to screen the GMO in soybean. The DHPLC is i1s ability to directly detection specific sequences of DNA by using column. With these characteristics. the DHPLC assay had the advantage of simplicity, rapidty could obtain result within 20 minutes. Whereas $15{\times}10^{-4}ng/{\mu}L$ concentration could be detected with the PCR analysis, $15{\times}10^{-5}ng/{\mu}L$ concentration could be detected with the DHPLC method. Therefore, DHPLC method was considered to be a simple, fast and sensitivity screening method rather than PCR analysis for GMO detection in soybean.
Kim, Guk Hyun;Kim, Min Jae;Choi, Hee Ju;Koo, Min Ji;Kim, Min Jeong;Min, Joon Gyu;Kim, Kwang Il
Fisheries and Aquatic Sciences
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v.24
no.11
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pp.351-359
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2021
The red sea bream iridovirus (RSIV) belonging to genus Megalocytivirus is responsible for red sea bream iridoviral disease (RSIVD) in marine and freshwater fishes. Although several diagnostic assays for RSIV have been developed, diagnostic sensitivity (DSe) and specificity (DSp) of real-time polymerase chain reaction (PCR) assays are not yet evaluated. In this study, we developed a TaqMan probe-based real-time PCR method and evaluated its DSe and DSp. To detect RSIV, the probe and primers were designed based on consensus sequences of the major capsid protein (MCP) genes from megalocytiviruses including RSIV, infectious spleen and kidney necrosis virus (ISKNV), and turbot reddish body iridovirus (TRBIV). The probe and primers were shown to be specific for RSIV, ISKNV, and TRBIV-types megalocytiviruses. A 95% limit of detection (LOD95%) was determined to be 5.3 viral genome copies/µL of plasmid DNA containing the MCP gene from RSIV. The DSe and DSp of the developed real-time PCR assay for field samples (n = 112) were compared with those of conventional PCR assays and found to be 100% and 95.2%, respectively. The quantitative results for SYBR Green and TaqMan probe-based real-time PCR were not significantly different. The TaqMan probe-based real-time PCR assay for RSIV may be used as an appropriate diagnostic tool for qualitative and quantitative analysis.
Seung-Hwan Hong;Kun-Ho Seo;Sung Ho Yoon;Soo-Ki Kim;Jungwhan Chon
Food Science of Animal Resources
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v.43
no.1
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pp.73-84
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2023
Campylobacteriosis is a common cause of gastrointestinal disease. In this study, we suggest a general strategy of applying gold nanoparticles (AuNPs) in colorimetric biosensors to detect Campylobacter in chicken carcass. Polymerase chain reaction (PCR) was utilized for the amplification of the target genes, and the thiolated PCR products were collected. Following the blending of colloid AuNPs with PCR products, the thiol bound to the surface of AuNPs, forming AuNP-PCR products. The PCR products had a sufficient negative charge, which enabled AuNPs to maintain a dispersed formation under electrostatic repulsion. This platform presented a color change as AuNPs aggregate. It did not need additional time and optimization of pH for PCR amplicons to adhere to the AuNPs. The specificity of AuNPs of modified primer pairs for mapA from Campylobacter jejuni and ceuE from Campylobacter coli was activated perfectly (C. jejuni, p-value: 0.0085; C. coli, p-value: 0.0239) when compared to Salmonella Enteritidis and Escherichia coli as non-Campylobacter species. Likewise, C. jejuni was successfully detected from artificially contaminated chicken carcass samples. According to the sensitivity test, at least 15 ng/μL of Campylobacter PCR products or 1×103 CFU/mL of cells in the broth was needed for the detection using the optical method.
Purpose:The aim of this study was to determine the prevalence of asymptomatic nasopharyngeal carriages in children using a multiplex reverse transcriptase-polymerase chain reaction (mRT-PCR) assay kit. Methods:We obtained nasopharyngeal swabs from 33 children without any underlying disease from July 25 to July 28, 2008. The children were free from the signs of respiratory tract infections at the time of sampling. DNA was extracted from the swabs and subjected to multiplex RT-PCR using a primer set for the detection of pneumococci ($Seeplex^{(R)}$ PneumoBacter ACE Detection Seegene, Seoul, Korea). The amplified PCR products were separated on 2% agarose gels and stained with either ethidium bromide or screen tape system (Lab901 Scotland, UK). Results:A total of 33 children (male, 15 female, 18) aged between 3.2 and 16.3 (median, 8.2) years were included in this study. The mRT-PCR detected colonized bacteria (Streptococcus pneumoniae, Hemophilus influenzae, Chlamydia pneumoniae, and Bordetella pertussis) in 30 children (90.9%). Of these, 13 children (39.4%) showed more than 2 bacteria: 12 children were positive for 2 bacteria (S. pneumoniae and H. influenzae) and 1 child was positive for 3 bacteria (S. pneumoniae, H. influenzae, and C. pneumoniae). Conclusion:mRT-PCR was found to be a sensitive tool for the detection of asymptomatic nasopharyngeal carriages. Clinical significances of the bacteria detected by mRT-PCR will have to be evaluated in the future.
Kim, Ho-Joong;Hyun, In-Kyu;Lee, Myoung-Koo;Jung, Ki-Suck;Ahn, Hye-Kyung
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.42
no.1
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pp.35-41
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1995
Background: Tuberculous cervical lymphadenitis can be diagnosed by clinical findings, chest X-ray, Mantoux test, but confirmed only by excisional biopsy. The polymerase chain reaction(PCR) is now widely applied to test very small amount of pathogen and would be used to detect Mycobacterium tuberculosis in biopsied tissues and fine needle aspirates. Method: We carried out the PCR using IS-1 and IS-2 primers in 16 samples from tuberculous cervical lymphadenitis patients, and 13 samples from non-tuberculous cervical lymphadenopathy patients. Acid fast staining and culture for Mycobacterium were all negative. Results: All of 8 pathologically confirmed tuberculous cervical lymphadenitis samples showed positive PCR results, and of 5/8 clinically diagnosed samples were positive. None of 6 pathologically excluded samples were positive, and among 7 clinically undiagnosed samples 2 showed positive PCR results. Conclusion: In patients with suspected tuberculous cervical lymphadenitis, PCR could be used to detect Mycobacterium tuberculosis using biopsied tissues and even fine needle aspirates with good sensitivity and specificity.
A number of epidemiological studies have identified human papillomavirus (HPV) types 1, 2, 3, 4, 7, 10, 27, 57, and 65 in cutaneous common warts. However, identification of the HPV subtype by conventional polymerase chain reaction (PCR) is time consuming with its multi-step laboratory process. In this study, we aim to develop a specific one-step multiplex polymerase chain reaction method which capably identifies six different HPV genotypes related to common warts. By HPV DNA sequence analysis, 6 pairs of specific primers were designed from the intergenic regions of genes L1 to E6, and from genes E2 to L2. DNA sequence analysis with the L1 gene sequence of the sample was performed to measure the specificity of multiplex PCR. HPV-1, -2, -3, -4, -27, and -57 were identified without cross amplification in 109 out of 129 samples. The sensitivity and specificity of our set of primers in detecting HPV were 85% and 99.5%, respectively. For the 20 samples where HPV type was not identifiable by our batch of primer sets, multiplex PCR with an additional set of HPV primers was done, where 7 were found positive for HPV-7 or -65. Our results demonstrate that the newly designed multiplex PCR can rapidly detect the specific HPV subtype involved in common warts with high accuracy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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