This study was conducted to detect the toxoplasma specific-DNA in circulating blood and organs collected from slaughtered pigs at slaughtering house and experimentally infected pigs with Toxoplasma gondii tachyzoites by polymerase chain reaction(PCR), and also PCR was applied to diagnose for acute phase of swine toxoplasmosis as a newly developed diagnostic test. The sensitivity of oligonucleotide primer, T-1 & T-2, designed from toxoplasma B1 gene amplification method was compared with Tp parasite detection by mouse inoculation(MI). On the other hand, latex agglutination test(LAT) was conducted to detect the serum antibodies comparing with the detection of toxoplasma by PCR and MI. The results obtained were summarized as follows. PCR was able to determine at the lowest level of $10^0/ml$ T. gondii in blood samples which were blended with a serial diluted T gondii in vitro. On the other hand, $10^2/5g$ of T gondii could detect from a variety of tissues including lung, diaphragm, liver, heart, spleen and brain in vitro. The primer was proved to specifically determine T gondii in blood and tissues in vitro but it did not detect Neospora caninum used as a negative control. DNA of T. gondii was effectively extracted by freezing, thawing and grinding twice both tissues mixed with T gondii in vitro and in experimentally infected pig's tissues. PCR detected specific DNA in the blood of experimentally infected pigs at 108 hrs and 120 hrs post-infection, it was the same time that the pigs showed fever and parasitaemia. In case of tissue, specific DNA was, however, detected only lung from experimentally infected pigs. Even though the duration of acute phase was from 3 to 7 days post-infection, but the latex agglutination test (LAT) results appeared from 8 days post-infection. A comparison of sensitivity in determining T gondii in blood samples between PCR and MI, PCR positive rate ranged from 25 to 33.3%, but that of MI covered from 75 to 100%.
The present investigation aims at inquiring into a possible target for the heat inactivation of SCK tumor cells by comparing the kinetics of cell survival, rate of protein synthesis, and DNA polymerase activity in the presence of heat protector or heat sensitirer. A possible conclusion to be drawn from the present experiment is that there is no direct correlation between cell death and decrease in the rate of protein synthesis, but that the loss of DNA polvmerase $\beta$ activity correlates quite well with cell inactivation. Thus, protein degrada-tion and/or abnormal protein synthesis causes cell inactivation innireuv, possibly by altering the cellular environment which in turn affects the DNA polymerase $\beta$ activity. Accordingly, further studies, dealing with the correlation between changes in the cellular environment and DNA polymerase $\beta$ activity, are needed to set insight into a possible target for the heat inactivation of cells. 본 연구는 열보호제 또는 열증감제의 존재하에서 세포 생존곡선, 단백질 합성률, DNA 중합효소 $\beta$의 활성변화를 비교 검토함으로써 SCK 종양세포가 열에 의해서 불활성화될 때의 표적이 무엇인지를 밝혀보기 위해서 수행되었다. 본 실험의 결과로 추정하건대 열에 의한 세포치사는 단백질 합성률의 변화와는 직접적인 연관성이 없으나, DNA 중합효소 $\beta$의 활성도와는 밀접한 연관성이 있음을 알 수 있다. 즉, 단백질의 분해 또는 비정상적인 단백질의 합성이 세포의 환경을 변화시키고 이것이 DNA 중합효소 $\beta$의 활성에 영향을 미침으로써 간접적으로 세포의 치사를 초래할 것으로 짐작할 수 있다. 따라서, 세포의 열불화성화의 표적을 좀더 분명히 밝히기 위해서는 세포의 환경변화와 DNA 중합효소 $\beta$의 활성과의 관계를 추구하는 연구가 수행되어야 할 것으로 사료된다.
Canine parvovirus(CPV) is a very highly contagious virus causing hemorrhagic enteritis and myocarditis mainly in young dogs. The diseases were first recognized in 1978, and then spread throughout the world by 1980. The main source of the infection seems to be the feces of infected dogs, at the same time feces are suitable materials for detection of virus in the enteric form exactly for the same reasons. Recently, a new technique of in vitro DNA amplification, Known as the polymerase chain reaction (PCR), has been widely applied to clinical viral diagnosis because of its sensitivity, specificity and rapidity. In this research, we attemped to set up the PCR for the detection of CPV in fecal samples and conformed the canine parvpviral enteritis by PCR. To increase the sensitivity and specificity of a PCR, the nested PCR (two-step PCR) was performed. We also surveyed the contamination status of CPV in the research using fecal specimen was highly sensitive and specific. Of the 100 fecal specimens suspected canine parvoviral enteritis, 45 fecal specimens were positive in HA test, 64 fecal specimens were positive in the first PCR, and 87 fecal specimens were positive in the second PCR. CPV contamination status of animal clinics and breeding centers was serious, wo hygienic management of environment in which dogs are reared is required. The nested PCR described here seems to be a rapid, sensitive and specific for the detection of canine parvovirus.
Kim, Oh Cheol;Kim, Sang-Yoon;Hwang, Dong Hyeon;Oh, Doo-Byoung;Kang, Hyun Ah;Kwon, Ohsuk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제23권3호
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pp.304-312
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2013
The thermotolerant methylotrophic yeast Hansenula polymorpha is attracting interest as a potential strain for the production of recombinant proteins and biofuels. However, only limited numbers of genome engineering tools are currently available for H. polymorpha. In the present study, we identified the HpPOL3 gene encoding the catalytic subunit of DNA polymerase ${\delta}$ of H. polymorpha and mutated the sequence encoding conserved amino acid residues that are important for its proofreading 3'${\rightarrow}$5' exonuclease activity. The resulting $HpPOL3^*$ gene encoding the error-prone proofreading-deficient DNA polymerase ${\delta}$ was cloned under a methanol oxidase promoter to construct the mutator plasmid pHIF8, which also contains additional elements for site-specific chromosomal integration, selection, and excision. In a H. polymorpha mutator strain chromosomally integrated with pHIF8, a $URA3^-$ mutant resistant to 5-fluoroorotic acid was generated at a 50-fold higher frequency than in the wild-type strain, due to the dominant negative expression of $HpPOL3^*$. Moreover, after obtaining the desired mutant, the mutator allele was readily removed from the chromosome by homologous recombination to avoid the uncontrolled accumulation of additional mutations. Our mutator system, which depends on the accumulation of random mutations that are incorporated during DNA replication, will be useful to generate strains with mutant phenotypes, especially those related to unknown or multiple genes on the chromosome.
Kim, Eun-Young;Shin, Min-Sang;Rhee, Joon-Haeng;Hyon E. Choy
Journal of Microbiology
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제42권2호
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pp.103-110
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2004
In order to understand the molecular basis of selective expression of stationary-phase genes by RNA polymerase containing$\sigma$$\^$38/ (E$\sigma$$\^$38/) in Escherichia coli, we examined transcription from the stationary-phase promoters, katEP, bo1AP, hdeABP, csgBAP, and mcbP, in vivo and in vitro. Although these pro-moters are preferentially recognized in vivo by E$\sigma$$\^$38/, they are transcribed in vitro by both E$\sigma$$\^$38/ and E$\sigma$$\^$70/ containing the major exponential $\sigma$, $\sigma$$\^$70/. In the presence of high concentrations of glutamate salts, how-ever, oldy E$\sigma$$\^$38/ was able to efficiently transcribe from these promoters, which supports the concept that the promoter selectivity of $\sigma$$\^$38/-containing RNA polymerase is observed only under specific reaction con-ditions. The examination of 6S RNA, which is encoded by the ssr1 gene in vivo, showed that it reduced E$\sigma$$\^$70/ activity during the stationary phase, but this reduction of activity did not result in the elevation of E$\sigma$$\^$38/ activity. Thus, the preferential expression of stationary-phase genes by E$\sigma$$\^$38/ is unlikely the con-sequence of selective inhibition of E$\sigma$$\^$70/ by 6S RNA.
Recently, the importance of on-site detection of pathogens has drawn attention in the field of molecular diagnostics. Unlike in a laboratory environment, on-site detection of pathogens is performed under limited resources. In this study, we tried to optimize the experimental conditions for on-site detection of pathogens using a combination of ultra-fast convection polymerase chain reaction (cPCR), which does not require regular electricity, and nucleic acid lateral flow (NALF) immunoassay. Salmonella species was used as the model pathogen. DNA was amplified within 21 minutes (equivalent to 30 cycles of polymerase chain reaction) using ultra-fast cPCR, and the amplified DNA was detected within approximately 5 minutes using NALF immunoassay with nucleic acid detection (NAD) cassettes. In order to avoid false-positive results with NAD cassettes, we reduced the primer concentration or ultra-fast cPCR run time. For singleplex ultra-fast cPCR, the primer concentration needed to be lowered to $3{\mu}M$ or the run time needed to be reduced to 14 minutes. For duplex ultra-fast cPCR, $2{\mu}M$ of each primer set needed to be used or the run time needed to be reduced to 14 minutes. Under the conditions optimized in this study, the combination of ultra-fast cPCR and NALF immunoassay can be applied to on-site detection of pathogens. The combination can be easily applied to the detection of oral pathogens.
Cymbidium mosaic virus (CymMV) is one of economically important viruses that cause significant losses of orchids in the world. In the present study, a reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) assay combined with a lateral flow immunostrip (LFI) assay was developed for the detection of CymMV in orchid plants. A pair of primers containing fluorescent probes at each terminus that amplifies highly specifically a part of the coat protein gene of CymMV was determined for RT-RPA assay. The RT-RPA assay involved incubation at an isothermal temperature (39℃) and could be performed rapidly within 30 min. In addition, no cross-reactivity was observed to occur with odontoglossum ringspot virus and cymbidium chlorotic mosaic virus. The RT-RPA with LFI assay (RT-RPA-LFI) for CymMV showed 100 times more sensitivity than conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). Furthermore, the RT-PCR-LFI assay demonstrated the simplicity and the rapidity of CymMV detection since the assay did not require any equipment, by comparing results with those of conventional RT-PCR. On-site application of the RT-RPA-LFI assay was validated for the detection of CymMV in field-collected orchids, indicating a simple, rapid, sensitive, and reliable method for detecting CymMV in orchids.
Polymerase chain reaction (PCR) has revolutionized genetics and become one of the most popular techniques in modern biological and medical sciences. It can be used not only as an in vitro DNA amplification method but also used in many bioassay applications. The PCR can be used to exponentially produce a large number of DNA copies from a small quantity of DNA molecules in a few hours. However, as unwanted DNA fragments are also often manufactured, the amplification efficiency of PCR is decreased. To overcome this limitation, several nanomaterials have been employed to increase the specificity of the PCR reaction. Recently, graphene has attracted a great interest for its excellent electron transfer, thermal and biocompatibility. Especially, gold nanoparticle-coated graphene oxide (GO/AuNPs) led to enhance electron and thermal transfer rate and low-charge transfer resistance. Therefore, we report the development of a demonstration for the PCR efficiency using a large-scale production of the GO and combination of gold nanoparticles. Because a thermal conductivity is an important factor for improving the PCR efficiency in different DNA polymerases and different size samples. When PCR use GO/AuNPs, the result of transmission electron microscopy and real-time quantitative PCR (qPCR) showed an enhanced PCR efficiency. We have demonstrated that GO/AuNPs would be simply outperformed for enhancing the specificity and efficiency of DNA amplification procedure.
This study established a new polymerase spiral reaction (PSR) that combines with reverse transcription reactions for HCV detection targeting 5'UTR gene. To avoid cross-contamination of aerosols, an isothermal amplification tube (IAT), as a separate containment control, was used to judge the result. After optimizing the RT-PSR reaction system, its effectiveness and specificity were tested against 15 different virus strains which included 8 that were HCV positive and 7 as non-HCV controls. The results showed that the RT-PSR assay effectively detected all 8 HCV strains, and no false positives were found among the 7 non-HCV strains. The detection limit of our RT-PSR assay is comparable to the real-time RT-PCR, but is more sensitive than the RT-LAMP. The established RT-PSR assay was further evaluated for detection of HCV in clinical blood samples, and the resulting 80.25% detection rate demonstrated better or similar effectiveness compared to the RT-LAMP (79.63%) and real-time RT-PCR (80.25%). Overall, the results showed that the RT-PSR assay offers high specificity and sensitivity for HCV detection with great potential for screening HCV in clinical blood samples.
Aging causes thymus involution, and genes in thymus play an important role in the development of the immune system. In this study, we compared genes expressed in thymus of neonatal and peripubertal rats using annealing control primers (ACPs)-based GeneFishing polymerase chain reaction (PCR) and semiquantitative reverse transcription (RT)-PCR. We identified 10 differentially expressed genes (DEGs) with 20 ACPs. Of 10 DEGs, bystin-like, collagen type V alpha 1 (COL5A1), and T-cell receptor beta-chain segment 2 (TCRB2) that are related to immune-function were detected in rat thymus. Bystin-like and TCRB2 were up-regulated, while COL5A1 was down-regulated in peripubertal thymus. Semiquantitative RT-PCR confirmed postnatal changes in expression of bystin-like, COL5A1, and TCRB2. These results suggest that bystin-like, COL5A1, and TCRB2 could regulate immune function controlled in thymus as age increases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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