We studied the modulation of pacemaker activities by Samchulkunbi-tang (SCKB) in cultured interstitial cells of Cajal (ICC) from murine small intestine with the whole-cell patch-clamp technique. Externally applied SCKB produced membrane depolarization in the current-clamp mode. The pretreatment with $Ca^{2+}$-free solution and thapsigargin, a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor in endoplasmic reticulum, abolished the generation of pacemaker potentials and suppressed the SCKB-induced action. The application of flufenamic acid (a nonselective cation channel blocker) abolished the generation of pacemaker potentials by SCKB. However, the application of niflumic acid (a chloride channel blocker) did not inhibit the generation of pacemaker potentials by SCKB. In addition, the membrane depolarizations were inhibited by not only GDP-${\beta}$-S, which permanently binds G-binding proteins, but also U-73122, an active phospholipase C inhibitor. These results suggest that SCKB modulates the pacemaker activities by nonselective cation channels and external $Ca^{2+}$ influx and internal $Ca^{2+}$ release via G-protein and phospholipase C-dependent mechanism. Therefore, the ICC are targets for SCKB and their interaction can affect intestinal motility.
Eosinophil is an improtant leukocyte in the development of various inflammatory diseases. Monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1) acts as a key regulator on monocyte movement, and activation of T cells and NK cells. However, the role of MCP-1 in eosinophils remains to be solved. In the present study, we examined the effect of MCP-1 on eosinophil migration, using human eosinophilic EoL-1 cells as an in vitro model of eosinophils. The surface expression of CCR2 in EoL-1 cells was little detected but MCP-1 strongly induced EoL-1 cell migration in a dose-dependent manner. Increased chemotactic activity due to MCP-1 was blocked by pertussis toxin, a $G_i/G_o$ protein inhibitor and U73122, a phospholipase C (PLC) inhibitor. These results suggest that MCP-1 activates $G_i/G_o$ protein and PLC and this signal pathway is involved in eosinphil movement. This finding supports the elucidation of pathogenic mechanism of eosinophilic inflammation such as asthma and atopic dermatitis.
Han, Jong Soo;Min, Young Sil;Kim, Gil Hyung;Chae, Sang-hyun;Nam, Yoonjin;Lee, Jaehwi;Lee, Seok-Yong;Sohn, Uy Dong
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제22권5호
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pp.577-584
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2018
Bladder dysfunction is a common complication of diabetes mellitus (DM). However, there have been a few studies evaluating bladder smooth muscle contraction in DM in the presence of pharmacological inhibitors. In the present study, we compared the contractility of bladder smooth muscle from normal rats and DM rats. Furthermore, we utilized pharmacological inhibitors to delineate the mechanisms underlying bladder muscle differences between normal and DM rats. DM was established in 14 days after using a single injection of streptozotocin (65 mg/kg, intraperitoneal) in Sprague-Dawley rats. Bladder smooth muscle contraction was induced electrically using electrical field stimulation consisting of pulse trains at an amplitude of 40 V and pulse duration of 1 ms at frequencies of 2-10 Hz. In this study, the pharmacological inhibitors atropine (muscarinic receptor antagonist), U73122 (phospholipase C inhibitor), DPCPX (adenosine $A_1$ receptor antagonist), udenafil (PDE5 inhibitor), prazosin (${\alpha}_1$-receptor antagonist), verapamil (calcium channel blocker), and chelerythrine (protein kinase C inhibitor) were used to pretreat bladder smooth muscles. It was found that the contractility of bladder smooth muscles from DM rats was lower than that of normal rats. In addition, there were significant differences in percent change of contractility between normal and DM rats following pretreatment with prazosin, udenafil, verapamil, and U73122. In conclusion, we suggest that the decreased bladder muscle contractility in DM rats was a result of perturbations in $PLC/IP_3$-mediated intracellular $Ca^{2+}$ release and PDE5 activity.
Cardiac myocytes are subjected to fluid shear stress during each contraction and relaxation. Under pathological conditions, such as valve disease, heart failure or hypertension, shear stress in cardiac chamber increases due to high blood volume and pressure. The shear stress induces proarrhythmic longitudinal global $Ca^{2+}$ waves in atrial myocytes. In the present study, we further explored underlying cellular mechanism for the shear stress-induced longitudinal global $Ca^{2+}$ wave in isolated rat atrial myocytes. A shear stress of ${\sim}16dyn/cm^2$ was applied onto entire single myocyte using pressurized fluid puffing. Confocal $Ca^{2+}$ imaging was performed to measure local and global $Ca^{2+}$ signals. Shear stress elicited longitudinally propagating global $Ca^{2+}$ wave (${\sim}80{\mu}m/s$). The occurrence of shear stress-induced atrial $Ca^{2+}$ wave was eliminated by the inhibition of ryanodine receptors (RyRs) or inositol 1,4,5-trisphosphate receptors ($IP_3Rs$). In addition, pretreatment of phospholipase C (PLC) inhibitor U73122, but not its inactive analogue U73343, abolished the generation of longitudinal $Ca^{2+}$ wave under shear stress. Our data suggest that shear-induced longitudinal $Ca^{2+}$ wave may be induced by $Ca^{2+}$-induced $Ca^{2+}$ release through the RyRs which is triggered by $PLC-IP_3R$ signaling in atrial myocytes.
Kim, Seungwoo;Shin, Youngmi;Shin, Youngju;Park, Yang-Seo;Cho, Nam Jeong
Molecules and Cells
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제25권4호
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pp.504-509
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2008
Three G-protein-linked acetylcholine receptors (GARs) exist in the nematode C. elegans. GAR-3 is pharmacologically most similar to mammalian muscarinic acetylcholine receptors (mAChRs). We observed that carbachol stimulated ERK1/2 activation in Chinese hamster ovary (CHO) cells stably expressing GAR-3b, the predominant alternatively spliced isoform of GAR-3. This effect was substantially reduced by the phospholipase C (PLC) inhibitor U73122 and the protein kinase C (PKC) inhibitor GF109203X, implying that PLC and PKC are involved in this process. On the other hand, GAR-3b-mediated ERK1/2 activation was inhibited by treatment with forskolin, an adenylate cyclase (AC) activator. This inhibitory effect was blocked by H89, an inhibitor of cAMP-dependent protein kinase A (PKA). These results suggest that GAR-3b-mediated ERK1/2 activation is negatively regulated by cAMP through PKA. Together our data show that GAR-3b mediates ERK1/2 activation in CHO cells and that GAR-3b can couple to both stimulatory and inhibitory pathways to modulate ERK1/2.
Tumor necrosis factor alpha (TNF-α) is a principal regulator of inflammation and immunity. The proinflammatory properties of TNF-α can be attributed to its ability to activate the enzyme cytosolic phospholipase A2 (cPLA2), which generates potent inflammatory lipid mediators, eicosanoids. L-glutamine (Gln) plays physiologically important roles in various metabolic processes. We have reported that Gln has a potent anti-inflammatory activity via rapid upregulation of mitogen-activated protein kinases (MAPKs) phosphatase (MKP)-1, which preferentially dephosphorylates the key proinflammatory enzymes, p38 MAPK and cytosolic phospholipase A2 (cPLA2). In this study, we have investigated whether Gln could inhibit TNF-α-induced cPLA2 activation. Gln inhibited TNF-α-induced increases in cPLA2 phosphorylation in the lungs and blood levels of the cPLA2 metabolites, leukotrine B4 (LTB4) (lipoxygenase metabolite) and prostaglandin E2 (PGE2) (cyclooxygenase metabolite). TNF-α increased p38 and cPLA2 phosphorylation and blood levels of LTB4 and PGE2, which were blocked by the p38 inhibitor SB202190. Gln inhibited TNF-α-induced p38 and cPLA2 phosphorylation and production of the cPLA2 metabolites. Such inhibitory activity of Gln was no longer observed in MKP-1 small interfering RNA-pretreated animals. Our data indicate that Gln inhibited TNF-α-induced cPLA2 phosphorylation through MKP-1 induction/p38 inhibition, and suggest that the utility of Gln in inflammatory diseases in which TNF-α plays a major role in their pathogenesis.
Background: Little information is available on the identification and characterization of the upstream regulators of the signal transduction cascades for Mycobacterium tuberculosis (M. tbc)-induced ERK 1/2 activation and chemokine expression. We investigated the signaling mechanisms involved in expression of CCL3 /MIP-1 and CCL4/MIP-1 in human primary monocytes infected with M. tbc. Methods: MAP kinase phosphorylation was determined using western blot analysis with specific primary antibodies (ERK 1/2, and phospho-ERK1/2), and the upstream signaling pathways were further investigated using specific inhibitors. Results: An avirulent strain, M. tbc H37Ra, induced greater and more sustained ERK 1/2 phosphorylation, and higher CCL3 and CCL4 production, than did M. tbc H37Rv. Specific inhibitors for mitogen-activated protein kinase (MAPK) kinase (MEK; U0126 and PD98059) significantly inhibited the expression of CCL3 and CCL4 in human monocytes. Mycobactetia-mediated expression of CCL3 and CCL4 was not inhibited by the Ras inhibitor manumycin A or the Raf-1 inhibitor GW 5074. On the other hand, phospholipase C (PLC) inhibitor (U73122) and protein kinase C (PKC)specific inhibitors ($G\ddot{o}6976$ and Ro31-8220) significantly reduced M. tbc-induced activation of ERK 1/2 and chemokine synthesis. Conclusion: These results are the first to demonstrate that the PLC-PKC-MEK-ERK, not the Ras-Raf-MEK-ERK, pathway is the major signaling pathway inducing M. tbc-mediated CCL3 and CCL4 expression in human primary monocytes.
Kim, Byung Joo;Kwon, Young Kyu;Kim, Euiyong;So, Insuk
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제17권2호
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pp.149-156
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2013
Interstitial cells of Cajal (ICCs) are the pacemaker cells in the gastrointestinal tract, and histamine is known to regulate neuronal activity, control vascular tone, alter endothelial permeability, and modulate gastric acid secretion. However, the action mechanisms of histamine in mouse small intestinal ICCs have not been previously investigated, and thus, in the present study, we investigated the effects of histamine on mouse small intestinal ICCs, and sought to identify the receptors involved. Enzymatic digestions were used to dissociate ICCs from small intestines, and the whole-cell patch-clamp configuration was used to record potentials (in current clamp mode) from cultured ICCs. Histamine was found to depolarize resting membrane potentials concentration dependently, and whereas 2-PEA (a selective H1 receptor agonist) induced membrane depolarizations, Dimaprit (a selective H2-agonist), R-alpha-methylhistamine (R-alpha-MeHa; a selective H3-agonist), and 4-methylhistamine (4-MH; a selective H4-agonist) did not. Pretreatment with $Ca^{2+}$-free solution or thapsigargin (a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor in endoplasmic reticulum) abolished the generation of pacemaker potentials and suppressed histamine-induced membrane depolarization. Furthermore, treatments with U-73122 (a phospholipase C inhibitor) or 5-fluoro-2-indolyl des-chlorohalopemide (FIPI; a phospholipase D inhibitor) blocked histamine-induced membrane depolarizations in ICCs. On the other hand, KT5720 (a protein kinase A inhibitor) did not block histamine-induced membrane depolarization. These results suggest that histamine modulates pacemaker potentials through H1 receptor-mediated pathways via external $Ca^{2+}$ influx and $Ca^{2+}$ release from internal stores in a PLC and PLD dependent manner.
Choi, Seok;Choi, Jeong June;Jun, Jae Yeoul;Koh, Jae Woong;Kim, Sang Hun;Kim, Dong Hee;Pyo, Myoung-Yun;Choi, Sangzin;Son, Jin Pub;Lee, Inki;Son, Miwon;Jin, Mirim
Molecules and Cells
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제27권3호
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pp.307-312
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2009
The interstitial cells of Cajal (ICC) are pacemaking cells required for gastrointestinal motility. The possibility of whether DA-9701, a novel prokinetic agent formulated with Pharbitis Semen and Corydalis Tuber, modulates pacemaker activities in the ICC was tested using the whole cell patch clamp technique. DA-9701 produced membrane depolarization and increased tonic inward pacemaker currents in the voltage-clamp mode. The application of flufenamic acid, a non-selective cation channel blocker, but not niflumic acid, abolished the generation of pacemaker currents induced by DA-9701. Pretreatment with a $Ca^{2+}$-free solution and thapsigargin, a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor in the endoplasmic reticulum, abolished the generation of pacemaker currents. In addition, the tonic inward currents were inhibited by U-73122, an active phospholipase C inhibitor, but not by $GDP-{\beta}-S$, which permanently binds G-binding proteins. Furthermore, the protein kinase C inhibitors, chelerythrine and calphostin C, did not block the DA-9701-induced pacemaker currents. These results suggest that DA-9701 might affect gastrointestinal motility by the modulation of pacemaker activity in the ICC, and the activation is associated with the non-selective cationic channels via external $Ca^{2+}$ influx, phospholipase C activation, and $Ca^{2+}$ release from internal storage in a G protein-independent and protein kinase C-independent manner.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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