The aim of this study was to screen for polypeptides binding specifically to LoVo human colorectal cancer cells using a phage-displayed peptide library as a targeting vector for colorectal cancer therapy. Human normal colorectal mucous epithelial cells were applied as absorber cells for subtraction biopanning with a c7c phage display peptide library. Positive phage clones were identified by enzyme-linked immunosorbent assay and immunofluorescence detection; amino acid sequences were deduced by DNA sequencing. After 3 rounds of screening, 5 of 20 phage clones screened positive, showing specific binding to LoVo cells and a conserved RPM motif. Specific peptides against colorectal cancer cells could be obtained from a phage display peptide library and may be used as potential vectors for targeting therapy for colorectal cancer.
Random hexapeptide library on the surface of filamentous bacteriophage was constructed using the SurfZAP vector. The size of the library was approximately 105. The peptide insert was flanked by two cysteines to constrain the peptide structure with a disulfide bond. This library was screened for the topoisomerase II binding peptide. Dramatic enrichment of the fusion phage over the VCS M13 helper phage was demonstrated by bio-panning affinity selection.
Lee, Seung-Joo;Lee, Jeong-Hwan;Kay, Brian K.;Dreyfuss, Gideon;Park, Yong-Keun;Kim, Jeong-Kook
Journal of Microbiology
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v.35
no.4
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pp.347-353
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1997
We have characterized a phage library displaying random 22mer peptides which were produced as N-terminal fusions to the pIII coat protein of M13 filamentous phages. Among the sixty phages randomly picked from the library, 25 phages had the 22mer peptide inserts. The DNA sequence analysis of the 25 inserts showed the following results: first, each nucleotide was represented almost equally at each codon position except that there were some biases toward G bases at the first position of the codons. Secondly, the expected 47 sense codons were represented. The deduced amino acid sequences of the 25 inserts were analyzed to examine its diversity. Glycine and glutamate were the two most overrepresented residues above the expected value, whereas cysteine and threonine residues were underrepresented. The range of dicersity in dipeptide sequences showed that the amino acid residues were randomly distributed along the peptide insert. Acidic, basic, polar, and nonpolar amino acid residues were represented to the extent expected at most positions of the peptide inserts. The predicted isoelectric points and hydropathy indices of the 25 peptides showed that a variety of the peptide were represented in the library. These results indicate that this phage display library could be useful in fiuding ligands for a broad spectrum of receptors by affinity screening.
Choi, Suk-Jung;Sperinde, Jeffrey J.;Szoka, Francis C. Jr.
Molecules and Cells
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v.19
no.1
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pp.54-59
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2005
Deoxyribonuclease I (DNase I) is a divalent cation dependent endonuclease and thought to be a significant barrier to effective gene delivery. The only known DNase I-specific inhibitor is monomeric actin which acts by forming a 1:1 complex with DNase I. Its use, however, is restricted because of tendency to polymerize under certain conditions. We screened two random phage peptide libraries of complexity $10^8$ and $10^9$ for DNase I binders as candidates for DNase I inhibitors. A number of DNase I-binding peptide sequences were identified. When these peptides were expressed as fusion proteins with Escherichia coli maltose binding protein, they inhibited the actin-DNase I interaction ($IC_{50}=0.1-0.7{\mu}M$) and DNA degradation by DNase I ($IC_{50}=0.8-8{\mu}M$). Plasmid protection activity in the presence of DNase I was also observed with the fusion proteins. These peptides have the potential to be a useful adjuvant for gene therapy using naked DNA.
Background: Hepatitis C virus(HCV), a family of Flaviviridae, has a host cell-derived envelope containing a positive-stranded RNA genome, and has been known as the maj or etiological agent for chronic hepatitis, hepatic cirrhosis, and hepatocellular carcinoma. There remains a need to dissect a molecular mechanism of pathogenesis for the development of therapeutic and effective preventive measure for HCV. Identification of cellular receptor is of central importance not only to understand the viral pathogenesis, but also to exploit strategies for prevention of HCV. This study was aimed at identifying peptide mimotopes inhibiting the binding of E2 protein of HCV to MOLT-4 cell. Methods: In this study, phage peptide library displaying a random peptides consisting of 7 or 12 random peptides was employed in order to pan against E2 protein. Free HCV particles were separated from the immune complex forms by immunoprecipitation using anti-human IgG antibody, and used for HCV-capture ELISA. To identify the peptides inhibiting E2-binding to MOLT-4 cells, E2 protein was subj ect to bind to MOLT-4 cells under the competition with phage peptides. Results: Several phage peptides were selected for their specific binding to E2 protein, which showed the conserved sequence of SHFWRAP from 3 different peptide sequences. They were also able to recognize the HCV particles in the sera of HCV patients captured by monoclonal antibody against E2 protein. Two of them, showing peptide sequence of HLGPWMSHWFQR and WAPPLERSSLFY respectively, were revealed to inhibit the binding of E2 protein to MOLT-4 cell efficiently in dose dependent mode. However, few membrane-associated receptor candidates were seen using Fasta3 programe for homology search with these peptides. Conclusion: Phage peptides containing HLGPWMSHWFQR and WAPPLERSSLFY respectively, showed the inhibition of E2-binding to MOLT-4 cells. However, they did not reveal any homologues to cellular receptors from GenBank database. In further study, cellular receptor could be identified through the screening of cDNA library from MOLT-4 or hepatocytes using antibodies against these peptide mimotopes.
For the selection of peptide specifically binding to $Pb^{2+}$, the biopanning with the commercially available Ph.D.-7 phage displayed heptapeptide library was carried out against $Pb^{2+}$ immobilized on a metal-chelating IDA (iminodiacetic acid) resin. After four rounds of screening against $Pb^{2+}$-IDA including negative selections against charged bead with metal ions other than $Pb^{2+}$ and uncharged bead, several candidate lead-binding phage peptides were initially determined based on the order of frequency from the screened phage clones. Of the selected phage peptide sequences, the peptide of the highest frequency, CysSerIleArgThrLeuHisGlnCys (CSIRTLHQC) also exhibited the strongest affinity for $Pb^{2+}$ in binding assays for individual phage clones. However, there was not a significant difference in $Pb^{2+}$ affinity between selected peptides when using synthetic heptapeptides corresponding to the displayed peptide sequences of phage clones.
E2 glycoprotein of hepatitis C virus (HCV) comprises a surface of viral particle together with E1 glycoprotein, and is thought to be involved in the attachment of HCV viral particle to receptor (s) on the permissible cells including hepatocytes, B cells, T cells, and monocytes. We constructed a phage library expressing cellular proteins of hepatocytes on the phage surface, which turned out to be 8.8${\times}$$10^5$ cfu of diversity and carried inserts in 95% of library. We screened both cDNA phage library and 12-mer peptide library to identify the cellular proteins binding to E2 protein. Some intracellular proteins including tensin and membrane band 4.1 which are involved in signal transduction of survival and cytoskeleton organization, were selected from cDNA phage library through several rounds of panning and screening. On the contrary, membrane proteins such as CCR7, CKR-L2, and insulin-like growth factor-1 receptor were identified through screening of peptide library. Phages expressing peptides corresponding to those membrane proteins were bound to E2 protein specifically as determined by neutralization of binding assay. Since it is well known that HCV can infect T cells as well as hepatocytes, we examined to see if E2 protein can bind to CCR7, a member of C-protein coupled receptor family expressed on T cells, using CCR7 transfected tells. Human CCR7 cDNA was cloned into pcDNA3.1(-) vector and transfected into human embryonic kidney cell, 293T, and expressed on the surface of the cell as shown by flow cytometer. Binding assay of E2 protein using CCR7 transfected cells indicated that E2 protein bound to CCR7 by dose-dependent mode, giving rise to the possibility that CCR7 might be a putative cellular receptor for HCV.
Biomolecules specific to explosives can be exploited as chemical sensors. Peptides specific to immobilized dinitrotoluene (DNT) were identified using a phage display library. A derivative of DNT that contained an extended amine group, 4-(2,4-dinitrophenyl)butan-1-amine, was synthesized and immobilized using a self-assembled monolayer surface on gold. Filamentous M13 phages displaying random sequences of 12-mer peptides specific to the immobilized DNT-derivate were isolated from the M13 phage library by biopanning. A common peptide sequence was identified from the isolated phages and the synthesized peptides showed selective binding to DNT. When the peptide was immobilized on a quartz crystal microbalance (QCM) chip, it showed a binding signal to DNT, while toluene barely showed significant binding to the QCM chip. These results demonstrate that peptides screened by biopanning against immobilized DNT can be useful for quick and accurate detection of DNT.
Nanobodies derived from camelids and sharks offer unique advantages in therapeutic applications due to their ability to bind to epitopes that were previously inaccessible. Traditional methods of nanobody development face challenges such as ethical concerns and antigen toxicity. Our study presents a synthetic, phage-displayed nanobody library using trinucleotide-directed mutagenesis technology, which allows precise amino acid composition in complementarity-determining regions (CDRs), with a focus on CDR3 diversity. This approach avoids common problems such as frameshift mutations and stop codon insertions associated with other synthetic antibody library construction methods. By analyzing FDA-approved nanobodies and Protein Data Bank sequences, we designed sub-libraries with different CDR3 lengths and introduced amino acid substitutions to improve solubility. The validation of our library through the successful isolation of nanobodies against targets such as PD-1, ATXN1 and STAT3 demonstrates a versatile and ethical platform for the development of high specificity and affinity nanobodies and represents a significant advance in biotechnology.
In the previous report (Choi et al., 1997), the angiogenin binding peptides identified from a phage-peptide library were analyzed by using the fusion proteins composed of the Escherichia coli maltose binding protein and its corresponding peptides. However, it was difficult to obtain a sufficient amount of the fusion proteins required for further analysis because of the low expression level. We now report a high level expression of the fusion protein and analysis of its anti-angiogenin activity. The use of strong T7 promoter and removal of signal sequence allowed about a 20-fold increase in the expression efficiency of the fusion protein. We were able to obtain about 10 mg of purified fusion protein from one liter of culture. The purified fusion protein showed angiogenin-specific affinity and inhibited the binding of biotinylated actin to human angiogenin at $IC_{50}$ of 0.6 mM. Its anti-angiogenin activity was also revealed by the chorioallantoic membrane assay.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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