Voltage-gated $Ca^{2+}$ ($Ca_V$) channels are dynamically modulated by Gprotein-coupled receptors (GPCR). The $M_1$ muscarinic receptor stimulation is known to enhance $Ca_V2.3$ channel gating through the activation of protein kinase C (PKC). Here, we found that $M_1$ receptors also inhibit $Ca_V2.3$ currents when the channels are fully activated by PKC. In whole-cell configuration, the application of phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA), a PKC activator, potentiated $Ca_V2.3$ currents by ~two-fold. After the PMA-induced potentiation, stimulation of $M_1$ receptors decreased the $Ca_V2.3$ currents by $52{\pm}8%$. We examined whether the depletion of phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate ($PI(4,5)P_2$) is responsible for the muscarinic suppression of $Ca_V2.3$ currents by using two methods: the Danio rerio voltage-sensing phosphatase (Dr-VSP) system and the rapamycin-induced translocatable pseudojanin (PJ) system. First, dephosphorylation of $PI(4,5)P_2$ to phosphatidylinositol 4-phosphate (PI(4)P) by Dr-VSP significantly suppressed $Ca_V2.3$ currents, by $53{\pm}3%$. Next, dephosphorylation of both PI(4)P and $PI(4,5)P_2$ to PI by PJ translocation further decreased the current by up to $66{\pm}3%$. The results suggest that $Ca_V2.3$ currents are modulated by the $M_1$ receptor in a dual mode-that is, potentiation through the activation of PKC and suppression by the depletion of membrane $PI(4,5)P_2$. Our results also suggest that there is rapid turnover between PI(4)P and $PI(4,5)P_2$ in the plasma membrane.
The effects and interactions of $4{\beta}-phorbol$ 12,13-dibutyrate(PDB) and polymyxin B(PMB) with adenosine on the electrically-evoked norepinephrine (NE) release were studied in the rat hippocampus. Slices from the rat hippocampus were equilibrated with $^3H-noradrenaline$ and the release of the labelled product, $^3H-NE$, which evoked by electrical stimulation$(3\;Hz,\;2\;ms,\;5\;VCm^{-1},\;rectangular\;pulses)$ was measured. PDB$(0.3{\sim}10\;{\mu}M)$, a selective protein kinase C(PKC) activator, increased the evoked NE release in a dose related fashion while increasing the basal rate of release. And the effects of $1\;{\mu}M$ PDB were significantly inhibited by $0.3\;{\mu}M$ tetrodotoxin(TTX) pretreatment or $Ca^{++}-free$ medium. $PMB(0.03{\sim}1\;mg)$, a specific PKC inhibitor, decreased the NE release in a dose dependent manner while increasing the basal rate of release. Adenosine $(1{\sim}10\;{\mu}M)$ decreased the NE release without changing the basal rate of release, and this effect was significantly inhibited by 8-cyclopentyl-1,3-dipropylxanthine$(2\;{\mu}M)$, a selective $A_1-receptor$ antagonist, treatment. Also, adenosine effects were significantly inhibited by PDB-and PMB-pretreatment. These results suggest that the PKC plays a role in the NE release in the rat hippocampus and might be participated in a post-receptor mechanism of the $A_1-adenosine$ receptor.
Lysophosphatidylcholine (LPC), a metabolite of membrane phospholipids by phospholipase $A_2$, has been considered responsible for the development of abnormal vascular reactivity during atherosclerosis. $Ca^{2+}$ influx was shown to be augmented in atherosclerotic artery which might be responsible for abnormal vascular reactivity. However, the mechanism underlying $Ca^{2+}$ influx change in atherosclerotic artery remains undetermined. The purpose of the present study was to examine the effects of LPC on L-type $Ca^{2+}$ current $(I_{Ca(L)})$ activity and to elucidate the mechanism of LPC-induced change of $I_{Ca(L)}$ in rabbit portal vein smooth muscle cells using whole cell patch clamp. Extracellular application of LPC increased $I_{Ca(L)}$ through whole test potentials, and this effect was readily reversed by washout. Steady state voltage dependency of activation or inactivation properties of $I_{Ca(L)}$ was not significantly changed by LPC. Staurosporine (100 nM) or chelerythrine $(3{\mu}M)$, which is a potent inhibitor of PKC, significantly decreased basal $I_{Ca(L)}$, and LPC-induced increase of $I_{Ca(L)}$ was significantly suppressed in the presence of PKC inhibitors. On the other hand, application of PMA, an activator of PKC, increased basal $I_{Ca(L)}$ significantly, and LPC-induced enhancement of $I_{Ca(L)}$ was abolished by pretreatment of the cells with PMA. These findings suggest that LPC increased $I_{Ca(L)}$ in vascular smooth muscle cells by a pathway that involves PKC, and that LPC-induced increase of $I_{Ca(L)}$ might be, at least in part, responsible for increased $Ca^{2+}$ influx in atherosclerotic artery.
It has been wel known that phospholipase C(PLC) plays an important role in the intracellular signaling in a variety of cell types. However, involvement of PLC in mouse oocyte maturation and preimplantation embryo development remains unknown. The present study examined the expression patterns of the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 during oocyte maturatio and preimplantation embryo development study examined the expression patterns of the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 during oocyte maturation and preimplantation embryo development by the competitive reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR method). PLC \gamma 1 mRNA (0.1 fg) was readily detected in germinal vesicle (GV)-stage oocyte and its level was reduced as meiotic resumption proceeded. PLC-\beta 1 mRNA (<0.1 fg) as detected at low level at GV-stage oocytes and scarcely detected at germinal vescle breakdown (GVBD)-stage oocytes. After fertilization, both PLC \beta 1 and \gamma 1 mRNA levels began to increase at morula-stage embryos (0.2 fg) and were more prominent in blastocyst-stage embryos(1 fg). to elucidate the possible involvement of PLC via protein kinase C(PKC) pathway during oocyte maturation and preimplantation embryo development , the effects of sphingosine (PKC inhibitor), sn-$diC_{8}$(PKC activator) anc U73122 (PLC ingibitor) were examined. Treatment of GV-stage oocytes with sphingosine (20 \mu M) facilitated the meiotic resuption by 10-20 over the control within 1 h as judged by GVBD, whereas U73122 failed to show any significant effect. U73122 (10 \mu M) effectively blocked the compaction of morula, while sn-$diC_{8}$(50 \mu M). In summary, the present study shows that the mouse PLC \beta 1 and \gamma 1 are expressed in a developmental stage-specific manner and PLC-PKC pathway may be involved in early preimplantation embryo development.
Background : The signal pathways and their precise roles for acute respiratory distress syndrome caused by endotoxin (ETX) has not been established. Since there has been several in vitro experiments suggesting that activation of protein kinase C (PKC) pathway may be responsible for endotoxin-induced inflammatory reaction, we performed in vivo experiments in the rats with the hypothesis that PKC-inhibition can effectively prevent endotoxin-induced acute lung injury. Methods : We studied the role of PKC in ETX-induced ALI using PKC inhibitor (staurosporine, STP) in the rat Specific pathogen free male Sprague-Dawley weighted from 165 to 270g were used for the study. Animals were divided into the normal control (NC)-, vehicle control (VC)-, ETX-, PMA (phorbolmyristateacetate)-, STP+PMA-, and STP+ETX-group. PMA (50mg/kg) or ETX (7mg/kg) was instilled through polyethylen catheter after aseptic tracheostomy with and without STP (0.2mg/kg)-pretreatment STP was injected via tail vein 30min before intratracheal injection (IT) of PMA or ETX. Bronchoalveolar lavage (BAL) was done 3-or 6-hrs after IT of PMA or ETX respectively, to measure protein concentration, total and differential cell counts. Results : The results were as follows. The protein concentrations in BALF in the PMA- and ETX-group were very higher than that of VC-group (p<0.001). When animals were pretreated with STP, the %reduction of the protein concentration in BALF was $64.8{\pm}8.5$ and $30.4{\pm}2.5%$ in the STP+PMA- and STP+ETX-group, respectively (p = 0.028). There was no difference in the total cell counts between the PMA-and VC-group (p = 0.26). However the ETX-group showed markedly increased total cell counts as compared to the VC- (p = 0.003) and PMA-group (p = 0.0027), respectively. The total cell counts in BALF were not changed after pretreatment with STP compared to the PMA- (p = 0.22) and ETX-group (p = 0.46). The percentage of PMN, but not alveolar macrophage, was significantly elevated in the PMA-, and ETX-group. Especially in the ETX-group, the percentage of PMN was 17 times higher than that of PMA (p < 0.001). The differential cell counts was not different between the PMA and STP+PMA On the contrary the STP+ETX-group showed decreased percentage of PMN (p = 0.016). There was no significant relationship between the protein concentration and the total or differential cell counts in each group. Conclusion : Pretreatment with PKC-inhibitor (staurosporine) partially but significantly inhibited ETX-induced ALI.
심방근 세포는 심방이뇨호르몬을 합성, 저장 그리고 분비하며, 세포내외 이온의 농도, 수분균형 및 혈압 등을 조절하는 것으로 알려져 있다. 또한 심방근의 인장자극에는 Atrial Natriuretic Peptide(ANP)를 2단계(분비, 유리)의 과정으로 이루어져 있으며, 이에 따른 심방이뇨호르몬의 분비 조절기전에 대하여서는 명확히 알려져 있지 않다. 따라서 본 연구는 백서의 심방근 적출관류 모델을 이용하여 protein kinase C와 ANP 조절의 상관관계를 밝히고 분비와 유리의 과정중 어떠한 과정을 이용하여 분비자극에 영향을 주는지를 관찰하기 위하여 본 실험을 실시하였다. PKC 활성제인 PMA(phorbol 12-mystrate 13-acetate)는 ANP의 유리를 현저하게 증가시켰으며, PKC 억제제인 H-7(1-(5-isoquinoline sulfonyl)-2-methyl piperazine dihydrochlo-ride)에 의해 유리를 억제시켰다. PMA와 H-7을 동시에 처리한 경우 PMA에 의하여 증가된 ANP의 유리가 H-7에 의하여 차단됨을 관찰할 수 있었다. 따라서 백서의 관류 심방에서의 ANP 분비 증가는 PKC 활성화에 의하여 이루어지며, ANP분비의 2단계중 ANP 유리에 영향을 줌을 알 수 있었다.
A fertilized oocyte can get the competence for implantation through cleavage and stage-specific gene expression. These are under the control of autonomous and exogenous regulators including physiological culture condition. Endogenous and exogenous growth factors are considered as critical regulators of cleaving embryos during travel the oviduct and uterus. In this study, an effort was made to evaluate comprehensively the quality of embryos for implantation, grown in media enriched with EGF and PAF. The study evaluated developmental rates on given time, blastulation and hatching rates, and adhesion rates. Developmental rates of blastocyst to the hatching stage were significantly high in PAF treated group compared to the control in a dose-dependent manner but not in EGF group. Implantation rates were significantly high both PAF and EGF in a dose-dependent manner. H7, a PKC inhibitor, blocked the process of hatching of the blastocysts but combined treatment of EGF and PAF enhanced the hatching and implantation of blastocsyts. Based on these results it is suggested that EGF and PAF support acquirement of implantation competence at blastocyst stage through a PKC pathway.
In previous studies, we found that Annexin I (Anx I) was co-secreted with insulin in response to glucose, and that extracellular Anx I stimulated the release of insulin via the Anx I binding site in rat pancreatic islets and the &-cell line. However, the role that Anx I plays in the insulin secretion was not established. Therefore, in this study, we evaluated the insulin secretion pattern in response to Anx I and the involvement of the cytoskeleton or PKC in Anx Istimulated insulin secretion in MIN6N8a cells. The peak time of insulin secretion in response to Anx I treatment corresponded with the second phase insulin secretion by glucose in the perifused pseudoislets. In addition, Anx I-stimulated insulin secretion was not affect by readily releasable pool depletion. Taken together, these findings indicate that Anx I treatment was associated with movement of the reserve pool of insulin. Furthermore, Anx I-stimulated insulin secretion was attenuated by treatment with a microfilament inhibitor, cytochalasin B, as well as by PKC down regulation. These results indicate that Anx I may be a regulator of second phase insulin secretion.
Phospholipase D (PLD) is an enzyme hydrolyzing phosphatidylcholine to phosphatidic acid (PA) and choline. We investigated the involvement of PLD1 in the uptake of norepinephrine (NE) in PC12 cells, pheochromocytoma cells. NE uptake was specific in PC12 cells because nomifensine, a specific blocker of NE transporter, blocked NE uptake. Inhibition of PLD function in PC12 cells by the treatment of butanol suppressed the NE uptake. In contrast, overexpression of PLD1 in PC12 cells increased NE uptake efficiently. These results suggest that PLD activity is involved in NE uptake. We explored the action mechanism of PLD in NE uptake. PA phosphatase inhibitor, propranolol, blocks the formation of PKC activator diacylglycerol from PA. Propranolol treatment to PC12 cells blocked dramatically the uptake of NE. Specific PKC inhibitors, GF109203X and Ro31-8220, blocked NE uptake. Taken together, we suggest for the first time that PLD1 activity is involved in NE uptake via the activation of PKC.
It has been reported that the dysfunctions of podocytes are associated with the development of diabetic nephropathy. In addition, insulin-like growth factors (IGFs) are associated with the development of diabetic nephropathy. However, it is not yet known about the effect of high glucose on IGF-I, -II secretion, and IGF binding proteins (IGFBPs) expression in the podocytes. Thus, this study was conducted to examine the effect of high glucose on IGF system and its involvement of protein kinase C (PKC) and mitogen activated protein kinases (MAPKs) in podocytes. In this study, high glucose (25 mM) increased IGF-I and IGF-II secretion (P<0.05), which was blocked by SB 203580 (a p38 MAPK inhibitor) but not by PD 98059 (a p44/42 MAPK inhibitor). In addition, high glucose-induced stimulation of IGFs was blocked by bisindolylmaleimide I and staurosporine (protein kinase C inhibitors). High glucose also increased IGFBP-l expression, which was blocked by bisindolylmaleimide I and SB 203580. In conclusion, high glucose alters IGFs secretion and IGFBP expression via PKC and p38 MAPK pathways in podocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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