Park, So Yun;Lee, Ji Yun;Choi, Jun Young;Park, Mae Ja;Kim, Dong Sun
Molecules and Cells
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v.21
no.2
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pp.237-243
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2006
Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) is a neuromodulator of nociceptive responses in the dorsal root ganglia (DRG) and spinal cord. BDNF synthesis increases in response to nerve growth factor (NGF) in trkA-expressing small and medium-sized DRG neurons after inflammation. Previously we demonstrated differential activation of multiple BDNF promoters in the DRG following peripheral nerve injury and inflammation. Using reporter constructs containing individual promoter regions, we investigated the effect of NGF on the multiple BDNF promoters, and the signaling pathway by which NGF activates these promoters in PC12 cells. Although all the promoters were activated 2.4-7.1-fold by NGF treatment, promoter IV gave the greatest induction. The p38 mitogen-activated protein kinase (MAPK) inhibitor, SB203580, phosphatidylinositol 3-kinase (PI-3K) inhibitor, LY294003, protein kinase A (PKA) inhibitor, H89, and protein kinase C (PKC) inhibitor, chelerythrine, had no effect on activation of promoter IV by NGF. However, activation was completely abolished by the MAPK kinase (MEK) inhibitors, U0126 and PD98059. In addition, these inhibitors blocked NGF-induced phosphorylation of extracellular signal-regulated protein kinase (ERK) 1/2. Taken together, these results suggest that the ERK1/2 pathway activates BDNF promoter IV in response to NGF independently of NGF-activated signaling pathways involving PKA and PKC.
Background: Resveratrol has been reported to have potential chemopreventive and apoptosis-inducing properties in a variety of tumor cell lines. Objective: In this study, to investigate the effects of resveratrol on protein kinase C (PKC) activity and apoptosis in human colon carcinoma cells, we used HT-29 cells and examined the $PKC{\alpha}$ and ERK1/2 signaling pathways. Methods: To test the effects of resveratrol on the growth of HT-29 cells, the cells were exposed to varying concentrations and assessed with the the MTT cell-viability assay. Fluorescence-activated cell sorter (FACS) analysis was applieded to determine the effects of resveratrol on cell apoptosis. Western blotting was performed to determine the protein levels of $PKC{\alpha}$ and ERK1/2. In inhibition experiments, HT-29 cells were treated with G$\ddot{o}$6976 or PD98059 for 30 min, followed by exposure to $200{\mu}M$ resveratrol for 72 h. Results: Resveratrol had a significant inhibitory effect on HT-29 cell growth. FACS revealed that resveratrol induced apoptosis. Western blotting showed that e phosphorylation of $PKC{\alpha}$ and ERK1/2 was significantly increased in response to resveratrol treatment. Pre-treatment with $PKC{\alpha}$ and ERK1/2 inhibitors (G$\ddot{o}$6976 and PD98059) promoted apoptosis. Conclusion: Resveratrol has significant anti-proliferative effects on the colon cancer cell line HT-29. The PKC-ERK1/2 signaling pathway can partially mediate resveratrol-induced apoptosis of HT-29 cells.
Parkin is known to be a tumor suppressor protein. Previously, we determined that parkin expression restores susceptibility to TNF-${\alpha}$-induced death of HeLa cells, a human cervical cancer cell line resistant to TNF-${\alpha}$-induced cell death. MMP-3 is a zinc-dependent protease recently reported to activate intracellular apoptotic signaling. In this study we examined the regulation of MMP-3 expression by parkin in TNF-${\alpha}$-treated HeLa cells. Furthermore, we investigated the signaling pathway involved in parkin-induced expression of MMP-3. We found that HeLa cells exhibit low levels of MMP-3 but is induced after introduction of the parkin gene into HeLa cells. Furthermore, MMP-3 expression increased further when parkin expressing cells were treated with TNF-${\alpha}$. Using chemical inhibitors of cell signaling pathways, we found that MEK-1 (PD98059), PI3K (LY294002), p38 MAPK (SB203580), and JNK inhibitors alleviated parkin-induced up-regulation of MMP-3. Finally, we show that TNF-${\alpha}$-induced cell death in parkin expressing cells is inhibited by using a MMP-3 inhibitor. These results suggest that parkin expression induces prolonged expression of MMP-3 via MEK-1, PI3K, MAPK, and JNK pathway in HeLa cells allowing the HeLa cells to become sensitive to TNF-${\alpha}$-induced cell death. These results implicate a role of MMP-3 in parkin-induced cell death in TNF-${\alpha}$ treated HeLa cells.
Kim, Yong Hyun;Yoon, Hyoung Kyu;Kim, Chi Hong;Ahn, Joong Hyun;Kwon, Soon Seog;Kim, Young Kyoon;Kim, Kwan Hyoung;Moon, Hwa Sik;Park, Sung Hak;Song, Jeong Sup;Cho, Kyung Sook
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.58
no.6
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pp.590-599
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2005
Object : Cigarette smoking is a major cause of mucus hypersecretion, which is a pathophysiological feature of many inflammatory airway diseases. Mucins, which are an important part of the airway mucus, are synthesized from the Muc gene in airway epithelial cells. However, the signaling pathways for cigarette smoke-induced mucin synthesis are unknown. The aim of this study was to determine the signal pathway for smoking induced Muc5ac gene expression. Methods : A549 cells were cultured and transiently transfected with the Muc5ac promoter fragment. These cells were stimulated with 5% cigarette smoke extract (CSE) alone or with CSE after a pretreatment with various signal transduction pathway inhibitors (AG1478, PD98059 and SB203580). The Muc5ac promoter activity was examined using the luciferase reporter system, and the level of phosphorylated EGFR, ERK1/2, p38 MAPK and JNK were all examined using Western blot analysis. Muc5ac mRNA expression was also examined using reverse transcriptase polymerase chain reactions (RT-PCR). Results : 1. The peak level of luciferase activity of the Muc5ac promoter was observed at 5% concentration and after 3 hours of incubation with the CSE. The level of EGFR phosphorylation and the luciferase activity of the transfected cells caused by the CSE were significantly suppressed by AG1478 or PD98059 (P<0.01). 2. CSE phosphorylated ERK1/2 or p38 MAPK but not JNK. The Muc5ac mRNA expression level was increased by the CSE but that was suppressed by PD98059 or AG1478. 3. The CSE-induced phosphorylation of ERK1/2 was blocked by PD98059 and that of p38 MAPK was blocked by either PD98059 or SB203580. Either PD98059 or SB203580 suppressed the luciferase activity of the transfected cells (P<0.0001). Conclusion : The Muc5ac mRNA expression level was increased by the CSE. The increased CSE-induced transcriptional activity was mediated via EGF receptor activation, which led to ERK1/2 and p38 MAPK phosphorylation.
To investigate the effect of protein kinase on melanin production via cAMP-dependent pathway, we measured the melanin amount and tyrosinase activity in B16 melanoma cells stimulated by alpha-melanocyte stimulating hormone (MSH), forskolin and 8-Br-cAMP. MSH, forskolin and 8-Br-cAMP significantly increased both melanin production and tyrosinase activity in B16 cells. Melanin production and tyrosinase activity by MSH are significantly inhibited by cyclic AMP-dependent protein kinase inhibitor (KT5720) and protein kinase C down-regulation treated with PMA. Bisindolmaleimide (1$\mu$M), protein kinase C inhibitor, significantly inhibited melanin production and tyrosinase activity stimulated by MSH, forskolin and 8-Br-cAMP with the following order of potency: MSH>forskolin>8-Br-cAMP. Tyrosine kinase inhibitor, genistein and DHC, significantly inhibited both, but the inhibitory effect was more potent in 8-Br-cAMP-stimulated B16 cells than MSH-stimulated cells. NFkB inhibitor (parthenolide) significantly inhibited melanin production and tyrosinase activity. Neither melanin production nor tyrosinase activity induced by MSH, forskolin and 8-Br-cAMP were affected by KN-62 (calmodulin-dependent protein kinase II inhibitor), PD098059 (mitogen-activated protein kinase inhibitor, MAPKK) and worthmannin (phosphatidylinositol 3-kinase inhibitor). These results suggest that both protein kinase C and tyrosine kinase are involved in melanin production by cyclic AMP-dependent pathway and NFkB pathway may play an important role in cyclic AMP-dependent melanin production in B16 melanoma cells.
We evaluated the effects of various factors (e.g., serum, inhibitors of protein synthesis, and cytoskeleton and protein kinases) on early PMA-induced THP-1 cell adhesion using an adhesion assay with Sulforhodamine B (SRB) staining, which was used to assess the proliferation of the attached cells. THP-1 cell adhesion to a plastic substrate was detected 1 hr after exposure to Phorbol 12-Myristate 13-Acetate (PMA) and peaked after 18 hr. At concentrations > 25 nM PMA, the level of adhesion did not change. Based on our preliminary results, we used 25 nM PMA and 5 hr of culture as standard assay conditions. Early PMA-induced cell adhesion was not affected by the presence of serum or PD 98059 in the culture medium, but was affected by the addition of PKC inhibitors and cycloheximide. In the presence of actin inhibitor with PMA, the cell adhesion increased when comparing with PMA treatment only. Thus, early PMA-induced adhesion of THP-1 cells does not require serum in the culture medium, MAP-kinase activation, or actin polymerization, but does require de novo protein synthesis and PKC activation. Our SRB-based cell adhesion assay may be used to screen other PKC inhibitors.
Background: Little information is available on the identification and characterization of the upstream regulators of the signal transduction cascades for Mycobacterium tuberculosis (M. tbc)-induced ERK 1/2 activation and chemokine expression. We investigated the signaling mechanisms involved in expression of CCL3 /MIP-1 and CCL4/MIP-1 in human primary monocytes infected with M. tbc. Methods: MAP kinase phosphorylation was determined using western blot analysis with specific primary antibodies (ERK 1/2, and phospho-ERK1/2), and the upstream signaling pathways were further investigated using specific inhibitors. Results: An avirulent strain, M. tbc H37Ra, induced greater and more sustained ERK 1/2 phosphorylation, and higher CCL3 and CCL4 production, than did M. tbc H37Rv. Specific inhibitors for mitogen-activated protein kinase (MAPK) kinase (MEK; U0126 and PD98059) significantly inhibited the expression of CCL3 and CCL4 in human monocytes. Mycobactetia-mediated expression of CCL3 and CCL4 was not inhibited by the Ras inhibitor manumycin A or the Raf-1 inhibitor GW 5074. On the other hand, phospholipase C (PLC) inhibitor (U73122) and protein kinase C (PKC)specific inhibitors ($G\ddot{o}6976$ and Ro31-8220) significantly reduced M. tbc-induced activation of ERK 1/2 and chemokine synthesis. Conclusion: These results are the first to demonstrate that the PLC-PKC-MEK-ERK, not the Ras-Raf-MEK-ERK, pathway is the major signaling pathway inducing M. tbc-mediated CCL3 and CCL4 expression in human primary monocytes.
Breast cancer anti-estrogen resistance 3 (BCAR3) has been identified as one of the genes that induces anti-estrogen resistance in breast cancer. We have previously reported that BCAR3 activates promoters of c-Jun, activator protein-1, and the serum response element. In this study, we investigated the functional role of BCAR3 in the activation of the estrogen response element (ERE) in normal human breast MCF-12A cells. Transient expression of BCAR3 induced ERE activation, which was further increased by 17β-estradiol treatment but was not blocked by the anti-estrogen tamoxifen. Next, we studied the signaling pathway of BCAR3 leading to ERE activation. BCAR3-mediated ERE activation was inhibited by LY294002 and AZD5363, inhibitors of the phosphatidylinositol (PI) 3-kinase pathway, but not by PD98059 and U0126, inhibitors of the mitogen-activated protein kinase pathway. ERE activation was induced by the catalytic subunit p110α. of PI3-kinase or the active mutant of Akt, and this activation was not further increased by additional BCAR3 transfection. Based on these results, we propose that BCAR3 plays an important role in ERE activation through the PI3-kinase/Akt pathway in human breast MCF-12A cells.
Despite the importance of the receptor activator of nuclear factor (NF)-kappaB ligand (RANKL)-RANK signaling mechanisms on osteoclast differentiation, little has been studied on how RANK expression is regulated or what regulates its expression during osteoclastogenesis. We show here that insulin signaling increases RANK expression, thus enhancing osteoclast differentiation by RANKL. Insulin stimulation induced RANK gene expression in time- and dose-dependent manners and insulin receptor shRNA completely abolished RANK expression induced by insulin in bone marrow-derived monocyte/macrophage cells (BMMs). Moreover, the addition of insulin in the presence of RANKL promoted RANK expression. The ability of insulin to regulate RANK expression depends on extracellular signal-regulated kinase 1/2 (ERK1/2) since only PD98059, an ERK1/2 inhibitor, specifically inhibited its expression by insulin. However, the RANK expression by RANKL was blocked by all three mitogen-activated protein (MAP) kinases inhibitors. The activation of RANK increased differentiation of BMMs into tartrate-resistant acid phosphatase-positive ($TRAP^+$) osteoclasts as well as the expression of dendritic cell-specific transmembrane protein (DC-STAMP) and d2 isoform of vacuolar ($H^+$) ATPase (v-ATPase) Vo domain (Atp6v0d2), genes critical for osteoclastic cell-cell fusion. Collectively, these results suggest that insulin induces RANK expression via ERK1/2, which contributes to the enhancement of osteoclast differentiation.
Gastric cancer (GC) is the second leading cause of cancer mortality and the fourth most commonly diagnosed malignant diseases. While continued efforts have been focused on GC treatment, the introduction of trastuzumab marked the beginning of a new era of target-specific treatments. Considering the diversity of mutations in GC, satisfactory results obtained from various target-specific therapies were expected, yet most of them were unsuccessful in controlled clinical trials. There are several possible reasons underlying the failures, including the absence of patient selection depending on validated predictive biomarkers, the inappropriate combination of drugs, and tumor heterogeneity. In contrast to targeted agents, immuno-oncologic agents are designed to regulate and boost immunity, are not target-specific, and may overcome tumor heterogeneity. With the successful establishment of predictive biomarkers, including Epstein-Barr virus pattern, microsatellite instability status, and programmed death-ligand 1 (PD-L1) expression, as well as ideal combination regimens, a new frontier in the immuno-oncology of GC treatment is on the horizon. Since the field of immuno-oncology has witnessed innovative, practice-changing successes in other cancer types, several trials on GC are ongoing. Among immuno-oncologic therapies, immune checkpoint inhibitors are the mainstay of clinical trials performed on GC. In this article, we review target-specific agents currently used in clinics or are undergoing clinical trials, and highlight the future clinical application of immuno-oncologic agents in inoperable GC.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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