Kim, Hyoun-Wook;Kim, Ji-Hyun;Rhim, Seong-Ryul;Lee, Kyung-A;Kim, Cheon-Jei;Paik, Hyun-Dong
Food Science of Animal Resources
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v.30
no.4
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pp.590-596
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2010
Meat and meat products are a potential source of food-borne pathogens, including Staphylococcus aureus, Salmonella spp., Escherichia coli O157:H7, and Bacillus cereus. A sensitive and specific PCR assay for the detection of these pathogens in meat and meat products was developed in this study, as part of a broader effort to reduce the potential health hazards posed by these pathogens. Initially, PCR conditions were standardized with purified DNA. Under standard conditions, the detection level for PCR was as low as 10 pg of purified bacterial DNA. After overnight growth of bacteria in a broth medium, as few as $10^2$ CFU of bacteria were detected by PCR assay. The primers employed in the PCR assay were found to be highly specific for individual organisms, and evidenced no cross-reactivity with heterologous organisms. Additionally, the multiplex PCR assays also amplified some target genes from the four pathogens, and multiplex amplification was obtained from as little as 10 pg of DNA, thus illustrating the excellent specificity and high sensitivity of the assay. In conclusion, this PCR-based technique provides a sensitive and specific method for the detection of S. aureus, Salmonella spp., E. coli O157:H7, and B. cereus in meat and meat products.
Barley yellow mosaic virus (BaYMV), which is transmitted by the root-inhabiting protist Polymyxa graminis, causes a soil-borne disease. In this study, we detected BaYMV from soil using two-step nested polymerase chain reaction (PCR). Specific primers based on a coat protein region of BaYMV segment RNA1 were used in the first round of amplification. Based on the sequenced amplicon, an inner primer was designed for the second round of amplification. A PCR product of 372 bp exhibited 98%-100% nucleotide sequence identity with the coat protein region of BaYMV segment RNA1. In this study, we propose an easy method for the detection of BaYMV from soil, may considerably assist in accurate fungus-transmitted virus diagnosis and subsequent disease forecasting. This is the first report on the detection of BaYMV from soil.
Peanut (Arachis hypogaea) often causes severe allergic reactions in sensitive people. Agglutinin is known to be one of the allergenic proteins in peanut. A polymerase chain reaction (PCR) method was developed to detect peanut ingredients in food using a primer pair corresponding to the agglutinin gene. This primer pair enabled PCR amplification of specific regions of agglutinin DNA from peanut, but not from 11 other nuts, beans, and cereals (pistachio, almond, sunflower seed, pine nut, walnut, soybean, black bean, kidney bean, azuki bean, rice, and black rice). The proposed PCR method successfully identified all of the 6 processed foods containing peanut whereas 13 other processed foods, which don't declare peanuts as an ingredient, were all negative. The detection limit of this method for purified peanut DNA was 100 pg/reaction. The sensitivity of this method was sufficient to detect peanut DNA in soybean DNA mixture which had been spiked with 0.1% peanut DNA.
Jeon, Hyeong-Kyu;Kim, Kyu-Heon;Sohn, Woon-Mok;Eom, Keeseon S.
Parasites, Hosts and Diseases
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v.56
no.3
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pp.295-300
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2018
Human sparganosis was diagnosed by morphological and genetic analyses in Korea. The complete mitochondrial genomes of Spirometra erinaceieuropaei and S. decipiens isolated in Korea have been recorded. Present study was performed to provide information to diagnose the etiologic agent of sparganosis by multiplex PCR using mitochondrial genome sequences of S. erinaceieuropaei and S. decipiens. In an effort to examine the differential diagnosis of spirometrid tapeworms, multiplex PCR assays were performed on plerocercoid larvae of S. erinaceieuropaei and S. decipiens. The PCR products obtained using species-specific primers were positively detected in all PCR assays on mixture of S. erinaceieuropaei and S. decipiens DNA. S. erinaceieuropaei-specific bands (239 bp and 401 bp) were obtained from all PCR assays using a mixture of S. erinaceieuropaei-specific primers (Se/Sd-1800F and Se-2018R; Se/Sd-7955F and Se-8356R) and S. erinaceieuropaei template DNA. S. decipiens-specific bands (540 bp and 644 bp) were also detected in all PCR assays containing mixtures of S. decipiens-specific primers (Se/Sd-1800F and Sd-2317R; Se/Sd-7955F and Sd-8567R) and S. decipiens template DNA. Sequence analyses on these species-specific bands revealed 100% sequence identity with homologous regions of the mtDNA sequences of S. erinaceieuropaei and S. decipiens. The multiplex PCR assay was useful for differential diagnosis of human sparganosis by detecting different sizes in species-specific bands.
Pasteurella multocida is kind of commensal bacteria in the upper respiratory tract of pigs. It is classified toxigenic and nontoxigenic strains based on the production of dermonecrotic toxin. Toxigenic strain is most associated with atrophic rhinitis which brings great economical loss in swine industry. However, toxigenic and nontoxigenic strains do not differ by diagnostic biochemical reaction or morphology. One of recently developed techniques, PCR detects the toxigenic P multocida. Amplification of an 846-nucleotide fragment of toxA gene was developed. The fragment amplified by PCR was detected in P multocida type D not type A. The PCR amplification was as sensitive as it could detect 1 pg of P multocida DNA. We compared the result of the PCR with the enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) in a test for 40 swine nasal swabs. All of these isolates were toxin negative based on the ELISA while 2 isolates were detected in the PCR technique. in addition to accuracy, as required for rapid detection from contaminated nasal swabs, toxigenic P multocida was recovered efficiently from contaminated culture without inhibition of the PCR. The results show that the PCR detection of toxigenic P multocida directly form nasal swabs are feasible.
A pair of designed primers (sequences from Gene Bank) amplified 16S fRNA gene of V. vulnificus within polymerase chain reaction (PCR) machine. This PCR product is about 1.3kb DNA fragment. Six enzymes (BamH I, Alu I, Sau3A I, Hind III, Sal I, Sma I) were used for restriction pattern analysis of amplified 16S rRNA gene of V. vulnificus ATCC 27562. Digested fragments are resolved by 3% agarose gel. BamH I did not show digested fragment so, there was no cutting site of BamH I in PCR product. Alu I produced three small fragments from 400 bp to 200 bp. Sau3A I produced three fragments larger than Alu I from 70 bp and 500 bp. One of fragments of Sal I was same with 500 bp of Hind III fragment and the other was 750 bp. Sma I showed two fragments of 800 bp and 470 bp. The profile of digested fragments of 16S rRNA of V.vulnificus ATCC 27562 will may be able to use standard profile for identification of V. vulnificus.
Canine parvovirus(CPV) is a very highly contagious virus causing hemorrhagic enteritis and myocarditis mainly in young dogs. The diseases were first recognized in 1978, and then spread throughout the world by 1980. The main source of the infection seems to be the feces of infected dogs, at the same time feces are suitable materials for detection of virus in the enteric form exactly for the same reasons. Recently, a new technique of in vitro DNA amplification, Known as the polymerase chain reaction (PCR), has been widely applied to clinical viral diagnosis because of its sensitivity, specificity and rapidity. In this research, we attemped to set up the PCR for the detection of CPV in fecal samples and conformed the canine parvpviral enteritis by PCR. To increase the sensitivity and specificity of a PCR, the nested PCR (two-step PCR) was performed. We also surveyed the contamination status of CPV in the research using fecal specimen was highly sensitive and specific. Of the 100 fecal specimens suspected canine parvoviral enteritis, 45 fecal specimens were positive in HA test, 64 fecal specimens were positive in the first PCR, and 87 fecal specimens were positive in the second PCR. CPV contamination status of animal clinics and breeding centers was serious, wo hygienic management of environment in which dogs are reared is required. The nested PCR described here seems to be a rapid, sensitive and specific for the detection of canine parvovirus.
We developed a multiplex PCR (mPCR) assay to simultaneously detect Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma urealyticum, Corynebacterium spp. and seudomona aeruginosa. This method employs a single tube and multiple specific primers which yield 200, 281, 346, 423, 542, and 1,427 bp PCR products, respectively. All the PCR products were easily detected by agarose gel electrophoresis and were sequenced to confirm the specificity of the reactions. To test this method, DNA extracted from urine samples was collected from 96 sexually transmitted disease or prostatitis patients at a local hospital clinical center, and were subjected to the mPCR assay. The resulting amplicons were cloned and sequenced to exactly match the sequences of known pathogenic isolates. N. gonorrhoeae and Corynebacterium spp. were the most frequently observed pathogens found in the STDs and prostatitis patients, respectively. Unexpectedly, P. aeruginosa was also detected in some of the STD and prostatitis samples. More than one pathogen species was found in 10% and 80.7% of STD and prostatitis samples, respectively, indicating that STD and prostatitis patients may have other undiagnosed and associates. The sensitivity of the assay was determined by sing purified DNA from six pathogenic laboratory strains and revealed that this technique could detect pathogenic DNA at concentrations ranging from 0.018 to $1.899\;pg/{\mu}l$. Moreover, the specificities of this assay were found to be highly efficient. Thus, this mPCR assay may be useful for the rapid diagnosis of causative infectious STDs and prostatitis. useful for the infectious STDs and prostatitis.
A polymerase chain reaction (PCR)-restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis was applied to detect and identify ten Weissella spp. frequently found in kimchi. The previously reported genus-specific primers designed from 16S rDNA sequences of Weissella spp. were adopted but PCR was performed at the increased annealing temperature by $4^{\circ}C$. The sizes of amplified PCR products and restricted fragments produced by AluI, MseI, and BceAI endonucleases were well correspond with the expected sizes. W. kandleri, W. koreensis, W. confusa, W. minor, W. viridescens, W. cibaria, and W. soli were distinguished by AluI and MseI and W. hellenica and W. paramesenteroides were identified by BceAI. W. thailandensis was distinguished when restriction pattern of other species was compared but identified by the single use of MspI.
Andean potato latent virus (APLV) is a phytopathogenic virus that belongs to the Group IV (+) sense ssRNA viruses of the genus Tymovirus. It mainly infects potatoes and is specified as a controlled quarantine virus in Korea. In this study, two primer sets of RT-PCR and nested PCR [set 2 ($404{\rightarrow}259bp$) and set 23 ($501{\rightarrow}349bp$)], were selected, which can rapidly and accurately diagnose APLV in quarantine sites. In addition, a modified-positive control plasmid is development, can possible verification of laboratory contamination in diagnosis of APLV detection. The PCR-base system developed in this study is expected to diagnose APLV and contribute to the plant quarantine in Korea.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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