This study was conducted to produce the transgenic plant of rice. We obtained Agrobacterium AGL1 harbaring pCambial 300 vector with HPT gene. We carried out PCR analysis of 22 ea putative transgenic rice to investigate transformed lines. The 3 ea transgenic lines were detected insertion of HPT gene. Transgenic lines selected from PCR analysis were performed by Southern blot. From Southern blot, we obtained that two transgenic lines detected single band. We are going to study the method improving of cotransformation as well as transformation efficiency in rice.
Journal of the korean academy of Pediatric Dentistry
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v.25
no.2
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pp.292-303
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1998
The arbitrary primer polymerase chain reaction(AP-PCR) and Southern blot restriction fragment length polymorphism(RFLP) were used to genotype the cariogenic pathogen S. mutans in children. Following the morphologic chracteristics of colony on selective medium for S. mutans, total genomic DNA from 155 strains was extracted by conventional methods. Among 155 strains, 143 strains (92.3%) were confirmed S. mutans by PCR with dexA gene and 114 strains were used in this study. Three random sequence 10-base oligonucleotide primers were chosen for AP-PCR. The amplified DNA products were separated electrophoretically in a 2% agarose gel containing ethidium bromide and the banding patterns were compared among different strains. For RFLP analysis, DNA was digested with EcoRI and BamHI, separated on a 0.7 % agarose gel and transferred to a nylon membrane. The membrane was probed with a previously characterised 1.6 kilobases (kb) DNA fragment cloned from gtf B gene of S. mutans. The probe was labeled with isotope[$^{32}P-{\alpha}CTP$], and hybridized fragments were detected with intensifying screen. AP-PCR produced 4-8 DNA bands in the 0.25-10 kb regions and distinguished 9, 10 or 12 genotypes, depending on the specific primer used. Southern blot RFLP analysis revealed 2 hybridization patterns consisting of 1 DNA fragments 450, 500 bp. These results indicate that AP-PCR is more discriminative method for genotyping of S. mutans.
Thirty strains of methicillin resistant Staphylococcus aureus were obtained from the clinical isolates. In order to investigate the pursuit of the pathogens of nosocomial infection, these strains were studied for antibiotic sensitivity as well as its resistant pattern. Among the methods of hybridization which directly confirm the specific antibiotic resistant genes by means of the recently developed specific probe DNA, dot blot hybridization and southern blot hybridization were performed and these two methods were compared in their sensitivity and specificity. Strains that is sensitive to cephalothin to the subject of methicillin resistant Staphylococcus aureus were in 43%. Those that are sensitive to cefoperazone and cefuroxime were 26% and 23%, respectively. In case of MIC, MIC50 of cefoperazone was 8 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$, and MIC90 was 128 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ to be the lowest. As the results of plasmid DNA electrophoresis, most of methicillin resistant Staphylococcus aureus strains had more than 4 plasmids. These plasmids digested by BamHI, methicillin resistant Staphylococcus aureus is distributed as 10 fragments with the size of 65 kb to 1.5 kb. Dot blot hybridization were performed to examine the existence of mecA gene to show the detection rate of 50%. Southern blot hybridization were done to see if DNA bands which amplify the activity of digoxigenium-labeled probe by PCR were actually PCR products of mecA gene and it showed the detection rate of 53%. It can be concluded that the southern blot hybridization seemed to be better in sensitivity and specificity when it is compared with the results of dot blot hybridization.
Ha, Young-Min;Kim, Jong-Chul;Lee, Sang-Woo;Lee, Shin-Woo;Kim, Zhoo-Hyeon
Journal of Plant Biotechnology
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v.30
no.2
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pp.143-149
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2003
This experiment was carried out to confirm the stability of bar gene introduced into petunia plant through Agrobacerium-mediated transformation. Twenty-five transgenic plants T$_{0}$ plants, back cross (BC$_1$) populations to wild type and F$_1$plants between different T$_{0}$ plants were prepared, and polymerase chain reaction(PCR), PCR-Southern blot analysis, and field test with 0.1% Basta treatment were done. The results of PCR, PCR-Southern blot hybridization, and field test indicated that NPTII and bar gene introduced into the genome of petuina plants were stably transmitted to their progenies, and conferred the plants resistance to herbicide, Basta.sta.
With the continual development of genetically modified (GM) crops, it has become necessary to develop detailed and effective molecular characterization methods to select candidate events from a large pool of transformation events. Relative to traditional molecular analysis methods such as the polymerase chain reaction (PCR) and Southern blot hybridization, next generation sequencing (NGS) technology for whole-genome sequencing of complex crop genomes had proven comparatively useful for in-depth molecular characterization. In this study, four transformation events, including one in Bacillus thuringiensis (Bt)-resistant rice, one in resveratrol-producing rice, and two in beta-carotene-enhanced soybeans, were selected for molecular characterization. To merge NGS analysis and Southern blot-hybridization results, we confirmed the transgene insertion sites, insertion construction, and insertion numbers of these four transformation events. In addition, the read-coverage depth assessed by NGS analysis for inserted genes might provide consistent results in terms of inserted T-DNA numbers in case of complex insertion structures and highly duplicated donor genomes; however, PCR-based methods can produce incorrect conclusions. Our combined method provides an effective and complete analytical approach for whole-genome visual inspection of transformation events that require biosafety assessment.
The objective of this study was to clone a partial fragment of $\alpha$-amylase from Korean maize. We designed and synthesized an oligonucleotide probe and two kinds of PCR primers based on cDNA conserved region of $\alpha$-amylase sequences from other plants. Total RNA from 3-day-old maize seedling was used as template for 1st strand cDNA synthesis and RNA-DNA hybrid was used as template for polymerase chain reaction(PCR). The product of PCR was about 0.5 kb long and inserted into pUC19. We named this recombinant plasmid as pZM$\alpha$'. The cloned fragment was certified by Southern blot analysis using labeled synthetic oligonucleotide as probe.
BcGRl gene encoding cytosolic glutathione reductase of Chinese cabbage (Brassica campestris var. Pekinensis cv. Seoul) was placed under the control of the CaMV 35S promoter and introduced into tobacco (Nicotiana tabacum L. cv. Samsun) via Agrobacterium-mediated transformation. T$_{0}$ 32 independent plants transformed with BcGRl gene were selected with kanamycin and they were confirmed by polymerase chain reaction (PCR) and Southern blot analysis. Northern blot analysis revealed that the constitutive expression of BcGRl gene and there was no relationship between the copy number of introduced gene and the levels of BcGRl transcripts.
Bovine immunodeficiency virus (BIV) which was grouped into the Lentivirinae of family Retroviridae, was known to be causing many immunodeficiency syndromes among cows. The BIV was studied worldwide during last several years for its importance in cattle industries but nothing was reported in Korea until now Thus we initially tried to study the existence of BIV in cattle around the Daegu·Kyungpook area by PCR related molecular techniques. As a prerequisite investigation for detecting Korean-type BIV, we had focused our aim into BLV infected cows because the BLV infected cows tend to show BIV infection with 5% ranges. Hence we randomly sampled fresh bloods from 248 cows and bulls near the Daegu·Kyungpook area and collected peripheral blood monocytes (PBMC) from the sample bloods. After extracting genomic DNA from the PBMC, we subjected it to PCR and Soluthern blot analysis for BIV/BLV detection. Overall, 66.9% (81/121) of the cow PBMC samples turned out to be BLV positive by PCR and the result was reconfirmed by Southern blot analysis. The value was two times higher than the previously reported results of BLV infection in Korea. The significant difference was mainly due to 1) applying highly specific methods for BLV detection such as PCR 2) that BLV was continuously spreaded in the Daegu Kyungpook area without any notice during last ten years. We also tested the BLV positive samples with the same techniques for BIV detection. And we found some BIV positives among the lot 3C samples by PCR, which had showed 100% BLV positive.
To investigate the distribution of Borrelia burgdorferi and human granulocytic ehrlichiosis (HGE) agent in ticks, adult ixodid ticks of Ixodes spp. and Haemaphysalis spp. were collected from the high mountain areas of Kangwon Province. Using DNAs extracted and purified in the collected ticks, polymerase chain reaction (PCR) was performed to amplify the specific nucleotide sequences of both agents. Of the 516 ticks, a total of 68 (13.2%) ticks was positive for Borrelia burgdorferi sensu lato with PCR analysis (2 for B. burgdorferi sensu stricto; 1 for B. afzelii;33 for B. garinii; 8 for B. tanukii;4 for B. turdae). However a little more than half of PCR-positive ticks (37/68) was found to be positive in the southern blot analysis with Bl6S oligonucleotide probe. One hundred and one (19.2%) ticks were positive for Ehrlichia spp. in PCR, and a quarter of them (25/101) was positive in southern blot with El6S oligonucleotide probe. But none of them was found to be the DNA of HGE agent. And 0.6% (3/516) ticks were positive for both of B. burgdorferi sensu late and Ehrlirhia spp. These findings might implicate the possibility of the outbreak of Iyme borreliosis and ehrlichiosis in Korea, and more extensive studies may be need for the diagnosis of multiple tick-borne diseases.
Kim Ki-Yong;Jang Yo-Soon;Park Geun Je;Choi Gi Jun;Seong Byung Ryul;Seo Sung;Cha Joon-Yung;Son Daeyong
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.25
no.4
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pp.267-274
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2005
To develop transgenic orchardgrass (Dactylis glomerata L.) resistant to high temperature, a thermptolerance gene, DgP23, was introduced into orchardgrass using Agrobacterium - mediated transformation method. PCR and Southern blot analyses using genomic DNA showed specific DNA band on agarose gel and hybridization signal on X- ray film in transgenic orchardgrass harboring the recombinant DgP23 gene, but not in the wild type and empty vector control plants. RT-PCR and Southern blot analyses using total RNA also showed specific DNA band and hybridization signal. Transgenic orchardgrass did not showed ny morphological aberration both in the green house and field cultivation. Thermotolerance of transgenic plants was not detected in laboratory test. but may detected in field test.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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