Park, Mi-Jeong;Lee, Hyorim;Ryoo, Rhim;Jang, Yeongseon;Ka, Kang-Hyeon
The Korean Journal of Mycology
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v.49
no.4
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pp.455-467
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2021
Macrofungi are valuable resources as novel drug candidates, new biomaterials, and edible materials. Recently, genetic approaches pertaining to macrofungi have been continuously growing for their identification, molecular breeding, and genetic engineering. However, purification and amplification of fungal DNA is challenging because of the rigid cell wall and presence of PCR inhibitory metabolites. Here, we established a direct PCR method to provide a rapid and efficient method for PCR-grade macrofungal DNA preparation applicable to both conventional PCR and real-time PCR. We first optimized the procedure of lysis and PCR using the mycelia of Lentinula edodes, one of the most widely consumed macrofungal species. Lysates prepared by neutralizing with (NH4)2SO4 after heating the mycelia in a mixture of TE buffer and KOH at 65℃ for 10 min showed successful amplification in both conventional and real-time PCR. Moreover, the addition of bovine serum albumin to the PCR mixture enhanced the amplification in conventional PCR. Using this method, we successfully amplified not only internal transcribed spacer fragments but also low-copy genes ranging in length from 500 to 3,000 bp. Next, we applied this method to 62 different species (54 genera) of macrofungi, including edible mushrooms, such as Pleurotus ostreatus, and medicinal mushrooms such as Cordyceps militaris. It was found that our method is widely applicable to both ascomycetes and basidiomycetes. We expect that our method will contribute to accelerating PCR-based approaches, such as molecular identification, DNA marker typing, gene cloning, and transformant screening, in macrofungal studies.
Kim, Jun Young;Woon, Jang Si;Kim, Hyun Ju;Kim, Seong Hwan
The Korean Journal of Mycology
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v.46
no.2
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pp.186-192
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2018
Rapid and accurate detection methods for Colletotrichum coccodes, an anthracnose pathogen of pepper and tomato, were developed using PCR. A specific primer set, coccoTef-F/coccoTef-R, which was constructed by analyzing tef-$1{\alpha}$ genes from 13 species and 22 strains of Colletotrichum, could specifically detect C. coccodes at a level of 10 ng by conventional PCR method and at 10 pg by real-time PCR. The PCR-based methods were also capable of detecting C. coccodes in pepper and tomato seeds artificially infected with the pathogen. The developed PCR methods can be applied for rapid and accurate inspection of C. coccodes in the seeds intended for export or import.
The tetraploid Solanum acaule is a wild potato species from Bolivia widely used for potato breeding because of its diverse attractive traits, including resistance to frost, late blight, potato virus X, potato virus Y, potato leafroll virus, potato spindle tuber viroid, and cyst nematode. However, the introgression of useful traits into cultivated potatoes via crossing has been limited by differences in endosperm balance number between species. Somatic fusion could be used to overcome sexual reproduction barriers and the development of molecular markers is essential to select proper fusion products. The chloroplast genome of S. acaule was sequenced using next-generation sequencing technology and specific markers for S. acaule were developed by comparing the obtained sequence with those of seven other Solanum species. The total length of the chloroplast genome is 155,570 bp, and 158 genes were annotated. Structure and gene content were very similar to other Solanum species and maximum likelihood phylogenetic analysis with 12 other species belonging to the Solanaceae family revealed that S. acaule is very closely related to other Solanum species. Sequence alignment with the chloroplast genome of seven other Solanum species revealed four InDels and 79 SNPs specific to S. acaule. Based on these InDel and SNP regions, one SCAR marker and one CAPS marker were developed to discriminate S. acaule from other Solanum species. These results will aid in exploring evolutionary aspects of Solanum species and accelerating potato breeding using S. acaule.
Background: From our previous study, we established that cyclin A1 (CCNA1) promoter methylation is strongly correlated with multistep progression of HPV-associated cervical cancer, suggesting potential use as a diagnostic maker of disease. Objectives: The purpose of the present study was to assess the prevalence of CCNA1 promoter methylation in residual cervical cells isolated from liquid-based cytology that underwent hrHPV DNA screening for cervical cancer, and then to evaluate this marker for diagnostic accuracy using parameters like sensitivity, specificity, predictive values and likelihood ratio. Methods: In this retrospective study, histopathology was used as the gold standard method with specimens separated into the following groups: negative (n=31), low-grade squamous intraepithelial lesions (LSIL, n=34) and high-grade squamous intraepithelial lesions or worse (HSIL+, n=32). The hrHPV was detected by Hybrid Capture 2 (HC2) and CCNA1 promoter methylation was examined by CCNA1 duplex methylation specific PCR. Results: The results showed the frequencies of CCNA1 promoter methylation were 0%, 5.88% and 83.33%, while the percentages of hrHPV were 66.67%, 82.35% and 100% in the negative, LSIL and HSIL+ groups, respectively. Although hrHPV infection showed high frequency in all three groups, it could not differentiate between the different groups and grades of precancerous lesions. In contrast, CCNA1 promoter methylation clearly distinguished between negative/LSIL and HSIL+, with high levels of all statistic parameters. Conclusion: CCNA1 promoter methylation is a potential marker for distinguishing between histologic negative/LSIL and HSIL+using cervical cytology samples.
Beta-carotene producing transformants were produced in the background of 'Nagdongbyeo', a Japonica rice cultivar. Introgression of the carotenoid locus in the transformant, PAC4-2 into the elite cultivar 'Ilpumbyeo' was started. To initiate a backcrossing program, we surveyed 220 SSR markers and found that 38% of them were polymorphic between 'Ilpumbyeo' as a recurrent parent and the PAC4-2 as a recipient parent. The selection strategy comprising foreground and background selection was employed. First, foreground selection was practiced in $BC_1$, $BC_2$, and $BC_3$ generations using the transgene specific PCR-based marker in addition to visual scoring of the seed color. Marker-based background selection combined with phenotypic selection was employed from $BC_3F_2$ to $BC_3F_4$ generations. Blast search indicated that the transgene PAC4-2 was located between SSR markers, RM6 and RM482. 240 $BC_3F_3$ and 63 $BC_3F_4$ lines were evaluated for four agronomic traits including days to heading. Most of the lines were similar to Ilpumbyeo in agronomic traits evaluated. The percentage of PAC4-2 genome ranged from 4% to 21% with a mean of 12.5%, which was higher than the expected for an unselected $BC_3$ backcross population. This could be explained by the fact that two genes for beta-carotene and the stripe virus resistance were targeted in this study. We selected 10 representative $BC_3F_5$ lines from 63 $BC_3F_4$ lines based on agronomic traits and carotenoids content. The selection strategy would be appropriate for the introgression of beta-carotene gene in a breeding program.
Vibrio cholerae O1 and O139 are the major serotypes associated with illness, and some V. cholera non-O1 and non-O139 isolates produce cholera toxin. The present study describes a quantitative polymerase chain reaction (qPCR) assay for the species-specific detection and quantitation of V. cholera using a primer pair based on an outer membrane lipoprotein lolB gene for the amplification of a 195 bp DNA fragment. The qPCR primer set for the accurate diagnosis of V. cholera was developed from publically available genome sequences. This quantitative PCR-based method will potentially simplify and facilitate the diagnosis of this pathogen and guide disease management.
Intraspecific genetic relationship of 19 variation types of the Yam (Dioscorea alata) classified by their external morphological characteristics such as leaf and tuber shape were assessed by DNA using random and specific primer. Twenty two out of 113 primers (100 random[10-mer] primers, two 15 mer [M13 core sequence, and (GGAT)$_4$ sequence]) had been used in PCR-amplification. Only 12 primers, however, were success in DNA amplification in all of the analyzed plants, resulting in 93 randomly and specifically amplified DNA fragments. The analyzed taxa showed very high polymorphisms(69 bands, 71.0 %), allowing individual taxon to be identified based on DNA fingerprinting. Monomorphic bands among total amplified DNA bands of each primer was low under the 50%. Similarity indices between accessions were computed from PCR(polymerase chain reaction) data, and genetic relationships among intraspecific variations were closely related at the levels ranging from 0.66 to 0.90. These DNA data were not matched well with those of morphological characters since they were divided into two major groups at the similarity coefficient value of 0.70. Therefore, Grouping of species into variation types by mainly morphological charactistics was suggested unreasonable.
Kim, Joo-Il;Oh, Taeg-Yun;Yang, Won-Seok;Cho, Eun-Seob
Journal of Life Science
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v.18
no.2
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pp.284-286
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2008
Octopus minor (O. minor) is widely distributed along the coastal regions of Korea, but most of them are caught in southern waters which are associated with one of the important fisheries stock. At present, O. minor from China has been introduced to the fishery markets in Korea. Here, we attempt to discriminate their origin for Korea or China using molecular techniques. Based on the O. minor mitochondrial DNA sequence, we developed a PCR-based origin discrimination system. The assay specificity was assessed by testing four individuals of O. minor from Sangdong, China, as well as 20 additional O. minor from Namhae, Muan, Yeosu and Jindo, Korea. Only four isolates of O. minor originated from China tested as positive in our distinction system. All PCR-positive products yielded identical sequences from Chinese O. minor, whereas Korean O. minor appeared to be PCR amplification. This result suggested that the primers used in this study are O. minor species specific, especially originated from China. The detection system appeared to be positive results in the use of 0.1 ng of Chinese O. minor DNA as template, however, the Korean O. minor even using $1{\mu}g$ of DNA showed no amplification. Consequently, the assay provides a simple, rapid and accurate method for the detection of Chinese O. minor.
This study describes an efficient approach to the development of DNA markers for use in distinguishing the Scrophularia species that have been used as useful medicinal crops. In order to distinguish Scrophularia species, DNA sequences of rpl-5 region in mitochondrial DNA of Scrophularia species were analysed for detecting sequence variations, and the PCR-RFLP method was applied for developing practicable DNA marker patterns. Several DNA variations were detected by the sequence comparison of rpl-5 region among Scrophularia species. Genetic relationship analysis of Scrophularia species was carried out based on these DNA variations. DNA variations of rpl-5 region were revealed that it was significantly efficient in genetic relationship analysis of Scrophularia species. In addition, Scrophularia species tested in this study were completely discriminated by four polymorphic genotypes by PCR-RFLP combined with Tsp509 I (^AATT) restriction enzyme. Our results suggested that DNA sequence variations of rpl-5 region were sufficiently useful for genetic relationship analysis of Scrophularia species. Polymorphic genotypes by PCR-RFLP using the Tsp509 I enzyme will be useful for discrimination of Scrophularia species as a practicable DNA markers.
Kim, Keun-Yong;Heo, Jung Soo;Moon, Seong Yong;Kim, Keun-Sik;Choi, Jung-Hwa;Yoo, Joon-Taek
Korean Journal of Ecology and Environment
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v.54
no.3
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pp.209-220
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2021
Pacific herring, Clupea pallasii, a keystone species with significant ecological and commercial importance, is declining globally throughout much of its range. While traditional fishing equipment methods remain limited, new sensitive and rapid detection methods should be developed to monitor fisheries resources. To monitor the presence and quantity of C. pallasii from environmental DNA (eDNA) extracted from seawater samples, a pair of primers and a TaqMan® probe specific to this fish based on mitochondrial cytochrome b (COB) sequences were designed for the real-time PCR (qPCR) assay. The combination of our molecular markers showed high specificity in the qPCR assay, which affirmed the success of presenting a positive signal only in the C. pallasii specimens. The markers also showed a high sensitivity for detecting C. pallasii genomic DNA in the range of 1 pg~100 ng rxn-1 and its DNA plasmid containing COB amplicon in the range of 1~100,000copies rxn-1, which produced linear standard calibration curves (r2=0.99). We performed a qPCR assay for environmental water samples obtained from 29 sampling stations in the southeastern coastal regions of South Korea using molecular markers. The assay successfully detected the C. pallasii eDNA from 14 stations (48.2%), with the highest mean concentration in Jinhae Bay with a value of 76.09±18.39 pg L-1 (246.20±58.58 copies L-1). Our preliminary application of molecular monitoring of C. pallasii will provide essential information for efficient ecological control and management of this valuable fisheries resource.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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