A system using a personal computer has been developed for Polymerase Chain Reaction, an amplifying process of specific DNA. This system is composed of software and hardware which contains a control system, a heating and cooling system, a multichannel A/D converter, and a personal computor. The software is programmed'in assembly'and basic language. The newly developed PCR system which is controlled by the program of the personnal computor can be applied 1.o the amplification of various DNA. This system was tested by using Mycobacterium tuberculosis DNA and showed the DNA band on the UV transilluminator.
Salmonellosis is a highly contagious bacterial disease that threatens both human and poultry health. Tests that can detect Salmonella in the field are urgently required to facilitate disease control and for epidemiological investigations. Here, we combined loop-mediated isothermal amplification (LAMP) with a chromatographic lateral flow dipstick (LFD) to rapidly and accurately detect Salmonella. LAMP primers were designed to target the Salmonella invA gene. LAMP conditions were optimized by adjusting the ratio of inner to outer primers, $MgSO_4$ concentration, dNTP mix concentration, amplification temperature, and amplification time. We evaluated the specificity of our novel LAMP-LFD method using six Salmonella species and six related non-Salmonella strains. All six of the Salmonella strains, but none of the non-Salmonella strains, were amplified. LAMP-LFD was sensitive enough to detect concentrations of Salmonella enterica subsp. enterica serovar Pullorum genomic DNA as low as $89fg/{\mu}l$, which is 1,000 times more sensitive than conventional PCR. When artificially contaminated feed samples were analyzed, LAMP-LFD was also more sensitive than PCR. Finally, LAMP-LFD gave no false positives across 350 chicken anal swabs. Therefore, our novel LAMP-LFD assay was highly sensitive, specific, convenient, and fast, making it a valuable tool for the early diagnosis and monitoring of Salmonella infection in chickens.
This study was performed to find out the reasonable sexing methods In the chicken, obtain the basic information for the mechanisms related to chicken sexual differentiation and identify the genes which known to involved in chicken sex differentiation. The chromosome analysis of chicken embryonic fibroblast was a simple method to determine sex of chicken by means of Z and W chromosome identification. The bands of female chicken genomic DNA digested with Xho Ⅰ and Eco RI restriction endonuclease showed to be useful in direct sex determination and these repetitive sequences of Xho Ⅰ and Eco RI families were proposed to be very homologous in their sequences by colony hybridization analysis. Seven of 150 random primers were selected to amplify the W chromosome-specific band by using arbitrary primed PCR and three of them were useful to identify the sex of chicken. To identify the sex differentiation genes in the chicken, PCR for the amplification of ZFY and SRY sequences was performed. ZFY and SRY sequences were amplified successfully in the chicken genome, implying that chicken genome might have the sex-related conserved sequences similar to mammalian ones. The PCR products of ZFY amplification were the same in both sexes, suggesting that these sequences may be located on autosome or Z chromosome. The profile of PCR amplification for SRY sequences showed variation between sexes, but this result was not enough to specify whether the SRY gene in chicken is on the autosome or sex chromosome.
In this study, a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) assay was developed for the rapid, sensitive, and inexpensive detection of nervous necrosis virus (NNV) in olive flounder, Paralichthys olivaceus, in Korea. A set of six specific primers was designed to target the RNA 2 gene encoding the coat protein of Korean NNV strains. The RT-LAMP reaction successfully detected NNV after 30 min at $65^{\circ}C$. When the sensitivities among RT-LAMP, RT-PCR, and nested RTPCR were compared, the RT-LAMP was shown to be able to detect the RNA template at $2.58{\times}10^{-2}\;TCID_{50}/ml$, whereas the RT-PCR and nested RT-PCR were only able to detect the RNA template at $2.58{\times}10^2\;TCID_{50}/ml$ and $2.58TCID_{50}/ml$, respectively. Thus, the sensitivity of the RT-LAMP assay was higher than those of the RT-PCR assays. In the specificity test of the RT-LAMP, 2 genotypes of NNVs (SJNNV and RGNNV) were positive; however, no other fish viruses were positive with the primers, indicating that the RT-LAMP assay is only specific to NNV. A total of 102 olive flounder were collected from hatcheries between 2009 and 2011. The occurrence of NNV in olive flounder was determined to be 53.9% (55/102) by the RT-LAMP. On the other hand, the prevalence based on the nested RT-PCR and RT-PCR results was 33.8% (34/102) and 20.6% (21/102), respectively. This result indicates that the RT-LAMP assay developed in this study is suitable for early field diagnosis of NNV with high sensitivity.
It is very important to differentiate of DNA derived from live or dead bacteria within mixed microbial communities in aquatic environments. Ethidium monoazide (EMA) is a DNA intercalating agent and the treatment of EMA with strong visible light cleaves the genomic DNA of bacteria. In dead bacterial cells, EMA intercalates into the genomic DNA, induces the cleavage of DNA, and inhibits the PCR amplification. In this study, we developed the EMA-PCR and EMA real-time PCR to detect the DNA derived from viable Escherichia coli (E.coli) in mixed cultures of live and dead E.coli. The treatment of EMA, $50{\mu}g/mL$, and 650 W visible halogen light exposure for 2 minutes cleaved the genomic DNA derived from heat killed E.coli but did not those of live E.coli. EMA-PCR could detect the DNA from live E.coli in mixed culture samples of live and dead E.coli at various ratio and there was no DNA amplification in only dead E.coli cultures. Similar results were observed in EMA real-time PCR. Further studies are needed to develop various EMA-PCR methods to detect viable waterborne pathogens such as Helicobacter pylori, Giardia lamblia, and so on.
The polymerase chain reaction (PCR) amplification technique was used for comparison of Listeria monocytogenes serotypes. PCR primers for the fragment of invasion-associated protein (iap) gene were highly specific for all the serotypes of L. monocytogenes. Other Listeria spp., such as Listeria ivanovii and Listeria innocua were not produced the PCR fragments by above primer set. The nucleotide sequences of PCR products showed high homologies in comparison of all the isolated serotypes except unknown type II-2. The deduced amino acid sequences of the PCR products also showed similar to one another. The various region of the PCR products, called a Thr-Asn repeat region was presented. All of isolated L. monocytogenes serotypes possessed 16 to 20 Thr-Asn repeats.
We developed a simple and rapid method for detecting vancomycin resistance genes, such as vanA and vanB, using loop-mediated isothermal amplification (LAMP). To identify not only vancomycin resistance genes, but also the genus Enterococcus, primers were designed for vanA, vanB, and 16S rRNA. Screening for vancomycin susceptibility in Enterococcus was performed using Etest (bioMérieux Inc). The results of the LAMP assay were compared to those of real-time RT-PCR. The optimal conditions for the LAMP assay were 65℃ for 60 min. The detection limits of the LAMP assay for vanA, and vanB were 2 × 102 copies/reaction. Compared to RT-PCR, the sensitivities and specificities of LAMP for 16S rRNA, vanA, and vanB were 100/100%, 100/100%, and 100/100%, respectively. The vanA genotype-vanB phenotype accounted for 57.5% (46/80) of the vancomycin-resistant Enterococci samples collected from 2016 to 2019. In conclusion, the LAMP assay developed in this study showed high sensitivity and specificity for vancomycin-resistant genes. Moreover, due to the simplicity and rapidity of the LAMP assay, its use can be very useful in clinical microbiology laboratories.
Salmonella is a common zoonotic and foodborne pathogen that causes high morbidity and mortality in developing countries. In this study, we established and validated a polymerase spiral reaction (PSR) assay which targeted the conserved invasion gene (invA) of Salmonella by SYBR Green I indicator methods. Subsequently, assays for determination of the optimal conditions for optimal specificity and sensitivity of PSR were performed. We performed comprehensive evaluations using loop-mediated isothermal amplification (LAMP) and real-time PCR. A total number of 532 samples of daily food were analyzed by PSR. Twenty-seven bacterial strains were tested in the specificity assay, from which positive results were obtained only for 14-Salmonella strains. However, none of the 13 non-Salmonella strains was amplified. Similarly with LAMP and real-time PCR, the detection limit of the PSR assay was 50 CFU/ml. The PSR method was also successfully applied to evaluate the contamination with Salmonella in 532 samples of daily food, corroborating traditional culture method data. The novel PSR method is simple, sensitive, and rapid and provides new insights into the prevention and detection of foodborne diseases.
A copy number amplification system for yeast artificial chromosomes (YACs) was combined with simultaneous overexpression of genes integrated into a YAC. The chromosome VII (1,105 kb) was successfully split to 887 kb, 44 kb containing the element for copy number amplification, and a 184-kb split-YAC. The 44-kb split-mini YAC was amplified a maximum of 9-fold, and the activity of the reporter enzymes integrated into the split-mini YAC increased about 5-7-fold. These results demonstrate that the mini-YAC containing a targeted chromosome region can be readily amplified, and the specific genes in the mini-YAC could be overexpressed by increasing the copy number.
Tabarestani, Sanaz;Ghaderian, Sayyed Mohammad Hossein;Rezvani, Hamid
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.16
no.17
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pp.7997-8002
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2015
Gene amplification is an important mechanism in the development and progression of cancer. Currently, gene amplification status is generally determined by in situ hybridization (ISH). Multiplex ligation-dependent probe amplification (MLPA) is a PCR-based method that allows copy number detection of up to 50 nucleic acid sequences in one reaction. The aim of the present study was to compare results for HER2, CCND1, MYC and ESR1 gene amplification detected by MLPA with fluorescent in situ hybridization (FISH) and chromogenic in situ hybridization (CISH) as clinically approved methods. Tissue samples of 170 invasive breast cancers were collected. All were ER positive. Tissue samples had previously been tested for HER2 using immunohistochemistry. Amplification of the selected genes were assessed using MLPA, FISH and CISH and results were compared. HER2 MLPA and ISH results were also compared with HER2 immunohistochemistry (IHC) which detects protein overexpression. Amplification of HER2, CCND1, MYC and ESR1 by MLPA were found in 9%, 19%, 20% and 2% of samples, respectively. Amplification of HER2, CCND1, MYC and ESR1 by FISH was noted in 7%, 16%, 16% and 1% of samples, respectively. A high level of concordance was found between MLPA/FISH (HER2: 88%, CCND1: 88%, MYC: 86%, ESR1: 92%) and MLPA/CISH (HER2: 84%). Of all IHC 3+ cases, 91% were amplified by MLPA. In IHC 2+ group, 31% were MLPA amplified. In IHC 1+ group, 2% were MLPA amplified. None of the IHC 0 cases were amplified by MLPA. Our results indicate that there is a good correlation between MLPA, IHC and ISH results. Therefore, MLPA can serve as an alternative to ISH for detection of gene amplification.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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