Twenty-four Vibrio strains were isolated from imported frozen seafoods and identified according to their physiological and biochemical properties. They included two V cholerae non-01 sp., two V. diazotrophicus sp., one V. hollisae sp., five V. natriegens sp., eight V. fluvialis sp., and four V. nereis sp.. Two of them were not identified as Vibrio species. When these strains were tested using API-2OE kit fur identification, however, only the results for two V. cholerae and five of the V. fluvialis strains matched the results obtained previously. Due to the importance of detecting V cholerae from foods, phylogenetic identification of the strains was attempted based on restriction fragment length polymorphism (RFLP) of the 16S rDNAs amplified by PCR. The results suggested that the two strains had identical RFLP patterns which were more closely related to that of V. proteolyticus than V. cholerae. The problems associated with identification of pathogens originated from seafoods demand development of accurate and rapid identification methods.
역전사 중합효소 연쇄반응(RT-PCR)을 이용하여 담배(Nicotiana glutinosa)에 증식시킨 7종의 오이 모자이크 바이러스(CMV)를 검정하였다. RT-PCR을 위한 간단하고 신속한 바이러스 핵산의 조즙액 추출법이 개발되었으며, CMV 외피단백질 유전자 부위를 기초로 하여 제작한 20개의 염기로 구성된 primer를 사용하여 RT-PCR을 실시한 결과, 약 490 염기쌍의 DNA 단편들이 이병식물의 조즙액으로부터 증폭되었다. EcoRI 및 MspI을 이용한 RT-PCR 산물의 분석에 의하여, 공시한 7종의 바이러스는 모두 CMV subgroup I으로 동정되었다. Ouchterlony 한천젤 이중 확산법을 이용한 항혈청 검정에서도 7종의 바이러스 모두 CMV-Y의 항혈청과 단일의 침강선을 형성하였다.
Botrytis cinerea, gray mold pathogen, causes serious losses in greenhouse tomato crop. In this study, a primer set was developed for identification and specific PCR detection of B. cinerea from tomato plants. The primer pair (BTF1/BTR1) was designed from polymorphic sequence region in pyruvate carboxylase gene (pyc) of B. cinerea. A PCR product (112 bp) was amplified on genomic DNA of 13 B. cinerea isolates from 10 different host plants, but not on those from 6 other Botrytis spp., 4 Botryotinia spp., 5 Sclerotinia spp. and 16 other genus of phytopathogenic fungi. The sensitivity limit of the primer set was 2 pg of genomic DNA of B. cinerea, approximately. The PCR assay using species-specific primer set was specifically able to detect the pathogen on naturally infected tomato plants and artificially infected plants. These results suggest that the sensitivity and specificity of this primer set can be applied in a rapid and accurate diagnosis of tomato disease caused by B. cinerea.
This study was performed for the identification of Streptococcus sp. from cultured flounders (Paralichthys olivaceus) showing streptococcosis in the Jeju island. We isolated 10 strains of Streptococcus iniae from the cultured olive flounders with streptococcosis. Isolated strains were identified in S. iniae since they have formed the expected band through performing PCR assay using specific primers, Sin-1 (5'-CTAGAGTACACATGTACT(AGCT)AAG-3') and Sin-2 (5'-GGATTTTCCACTCCCATTAC-3'). In addition to 16S-23S rRNA intergenic spacers (ISR), operon structure of isolated strains showed that all strains had three 16S-23S rRNA ISR band patterns. The 16S-23S rRNA ISR sequence of isolated strains showed 96% sequence identity with S. iniae (GenBank accession number AF 048773). This paper is the first report that S. iniae is associated with streptococcosis of Olive flounder in Korea.
Molecular typing of Bacillus anthracis has been extremely difficult due to the lack of polymorphic DNA markers. Aiming to develop a DNA marker specific for Bacillus anthracis and to be able to discriminate this species from Bacillus genus, we applied the random amplified polymorphic DNA (RAPD)-PCR. We have identified B. anthracis from various Bacillus species. The analysis performed by RAPD clearly demonstrated substantial genetic variations among Bacillus species. This type of analysis is an easy, quick and highly discriminatory technique that may help in diagnosis of anthrax.
본 연구에서는 돼지 로타바이러스의 혈청형 A, B 및 C를 동시에 진단할 수 있는 RT-PCR 기법을 개발하였다. 각각의 혈청형에 특이적인 primer를 이용하여 RT-PCR 기법으로 분변시료에서 직접 바이러스 동정을 실시한 결과, 23건의 로타바이러스 감염 분변 시료에서 13건이 혈청형 A, 3건이 혈청형 B, 2건이 혈청형 C로 나타나 국내에서도 A, B 및 C형의 돼지 로타바이러스가 공히 발생하고 있음을 확인하였으며, 발생분포는 외국의 예와 유사하였다. 이 RT-PCR기법은 돼지 로타바이러스의 주요 혈청형인 A, B 및 C형의 동시감별진단법으로 이용될 수 있을 것으로 판단된다.
Monthly variation of species composition and abundance of fish eggs were examined to know the spawning time and location of the fishes inhabiting the coastal region of Jejudo Island. Samplings had been performed at the four locations (Jeju port, Seongsanpo, Seogwipo port and Chagwido) with a bongo net which was towed monthly at the sea surface from August 2006 to July 2007. The fish eggs were identified based on phylogenetic analyses with the DNA sequences generated through PCR-amplification and sequencing of the mitochondrial cytochrome b gene. Among a total of 43 taxa classified during the study period, 34 were identified to species, 4 to families, and the remaining 5 were unidentified. Of them, 23 taxa were occurred at Jeju port, 21 at Seongsanpo, 19 at Seogwipo port and 18 at Chagwido, whereas 15 taxa were found in September 2006, 12 in June 2007, 6 to 8 in August 2006 and January~May 2007, 5 in each October and November 2006, 3 in each December 2006 and July 2007. Among 34 species of fish eggs, Engraulis japonicus and Callanthias japonicus most frequently appeared at 16 times out of 48 observations in total. When those eggs were collected, the surface seawater temperature ranged $14.0{\sim}28.6^{\circ}C$ for E. japonicus and $14.9{\sim}20.5^{\circ}C$ for C. japonicus. The success rates of PCR-amplification and species identification in this study were 68.3% and 79.1%, respectively.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.39
no.4
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pp.595-601
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2010
This study was conducted to detect and identify Staphylococcus aureus, Vibrio parahaemolyticus, and Salmonella enterica subsp. using simultaneous multiplex polymerase chain reaction (multiplex PCR) assay. 23S rRNA partial gene (S. aureus), tox R gene (V. parahaemolyticus), and inv A gene (S. enterica subsp.) as diagnostic marker gene were suggested, and their amplicon sizes were 482 bp, 368 bp, and 284 bp, respectively. Non specific amplicons by STA-5F/STA-5R primer, ToxR-F/ToxR-R primer, and 139/141 primer were not observed in genomic DNA of pathogen bacteria as Bacillus cereus, Listeria monocytogenes, Escherichia coli, Proteus vulgaris, Streptococcus pyogenes, Candida albicans, and Shigella sonnei. The extracted crude DNA of targeted bacteria was detected as PCR template successfully. The detection limits were $10^5\sim10^4$ CFU/mL and 10 pg of purified genomic DNA of S. aureus, V. parahaemolyticus, and S. enterica subsp. by using simultaneous multiplex PCR.
Eukaryotic gene expression is an important process, which is initiated by several transcription factors and RNA polymerases that occupy the promoter region of genomic DNA. Although there are many experiments to identify the promoter region in a gene, it is time and labor consuming to finalize it. In this study, we utilized bioinformatic programs, including Ensembl, NCBI, and CpG plots, to identify the cloning promoter region in SETDB1 genomic DNA. We performed PCR amplification to obtain the SETDB1 promoter on an approximately 2 kb region upstream from the TSS named SETDB1-P1. The PCR product was ligated with TA cloning vectors, and we confirmed the insert size using restriction enzyme digestion. Sequentially, the insert was subcloned into a pGL3-luc vector to produce pGL3-SETDB1- P1-luc and then confirmed by DNA sequencing. We also obtained a fragmented PCR product called P2 and P3 and performed a luciferase assay using pGL3-SETDB1-P1-luc transfection. We found that several anticancer drugs, including taxol, 4-FU, and doxorubicin, decreased the promoter activity of SETDB1. We obtained consistent data on the regulation of SETDB1 gene expression after anticancer drug treatment using Western blot analysis and RT-PCR. Our results suggest that promoter cloning of the human SETDB1 gene utilizing bioinformatics is a very useful and timesaving approach to study gene expression.
The authentication and implications of misleading labeling in milk and dairy products is important to protect against cheating consumers from adulteration and to alert sensitive consumers to any undeclared potential allergens. This need to support milk and dairy products labeling has led to the development of specific analytical techniques for the analysis of milk and dairy products ingredients. Recently, several methods based on polymerase chain reaction (PCR), including restriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP), multiplex PCR, species-specific PCR, and real-time PCR, have been proposed as useful means for identifying species of origin in milk and dairy products, as well as quantifying and detecting any adulteration. These methods have particular advantages owing to their high specificity and sensitivity, as well as rapid processing time. In this review, we provide an updated and extensive overview of the PCR-based methods used for milk and dairy products authentication with a particular focus on the application of PCR methods to detect adulteration.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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