The present study investigated neuroprotective effects Rehmanniae Radix on PC12 cells and hippocampal neural cells. PC12 cells were damage by $H_2O_2$ and nitric oxide and organotypic hippocampal slice cultures were damaged by oxygen-glucose deprivation. Then methanol extract of Rehmanniae Radix was treated with 0.5, 5, and $50\;{\mu}g/ml$ in culture media. Effects of Rehmanniae Radix were evaluated with cell viability assay, PI-staining, and TUNEL-labeling. Treatment of Rehmanniae Radix ($with\;5\;and\;50\;{\mu}g/ml$) produced significant increase of cell viability of PC12 cells damaged by $H_2O_2$ and by SNP-induced nitric oxide. Treatment of Rehmanniae Radix produced significant decrease of PI-uptake % in CA1 ($with\;5\;and\;50\;{\mu}g/ml$) and DG ($with\;50\;{\mu}g/ml$) regions of organotypic hippocampal slice cultures damaged by oxygen-glucose deprivation. Moreover, treatment of Rehmanniae Radix produced significant decrease of TUNEL- positive cells in CA1 ($with\;5\;and\;50\;{\mu}g/ml$) and DG ($with\;50\;{\mu}g/ml$) regions of organotypic hippocampal slice cultures damaged by oxygen-glucose deprivation. These results suggest that methanol extract of Rehmanniae Radix has neuroprotective effects on PC12 cells damaged by oxidative stress and on organotypic hippocampal slice cultures damaged by oxygen-glucose deprivation.
The tumor microenvironment, particularly sufficient nutrition and oxygen supply, is important for tumor cell survival. Nutrition deprivation causes cancer cell death. Since apoptosis is a major mechanism of neuronal loss, we explored neuronal apoptosis in various microenvironment conditions employing neuroblastoma (NB) cells. To investigate the effects of tumor malignancy and differentiation on apoptosis, the cells were exposed to poor microenvironments characterized as serum-free, low-glucose, and hypoxia. Incubation of the cells in serum-free and low-glucose environments significantly increased apoptosis in less malignant and more differentiated N-type IMR32 cells, whereas more malignant and less differentiated I-type BE(2)C cells were not affected by those treatments. In contrast, hypoxia (1 % $O_2$) did not affect apoptosis despite cell malignancy. It is suggested that DLK1 constitutes an important stem cell pathway for regulating self-renewal, clonogenicity, and tumorigenicity. This raises questions about the role of DLK1 in the cellular resistance of cancer cells under poor microenvironments, which cancer cells normally encounter. In the present study, DLK1 overexpression resulted in marked protection from apoptosis induced by nutrient deprivation. This in vitro model demonstrated that increasing severity of nutrition deprivation and knock-down of DLK1 caused greater apoptotic death, which could be a useful strategy for targeted therapies in fighting NB as well as for evaluating how nutrient deprived cells respond to therapeutic manipulation.
The effects of adenosine, adenosine A1 receptor antagonist (DPCPX), or NMDA receptor antagonist (APV) on the spontaneous release of $[^3H]-5-hydroxytryptamine$ ($[^3H]-5-HT$) during normoxic/normoglycemic or hypoxic/hypoglycemic period were studied in the rat hippocampal slices. The hippocampus was obtained from the rat brain and sliced $400\;{\mu}m$ thickness with the tissue slicer. After 30 min's preincubation in the normal buffer, the slices were incubated for 30 min in a buffer containing $[^3H]-5-HT$ ($0.1\;{\mu}M,\;74{\mu}Ci/8\;ml$) for uptake, and washed. To measure the release of $[^3H]-5-HT$ into the buffer, the incubation medium was drained off and refilled every ten minutes through sequence of 14 tubes. Induction of glucose/oxygen deprivation (GOD; medium depleting glucose and gassed with 95% $N_2/5%\;CO_2$) was done in 6th and 7th tube. The radioactivities in each buffer and the tissue were counted using liquid scintillation counter and the results were expressed as a percentage of the total radioactivities. When slices were exposed to GOD for 20 mins, the spontaneous release of $[^3H]-5-HT$ was markedly increased and this increase of $[^3H]-5-HT$ release was blocked by adenosine ($10\;{\mu}M$) or DL-2-amino-5-phosphonovaleric acid (APV; $30\;{\mu}M$). Adenosine $A_1$ receptor specific antagonist, 8-cyclopentyl-1,3-dipropylxanthine (DPCPX) exacerbate GOD-induced increase of spontaneous release of $[^3H]-5-HT$. These results suggest that Adenosine may play a role in the GOD-induced spontaneous release of $[^3H]-5-HT$ through adenosine $A_1$ receptor activity.
In several experimental models, estrogens protect neurons against ischemic insults. However, the recent clinical studies of hormone replacement showed negative results to prevent stroke. Therefore, optimal models to study estrogen replacement for neuroprotection are needed before its clinical ap-plication. Organotypic hippocampal slice under oxygen-glucose deprivation (OGD) has been established as a model of cerebral ischemia and has advantages to study drug effects. We investigated whether estrogen protected CAI neurons and affected activation of Akt (pAkt) in CAI region under OGD. Thus, rat hippocampal slices on day 7 of culture were treated with $17-{\beta}$ estradiol (E, 1 nM) for 7 days before 30 min OGD, and cell death of CAI neurons was quantified by propidium iodide (PI) staining and expression of pAkt was studied by Western blot and immunofluorescence. PI intensity in slices treated with E was significantly reduced 72 hour after OGD compared to that of non-treated slices (p < 0.05). E pretreatment also increased the expression of pAkt 72 hour after OGD compared to that of no treatment (p<0.01). These data suggest that estrogen pretreatment may rescue neurons from ischemic insults through the activation of Akt and also indicate that our model would be a useful alternative method to study the mechanisms and effects of estrogen replacement treatment for neuroprotection.
As a component of the neurovascular unit, cerebral smooth muscle cells (CSMCs) are an important mediator in the development of cerebral vascular diseases such as stroke. Epoxyeicosatrienoic acids (EETs) are the products of arachidonic acid catalyzed by cytochrome P450 epoxygenase. EETs are shown to exert neuroprotective effects. In this article, the role of EET in the growth and apoptosis of CSMCs and the underlying mechanisms under oxygen glucose deprivation (OGD) conditions were addressed. The viability of CMSCs was decreased significantly in the OGD group, while different subtypes of EETs, especially 14,15-EET, could increase the viability of CSMCs under OGD conditions. RAPA (serine/threonine kinase Mammalian Target of Rapamycin), a specific mTOR inhibitor, could elevate the level of oxygen free radicals in CSMCs as well as the anti-apoptotic effects of 14,15-EET under OGD conditions. However, SP600125, a specific JNK (c-Jun N-terminal protein kinase) pathway inhibitor, could attenuate oxygen free radicals levels in CSMCs as well as the anti-apoptotic effects of 14,15-EET under OGD conditions. These results strongly suggest that EETs exert protective functions during the growth and apoptosis of CSMCs, via the JNK/c-Jun and mTOR signaling pathways in vitro. We are the first to disclose the beneficial roles and underlying mechanism of 14,15-EET in CSMC under OGD conditions.
Stachys sieboldii Miq. (chinese artichoke), which has been extensively used in oriental traditional medicine to treat of ischemic stroke; however, the role of Stachys sieboldii Miq. (SSM) in cerebral ischemia/reperfusion (I/R) injury is not yet fully understood. In the current study, the neuroblastoma cell line (SH-SY5Y) were subjected to oxygen-glucose deprivation/reperfusion (OGD/R) to simulate I/R injury in vitro model. The results showed that SSM improved OGD/R-induced inhibitory effect on cell viability of SH-SY5Y Cells. SSM displayed anti-oxidative activity as proved by the decreased levels of reactive oxygen species (ROS) and malondialdehyde (MDA), and increased activities of superoxide dismutase (SOD) and glutathione peroxidase (GPx) in OGD/R-induced SH-SY5Y Cells. In addition, cell apoptosis was markedly decreased after SSM treatment in OGD/R-induced SH-SY5Y Cells. The up-regulation of Bcl-2 and down-regulation of Bax, thus reducing the Bax/Bcl-2 ratio that in turn protected the activation of caspase-9 and -3, and inhibition of poly (ADP-ribose) polymerase cleavage, which was associated with the blocking of cytochrome c release to the cytoplasm. Collectively, SSM protected human neuroblastoma SH-SY5Y cells from OGD/R-induced injury via preventing mitochondrial-dependent pathway through scavenging excessive ROS, suggesting that SSM might be a potential agent for the ischemic stroke therapy.
뇌졸중은 전 세계적으로 신경계 장애를 일으키는 주요 원인 중 하나이며, 뇌졸중 환자는 다양한 운동, 인지 및 정신 장애를 나타낸다. GPR88은 orphan G protein coupled receptor이며 striatal medium spiny neurons에서 높게 발현이 되며, GPR88이 결손이 된 경우 motor coordination과 motor learning에 문제가 발생하게 된다. 본 연구에서는 Western blot 및 real-time PCR을 사용하여 허혈성 마우스 모델에서 GPR88 발현이 감소함을 발견 하였다. 또한, 뇌에서 유래한 세 가지 유형의 세포들, 뇌혈관내피세포(brain microvascular endothelial cells), 미세 아교세포(microglial cells) 및 신경 세포들에서 GPR88의 발현정도를 확인한 결과, HT22 신경 세포에서 GPR88의 발현이 가장 높음을 관찰하였고, 뇌졸중과 유사한 실험조건인 oxygen glucose deprivation (OGD) 조건에 배양한 HT22 신경세포에서 GPR88의 발현이 감소하였다. 또한 GPR88 효현제인 RTI-13951-33 (10 mg/kg)을 전처리후에 뇌허혈을 유발하였을 때, infarct volume의 감소, vestibular-motor function 및 neurological score의 개선효과를 관찰할 수 있었다. 이러한 결과는 GPR88이 허혈성 뇌졸중을 포함한 CNS 질환의 치료를 위한 잠재적인 약물표적이 될 수 있음을 제시한다.
Brain ischemia leads to overstimulation of N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptors, referred as excitotoxicity, which mediates neuronal cell death. However, less attention has been paid to changes in synaptic activity and morphology that could have an important impact on cell function and survival following ischemic insult. In this study, we investigated the effects of reperfusion after oxygen/glucose deprivation (OGD) not only upon neuronal cell death, but also on ultrastructural and biochemical characteristics of postsynaptic density (PSD) protein, in the stratum lucidum of the CA3 area in organotypic hippocampal slice cultures. After OGD/reperfusion, neurons were found to be damaged; the organelles such as mitochondria, endoplasmic reticulum, dendrites, and synaptic terminals were swollen; and the PSD became thicker and irregular. Ethanolic phosphotungstic acid staining showed that the density of PSD was significantly decreased, and the thickness and length of the PSD were significantly increased in the OGD/reperfusion group compared to the control. The levels of PSD proteins, including PSD-95, NMDA receptor 1, NMDA receptor 2B, and calcium/calmodulin-dependent protein kinase II, were significantly decreased following OGD/reperfusion. These results suggest that OGD/reperfusion induces significant modifications to PSDs in the CA3 area of organotypic hippocampal slice cultures, both morphologically and biochemically, and this may contribute to neuronal cell death and synaptic dysfunction after OGD/reperfusion.
SERTA domain-containing protein 1 (Sertad1) is upregulated in the models of DNA damage and Alzheimer's disease, contributing to neuronal death. However, the role and mechanism of Sertad1 in ischemic/hypoxic neurological injury remain unclear. In the present study, our results showed that the expression of Sertad1 was upregulated in a mouse middle cerebral artery occlusion and reperfusion model and in HT22 cells after oxygen-glucose deprivation/reoxygenation (OGD/R). Sertad1 knockdown significantly ameliorated ischemia-induced brain infarct volume, neurological deficits and neuronal apoptosis. In addition, it significantly ameliorated the OGD/R-induced inhibition of cell viability and apoptotic cell death in HT22 cells. Sertad1 knockdown significantly inhibited the ischemic/hypoxic-induced expression of p-Rb, B-Myb, and Bim in vivo and in vitro. However, Sertad1 overexpression significantly exacerbated the OGD/R-induced inhibition of cell viability and apoptotic cell death and p-Rb, B-Myb, and Bim expression in HT22 cells. In further studies, we demonstrated that Sertad1 directly binds to CDK4 and the CDK4 inhibitor ON123300 restores the effects of Sertad1 overexpression on OGD/R-induced apoptotic cell death and p-Rb, B-Myb, and Bim expression in HT22 cells. These results suggested that Sertad1 contributed to ischemic/hypoxic neurological injury by activating the CDK4/p-Rb pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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