dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase as an oxidoreductase catalyzes the conversion of dTDP-D-glucose to dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose, which is essential for the formation of 6-deoxysugars. dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase shows remarkable sterochemical convergence in which displacement of the C-6 hydroxyl group by a C-4 hydrogen proceeds intramolecularly with inversion of configuration. The reaction mechanism is known to be oxidation, dehydration, and reduction by bases mediating proton transfer and $NAD^+$ cofactor. In this study, the bases in the active site domain are proposed to be His-79 and His-300 from a comparison of the peptides of the dehydratase and UDP-D-glucose epimerase. His-79 and His-300 were mutated to prepare the mutants H79L (mutation of histidine to leucine at the 79th amino acid) and H300A (mutation of histidine to alanine at the 300th amino acid) by site-directed mutagenesis. The H79L protein was inactive, showing that His-79 participates in the reaction mechanism.
The production of sorbitol by permeabilized cells of Zymomonas mobilis immobilized in $\kappa$-carrageenan was investigated. Cetyltrimethylammoniumbromide (CTAB) permeabilized cells were treated with glutaraldehyde prior to immobilization for cross-linking of enzymes, glucose-fructose oxidoreductase (GFOR) in cells. Rigidity of the immobilized beads was increased two-fold with 90$\%$ conversion efficiency by the additions of 40$\%$ (w/v) polyols (glycerol 25 g + propylene glycol 15 g) to 60$\%$ (w/v) distilled water containing 2.5$\%$ (w/v) $\kappa$-carrageenan as a final concentration, prior to immobilization. $\kappa$-Carrageenan beads entrapping permeabilized cells were dried to improve bead rigidity and storage stability. During s6mi-batch process for 72 h with dry beads, there was an improvement of the loss of enzyme activity (less than 10$\%$). In batch process, the kinetic results of $K_m.fructose$ value for the free cells, wet beads and dry $\kappa$-carrageenan beads were 71.7, 72.4 and 116.7 g/l, respectively. Higher productivity was obtained with two-stage continuous packed bed reactors with both wet and dry $\kappa$-carrageenan beads at 25.00 and 21.15 g/l/h, respectively, when measured at second stage.
Clubroot disease is one of the most wide-spread and devastating diseases in the cultivation of Chinese cabbage. To develop a protein marker for resistance to clubroot disease in Chinese cabbage, a comparative proteome analysis was performed between a sensitive line, 94SK, and a resistant line, CR Shinki DH. Three proteins of two fold or higher accumulation that are specific to each line were found 3 days after innoculation of the Plasmodiphora brassicae. They are glutamine synthetase, malate dehydrogenase/oxidoreductase and fructose-bisphosphate aldolase in the 94SK and actin, phosphoglycerate kinase, and Cu/Zn superoxide dismutase in the CR Shinki line. From the comparison of the synthesized proteins in the 94SK and the CR Shinki, CR Shinki was found to produce more ATP-binding protein for the ABC transporter while 94SK showed a higher level of pathogenesis-related protein 1 production. All of these proteomic variations may lead to the development of molecular markers to accelerate the breeding process.
Kim, Yong-Seok;Song, Hyun-Ouk;Choi, Ik-Hwa;Park, Soon-Jung;Ryu, Jae-Sook
Parasites, Hosts and Diseases
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v.44
no.4
s.140
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pp.373-378
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2006
To evaluate whether iron concentration in TYM medium influence on hydrogenosomal enzyme gene expression and hydrogenosomal membrane potential of Trichomonas vaginalis, trophozoites were cultivated in iron-depleted, normal and iron-supplemented TYM media. The mRNA of hydrogenosomal enzymes, such as pyruvate ferredoxin oxidoreductase (PFOR), hydrogenase, ferredoxin and malic enzyme, was increased with iron concentrations in T. vaginalis culture media, measured by RT-PCR. Hydrogenosomal membrane potentials measured with $DiOC_6$ also showed similar tendency, e.g. T. vaginalis cultivated in iron-depleted and iron-supplemented media for 3 days showed a significantly reduced and enhanced hydrogenosomal membrane potential compared with that of normal TYM media, respectively. Therefore, it is suggested that iron may regulate hydrogenosomal activity through hydrogenosomal enzyme expression and hydrogenosomal membrane potential.
Xenobiotics and their reactive intermediates bind to cellular macromolecules and/or generate oxidative stress. which provoke deleterious effects on the cell function. Induction of xenobiotic-biotrans-forming enzymes and antioxidant molecules is an important defense mechanism against such insults. A group of genes involved in the defense mechanism. e.g. genes encoding glutathione S-transferases. NAD(P)H: quinone oxidoreductase, UDP-glucuronosyltransferase (UDP-GT) and ${\gamma}$-glutamylcysteine synthetase (GGCS). have a common regulatory sequence, Antioxidant or Electrophile Responsive Element (ARE/EpRE). Recently. Nrf2. discovered as a homologue of erythroid transcription factor p45 NF-E2, was shown to bind ARE/EpRE and induce the expression of these defense genes. Mice that lack Nrf2 show low basal levels of expression and/or impaired induction of these genes. which makes the animals highly sensitive to xenobiotic toxicity. Indeed. we show here that nrf2-deficient mice had a higher mortality than did the wild-type mice when exposed to acetaminophen (APAP). Detailed analyses of APAP hepatotoxicity in the nrf2 knockout mice indicate that a large amount of reactive APAP metabolites was generated in the livers due to the impaired basal expression of two detoxifying enzyme genes, UDP-GT (Ugt1a6) and GGCS. while the cytochrome P450 content was unchanged. Thus. the studies using the nrf2 knockout mice clearly demonstrate significance of the expression of Nrf2-regulated enzymes in protection against xenobiotic toxicity.
Metabolic flux analysis was established by adapting previous stoichiometric model developed during growth with cellulose to cell grown with cellobiose for further direct comparison of the bacterial metabolism. In carbon limitation with cellobiose, a shift from acetate-ethanol fermentation to ethanol-lactate fermentation is observed and the pyruvate overflow is much higher than with cellulose. In nitrogen limitation with cellobiose, the cellodextrin and exopolysaccharide overflows are much higher than on cellulose. In carbon and nitrogen saturation with cellobiose, the cellodextrin, exopolysaccharide, and free amino acids overflows reach the highest levels observed but all remain limited on cellulose. By completely shunting the cellulosome, the use of cellobiose allows to reach much higher carbon consumption rates which, in return, highlights the metabolic limitation of C. cellulolyticum. Therefore, the physical nature of the carbon source has a profound impact on the metabolism of C. cellulolyticum and most probably of other cellulolytic bacteria. For cellulolytic bacteria, the use of soluble carbon substrate must carefully be taken into consideration for the interpretation of results. Direct comparison of metabolic flux analysis from cellobiose and cellulose revealed the importance of cellulosome, phosphoglucomutase and pyruvate-ferredoxin oxidoreductase in the distribution of carbon flow in the central metabolism. In the light of these findings, future directions for improvement of cellulose catabolism by this bacterium are discussed.
Methanol assimilating yeast, Hansenula sp. MS-364 that has high productivity with methanol as carbon and energy source has been preserved at dept. of Microbiological engineering. Purification and properties of alcohol oxidase (E.C.1.1.3.13: oxygen oxidoreductase) were investigated in the methanol assimilating yeast, Hansenula sp. MS-364. Alcohol oxidase is related to the catalytic reaction that degrades alcohol to aldehyde and peroxide. The methanol oxidizing enzyme was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sephadex A-50 chromatography and gel filtration on Sepharose 6B from cell-free extract. The purified enzyme preparation gave a single band in the sodium dodesyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The molecular weight of the enzyme was calculated to be about 576,000 and molecular weight of subunit was also calculated to be 72,000. The optimal pH and temperature of the enzyme reaction were pH 7.5 and 37$\circ$C, respectively. The enzyme was unstable in acidic pH and higher temperature. The enzyme was not specific for methanol and also oxidized lower primary alcohols. The Km value for methanol was 2.5 mM and that for ethanol was 1.66 mM. The enzyme was heavily inhibited by metal ions such as Hg$^{2+}$, Ag$^{2+}$, Cu$^{2+}$. The high concentration of EDTA and sulfhydryl reagents strongly inhibited the enzyme activity. The component of coenzyme was determined to flavin adenine dinucleotide.
Pseudomonas sp. K82 cultured in p-hydroxybenzoate induces protocatechuate 4,5-dioxygenase (PCD 4,5) for p-hydroxybenzoate degradation. In this study, a 6.0-kbp EcoR1 fragment containing p-hydroxybenzoate degradation genes was cloned from the genome of Pseudomonas sp. K82. Sequence analysis identified four genes, namely, pcaD, pcaA, pcaB, and pcaC genes known to be involved in p-hydroxybenzoate degradation. Two putative 4-hydroxyphenylpyruvate dioxygenases and one putative oxidoreductase were closely located by the p-hydroxybenzoate degradation genes. The gene arrangement and sequences of these p-hydroxybenzoate degradation genes were similar to those of Comamonas testosteroni and Pseudomonas ochraceae. PcaAB (PCD4,5) was overexpressed in the expression vector pGEX-4T-3, purified using a GST column, and confirmed to have protocatechuate 4,5-dioxygenase activity. The N-terminal amino acid sequences of overexpressed PCD4,5 were identical with those of purified PCD4,5 from Pseudomonas sp. K82.
A novel psychrotolerant Psychrobacillus strain PB01, isolated from an Antarctic iceberg, was comparatively analyzed with five related strains. The complete genome of strain PB01 consists of a single circular chromosome (4.3 Mb) and a plasmid (19 Kb). As potential low-temperature adaptation strategies, strain PB01 has four genes encoding cold-shock proteins, two genes encoding DEAD-box RNA helicases, and eight genes encoding transporters for glycine betaine, which can serve as a cryoprotectant, on the genome. The pan-genome structure of the six Psychrobacillus strains suggests that strain PB01 might have evolved to adapt to extreme environments by changing its genome content to gain higher capacity for DNA repair, translation, and membrane transport. Notably, strain PB01 possesses a complete TCA cycle consisting of eight enzymes as well as three additional Helicobacter pylori-type enzymes: ferredoxin-dependent 2-oxoglutarate synthase, succinyl-CoA/acetoacetyl-CoA transferase, and malate/quinone oxidoreductase. The co-existence of the genes for TCA cycle enzymes has also been identified in the other five Psychrobacillus strains.
Biofuel production using lignocellulosic biomass is gaining attention because it can be substituted for fossil fuels without competing with edible resources. However, because Saccharomyces cerevisiae does not have a ${\text\tiny{D}}$-xylose metabolic pathway, oxidoreductase or isomerase pathways must be introduced to utilize ${\text\tiny{D}}$-xylose from lignocellulosic biomass in S. cerevisiae. To elucidate the biochemical properties of xylose isomerase (XI) from Piromyces sp. E2 (PsXI), we determine its crystal structure in complex with substrate mimic glycerol. An amino-acid sequence comparison with other reported XIs and relative activity measurements using five kinds of divalent metal ions confirmed that PsXI belongs to class II XIs. Moreover kinetic analysis of PsXI was also performed using $Mn^{2+}$, the preferred divalent metal ion for PsXI. In addition, the substrate-binding mode of PsXI could be predicted with the substrate mimic glycerol bound to the active site. These studies may provide structural information to enhance ${\text\tiny{D}}$-xylose utilization for biofuel production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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