Bacterial infections in the female reproductive tract negatively affect ovarian function, follicular development, and embryo development, leading to the eventual failure of fertilization. Moreover, bacterial lipopolysaccharides (LPS) can interfere with the immune system and reproductive system of the host animal. Therefore, this study examined the effect of LPS on the in vitro maturation (IVM) of pig oocytes. Oocytes were matured in TCM199 medium in the presence of varying concentrations of LPS (0 - 50 ㎍·mL-1). The maturation rate, cortical granules (CGs) migration, and chromosome alignment were subsequently evaluated during the meiotic development of the oocytes. We observed a dose-dependent and significant decrease in the metaphase II (MII) rate with increasing concentrations of LPS (97.6% control [0 ㎍·mL-1 LPS] vs. 10.4-74.9% LPS [1 - 50 ㎍·mL-1], p < 0.05). In addition, compared to the control oocytes without LPS, higher levels of abnormal CGs distribution (18.1 - 50.0% LPS vs. 0% control), chromosome/spindle alignment (20.3 - 56.7% LPS vs. 0% control), and intracellular ROS generation were observed in oocytes matured with LPS (p < 0.05). Nitrite levels were also increased in the maturation medium derived from the oocytes matured with LPS (p < 0.05). These results indicate that LPS induces oxidative stress during IVM and affects oocyte maturation, including CGs migration and chromosome alignment of pig oocytes.
Park, Ji Eun;Lee, Seung Tae;Lee, Geun-Shik;Lee, Eunsong
Journal of Animal Reproduction and Biotechnology
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v.37
no.1
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pp.34-41
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2022
In vivo oocytes grow and mature in ovarian follicles whereas oocytes are matured in vitro in plastic culture dishes with a hard surface. In vivo oocytes show a superior developmental ability to in vitro counterparts, indicating suboptimal environments of in vitro culture. This study aimed to evaluate the influence of an agarose matrix as a culture substrate during in vitro maturation (IVM) on the development of pig oocytes derived from small antral follicles (SAFs). Cumulus-oocyte complexes (COCs) retrieved from SAFs were grown in a plastic culture dish without an agarose matrix and then cultured for maturation in a plastic dish coated without (control) or with a 1% or 2% (w/v) agarose hydrogel. Then, the effect of the soft agarose matrix on oocyte maturation and embryonic development was assessed by analyzing intra-oocyte contents of glutathione (GSH) and reactive oxygen species (ROS), expression of VEGFA, HIF1A, and PFKP genes, and blastocyst formation after parthenogenesis. IVM of pig COCs on a 1% (w/v) agarose matrix showed a significantly higher blastocyst formation, intra-oocyte GSH contents, and transcript abundance of VEGFA. Moreover, a significantly lower intra-oocyte ROS content was detected in oocytes matured on the 1% and 2% (w/v) agarose matrices than in control. Our results demonstrated that IVM of SAFs-derived pig oocytes on a soft agarose matrix enhanced developmental ability by improving the cytoplasmic maturation of oocytes through redox balancing and regulation of gene expression.
Objective: To investigate the effects of female age on in vitro maturation and fertilization of immature oocytes from controlled ovarian hyperstimulation (COH) in human IVF-ET program. Method: A total of 96 immature oocytes (GV & metaphase I) obtained from 40 cycles of IVF-ET (29 patients). The mean age of female patients was $31.8{\pm}3.1years$. Ovulation was triggered by urinary or recombinant hCG. Immature oocytes were cultured with YS medium containing 30% of patients' human follicular fluids, LH (1 IU/mL), FSH (1 IU/mL) and EGF (10 ng/mL), and then matured oocytes were fertilized by ICSI. In vitro maturation and fertilization of immature oocytes were analyzed according to age of female (< 34 or ${\geq}34years$). Results: The maturation rate was similar between two groups (68% vs 64%). The fertilization rate of in?vitro-matured oocytes was higher in patients < 34 years old, but there was no statistical significance (64% vs 50%, p=0.347). The fertilization rate of in-vitro-matured oocytes was significantly lower compared with those of in-vivo-matured oocytes in both age groups (64% vs 79%, p=0.035, 50% vs 86%, p=0.007). Conclusion: In older female group, fertilization rate of in-vitro-matured oocytes seems to be decreased. Further investigations should be warranted to increase fertilization potential of in-vitro-matured oocytes.
The gonadosomatic index (GSI), fatness, ovarian development, first sexual maturity, and fecundity of the Korean anchovy Coilia nasus were investigated by histological observations and morphometric analysis from January to December, 2007. The GSI and fatness began to increase in February, and reached the maximum in June when the ovary was getting mature and spawning occurred. Thereafter these parametes rapidly decreased in July when spawning occurred. Therefore, monthly changes in the GSI and fatness were closely related to ovarian maturation and spawning. The duration of ovarian development in females can be classified into five successive stages: early growing stage (February to March), late growing stage (March to April), mature stage (May to June), ripe and spent stage (June to July), and recovery and resting stage (December to January). Maturation and spawning of this species occurred between June and July during the period of high seawater temperature-long day length. Percentages of first sexual maturity in female individuals were over 50% for fish ranging 24.1 to 27.0 cm in total length, and 100% for fish over 30.1 cm in total length. The number of total eggs and mature eggs in the absolute fecundity were increased with the increase of total length and body weight, respectively. The number of total eggs and mature eggs in relative fecundity were also proportional to total length, but rather these numbers decreased in the maximum body weight (126.0${\sim}$150.0 g).
Objective: During stimulated IVF cycles, up to 15% of oocytes are recovered as immature. The purpose of this study was to investigate the trend of oocyte maturity in repeated ovarian stimulation for IVF. Methods: One hundred forty-eight patients were selected who underwent two consecutive IVF cycles using same stimulation protocol during 2008 to 2010. Ovarian stimulation was performed with FSH and human menopausal gonadotropin and flexible GnRH antagonist protocol in both cycles. Oocyte maturity was assessed according to presence of germinal vesicle (GV) and the first polar body. Immature oocyte was defined as GV stage or metaphase I oocyte (GV breakdown with no visible polar body) and cultured up to 48 hours. If matured, they were fertilized with ICSI. Results: Percentages of immature oocytes were 30.8% and 32.9% ($p$=0.466) and IVM rates of immature oocytes were 36.2% and 25.7% ($p$=0.077), respectively. A significant correlation was noted between percentage of immature oocytes in the two cycles (R=0.178, $p$=0.03). Women with >40% immaturity in both cycles (n=21) showed lower fertilization rate of $in$$vivo$ matured oocytes (56.4% vs. 72.0%, $p$=0.005) and lower pregnancy rate (19.0% vs. 27.1%, $p$=0.454) after the second cycle when compared with women with <40% immaturity (n=70). In both groups, female age, number of total retrieved oocyte and embryos transferred were similar. Conclusion: In repeated ovarian stimulation cycles for IVF, the immature oocyte tended to be retrieved repetitively in consecutive IVF cycles.
Supplementation of maturation medium with additional granulosa cells has beneficial effect on in vitro maturation of bovine follicular oocytes and their subsequent cleavage and development in vitro. However, maturation system using granulosa cells have some disadvantages that collection of granulosa cells is cumbersome and metabolic activity of the cells is variable according to ovarian cycle or follicular size. We hypothesized that bovine immsture oocytes matured without granulosa cell coculture can fertilize and develop normally if the medium volume per oocyte is reduced during in vitro maturation. Immature oocytes were matured for 24 hours in a TCM199 containing 10% fetal calf serum, anterior pitultary hormone (0.02 AU /ml Antrinⓡ) and estradiol with or without granulosa cells in vitro. In Group 1, 35 to 40 oocytes were matured in a well of 4-well plastic dish containing 500 $\mu$l of maturation medium and granulosa cells, and 9 to 10 oocytes were matured in a 50-$\mu$l drop of maturation medium without granulosa cells in Group 2. After maturation, oocytes were coincubated with sperm for 30 hours in a modified Tyrode's medium (IVF). Inseminated oocytes were cultured in a microdrop (30 $\mu$l) of a synthetic oviduct fluld medium (SOFM) containing BSA, Minimum Essential Medium essential and non-essential amino acids for 9 days. As a preliminary experiment, we investigated the beneficial effect of granulosa cells during maturation on subsequent cleavage and development using the same type of culturedishes (4-well dish). Granulosa cells could not increase embryo cleavage after fertilization but significantly improved (p<0.05) embryo development to expanding blastocyst (Table1 and 2). In Group 1, 68 and 80% of inseminated oocytes have cleaved at 30 hours and 2 days after IVF, respectively, which is similar (p>0.05) to the result of Group 2 (69% at 30 hours and 78% at 2 days after IVF). The oocytes in Group 2 showed 21 and 11% of developmental rates to expanding and hatching blastocysts, respectively, which was not significantly different (p>0.05) from those (20 and 10%, respectively) of oocytes in Group 1. In conclusion, it has been clarified that a microdrop culture system without granulosa cells for in vitro maturation can support bovine embryonic development to blastocyst in vitro as readily as a granulosa cell coculture system.
Plasminogen activators (PAs) are serine proteases that convert plasminogen to plasmin. Two type of PAs are urokinase-type PA (uPA) and tissue-type PA (tPA). Plasminogen is present in most extracellular fluids. PAs play in various reproductive processes including implantation, ovulation and fertilization. In the spermatozoa, PAs and PAIs play a role in sperm motility and fertilization. PAs in the sertoli cell are stimulated spermatozoa maturation and sperm activation through the phospholipase A2. The oocyte maturation is the process for fertilization and implantation. PAs in cumulus-oocyte complexes (COCs) are related to oocyte maturation by protein kinase A and C. In the ovulatory process, PAs activity are changed and it are related to reducing the tensile strength of ovarian follicle wall. The uterine environment is important for reproduction and the uterus undergo tissue remodeling. In the uterus and oviduct of mammals, expression and activity of PAs are changed during estrous cycle. Thus, expression and activity of PAs are concerned to many reproductive functions. Therefore, PAs seem to important factor of regulator in reproductive events.
Gonad structure, germ cell development and reproductive cycle of the smallmouth scorpionfish, Scorpaena miostoma were investigated based on histological method. Samples were collected monthly in the vicinity of Suyoung Bay, Pusan, Korea from November 1995 to October 1996. The testis is seminiferous tubule type in internal structure. Seminiferous tubule consists of numerous testicular cysts which contain numerous germ cells in same developmental stage. The ovary consists of several ovarian lamellae originated from ovarian outer membrane. Oogonia originated from the inner surface of the ovarian lamella protrude to the ovarian cavity in oocyte stage, and they are suspended by the egg stalk. Biological minimum size of female and male were 12.5cm in total length. Gonadosomatic index (GSI) of female (3.81) and male (0.23) were the highest in October. Reproductive cycle was classified into the following successive stages: in female, growing stage $(May\~August)$, maturation stage $(September\~October)$, ripe and spawning stage $(November\~December)$, recovery and resting stage $(January\~April)$, and in male, growing stage $(June\~August)$, maturation stage $(September\~October)$, ripe and spent stage $(November\~January)$ and recovery and resting stage $(February\~May)$.
The relative effectiveness of C21-steroids and human chorionic gonadotropin(HCG) on maturation and ovulatin was investigated in vitro using the isolated oocytes or ovarian fragments from the sea bass, Lateolabrax japonicus. ${\alpha}$-hydroxy, 20${\beta}$-dihydroprogesterone(17${\alpha}$20${\beta}$OHP : 5, 50, 500, 1000ng/ml), 17${\alpha}$-hydroxy, 20${\alpha}$-dihydroprogesterone(17${\alpha}$20${\alpha}$OHP : 5, 50, 500, 1000ng/ml) and HCG (5, 50, 500IU/ml) were effective in inducing oocyte maturation, GVM (germinal vesicle migration) or GVBD(germinal vesicle breakdown), compared to control except 17${\alpha}$20${\beta}$OHP and 17${\alpha}$20${\alpha}$OHP at 5ng/ml. 17${\alpha}$20${\beta}$OHP showed the greatest effect on oocyte maturation at 50ng/ml. A combination of 17${\alpha}$20${\beta}$OHP(50ng/ml) and HCG(500IU/ml) led to a significant increase (p<0.05) in GVBD when compared with 17${\alpha}$20${\beta}$OHP or HCG alone. These findings suggest that the two in combination acts synergistically to induce GVBD. 17${\alpha}$20${\beta}$OHP (1~1000ng/ml) and HCG(1~500IU/ml) also induced ovulation in ovarian fragments at all concentrations used ; more effective at lower concentrations(1~50ng/ml or IU/ml). It was shown that HCG was more potent in inducting ovulatin than 17${\alpha}$20${\beta}$OHP.
Melatonin (N-acetyl-5-methoxytryptamine), a major hormone of pineal gland in vertebrates, is known to be associated with regulation of the dynamic physiological functions in general and has some functions on reproduction in the ovarian follicles in particular. And its antioxidant properties as a scavenger are also reported. The aim of this study was to investigate the effect of melatonin on the in vitro maturation of mouse germinal vesicle (GV)-stage oocytes. Oocyte maturation, apoptosis, and mRNA expression of melatonin receptor were analyzed in the cumulus cell-enclosed oocytes (CEOs) cultured with melatonin for 18 h. The CEOs were obtained from 3 wk-old ICR female mice cultured in media with 0, 0.1 nM, 10 nM, or 1,000 nM melatonin for 18 h. And then the extrusion of the first polar body was assessed to evaluate the maturation rate. The apoptosis and mRNA expression of melatonin receptor (Mtnr1-a and Mtnr1-b) in cumulus cells of each group were measured by TUNEL assay, ELISA, and real time RT-PCR after in vitro maturation(IVM). The addition of melatonin in the IVM medium significantly improved nuclear maturation of the mouse GV oocytes and the highest maturation rate were obtained from the group treated with 1,000 nM melatonin. Apoptosis was not detected in IVM oocytes, but detected in cumulus cells. And cumulus cells treated with 1,000 nM melatonin exhibited significantly lower apoptosis. In the group treated with 1,000 nM melatonin, the expression of melatonin receptor mRNA was decreased in CEOs. In conclusion, melatonin has a potentially important role for regulating oocyte maturation and reduces the apoptosis of cumulus cells in vitro.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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