The molecular mechanism of ischemia/reperfusion injury remains unclear. Reactive oxygen species (ROS) are implicated in cell death caused by ischemia/reperfusion in vivo or hypoxia in vitro. Poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) activation has been reported to be involved in hydrogen peroxide-induced cell death in renal epithelial cells. This study was therefore undertaken to evaluate the role of P ARP activation in chemical hypoxia in opossum kidney (OK) cells. Chemical hypoxia was induced by incubating cells with antimycin A, an inhibitor of mitochondrial electron transport. Exposure of OK cells to chemical hypoxia resulted in a time-dependent cell death. In OK cells subjected to chemical hypoxia, the generation of ROS was increased, and this increase was prevented by the $H_2O_2$ scavenger catalase. Chemical hypoxia increased P ARP activity and chemical hypoxia-induced cell death was prevented by the inhibitor of PARP activation 3-aminobenzamide. Catalase prevented OK cell death induced by chemical hypoxia. $H_2O_2$ caused PARP activation and $H_2O_2-induced$ cell death was prevented by 3-aminobenzamide. Taken together, these results indicate that chemical hypoxia-induced cell injury is mediated by PARP activation through H202 generation in renal epithelial cells.
This study was undertaken to investigate the effect of baicalein, a major flavone component of Scutellaria balicalensis Georgi, on oxidant-induced cell injury in renal epithelial cells. Opossum kidney cells, an established proximal tubular epithelial cells, were used as a cell model of renal epithelial cells and t-butylhydroperoxide (tBHP) as an oxidant drug model. Cell viability was measured by MTT assay and lipid peroxidation was estimated by measuring the content of malondialdehyde, a product of lipid peroxidation. Exposure of cells to tBHP caused cell death and its effect was dose-dependent over concentration range of 0.1~1.0 mM. When cells were exposed to tBHP in the presence of various concentrations (0.1~10 $\mu$M) of baicalein, tBHP-induced cell death was prevented with a manner dependent of baicalein concentration. tBHP induced A TP depletion, which was significantly prevented by baicalein. Similarly, tBHP-induced DNA damage was prevented by baicalein. tBHP produced a marked increase in lipid peroxidation and its effect was completely inhibited by baicalein. These results indue ate that tBHP induces cell injury through a lipid peroxidation-dependent mechanism in renal epithelial cells, and baicalein prevented oxidant-induced cell injury via antioxidant action inhibiting lipid peroxidation. In addition, these results suggest that baicalein may be a candidate for development of drugs which are effective in preventing and treating renal diseases.
Transepithelial transport of tetraethylammonium (TEA) was studied in monolayers of opossum kidney cells cultured on permeable membrane filters. $[^{14}C]-TEA$ was transported across the OK cell monolayer from basolateral to apical side by a saturable process which can be stimulated by acidification of the apical medium. The apparent Michaelis-Menten constant $(K_{m})$ and the maximum velocity$(V_{max})$ for the transport were $41\;{\mu}M$ and 147 pmole/ mg protein/ min, respectively. The transport was significantly inhibited by unlabelled TEA, amiloride, cimetidine, choline, and mepiperphenidol added to the basolateral side at 1 mM and was slightly inhibited by 5 mM $N_{1}-methylnicotinamide\;(NMN).$ Unlabelled TEA added to the apical side stimulated the $basolateral-to-apical\;{^{14}C}-TEA$ transport, suggesting that the TEA self-exchange mechanism was involved at the apical membrane. Sulfhydryl reagents such as ${\rho}-chloromercuribenzoic\;acid\;(PCMB)\;and \;{\rho}-chloro-mercuribenzene\;sulfonate \;(PCMBS)$ and carboxyl reagents such as N,N'-dicyclohexylcarbodiimidem (DCCD) and N-ethoxy-carbonyl-2-ethoxy-1,2-dihydro-quinoline(EEDQ) inhibited the TEA transport at both the basolateral and apical membranes of the OK cell monolayer. These results suggest that OK cell monolayers possess a vectorial transport system for organic cations which is similar to that for organic cation secretion in the renal proximal tubule.
Ceramide induces cell death in a variety of cell types however, the underlying molecular mechanisms related to renal epithelial cells remain unclear. The present study was undertaken to determine the role of extracellular signal-regulated protein kinase (ERK) in ceramide-induced cell death in renal epithelial cells. An established renal proximal tubular cell line of opossum kidney (OK) cells was used for this research. Ceramide induced apoptotic cell death in these cells. Western blot analysis showed that ceramide induced activation of ERK. The ERK activation and cell death induced by ceramide were prevented by the ERK inhibitor PD98059. Ceramide caused cytochrome C release from mitochondria into the cytosol as well as activation of caspase-3. Both effects were prevented by PD98059. The ceramide-induced cell death was also prevented by a caspase inhibitor. These results suggest that ceramide induces cell death through an ERK-dependent mitochondrial apoptotic pathway in OK cells.
Park, In-Ho;Hwang, Moon-Young;Woo, Jae-Suk;Jung, Jin-Sup;Kim, Yong-Keun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제3권5호
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pp.529-538
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1999
This study was undertaken to examine the effect of ethanol on $Na^+ -dependent$ phosphate $(Na^+-P_i)$ uptake in opossum kidney (OK) cells, an established renal proximal tubular cell line. Ethanol inhibited ^Na^+-dependent$ component of phosphate uptake in a dose-dependent manner with $I_{50}$ of 8.4%, but it did not affect $Na^+-independent$ component. Similarly, ethanol inhibited $Na^+-dependent$ uptakes of glucose and amino acids (AIB, glycine, alanine, and leucine). Microsomal $Na^+-K^+-ATPase$ activity was not significantly altered when cells were treated with 8% ethanol. Kinetic analysis showed that ethanol increased $K_m$ without a change in $V_{max}$ of $Na^+-P_i$ uptake. Inhibitory effect of n-alcohols on $Na^+-P_i$ uptake was dependent on the length of the hydrocarbon chain, and it resulted from the binding of one molecule of alcohol, as indicated by the Hill coefficient (n) of 0.8-1.04. Catalase significantly prevented the inhibition, but superoxide dismutase and hydroxyl radical scavengers did not alter the ethanol effect. A potent antioxidant DPPD and iron chelators did not prevent the inhibition. Pyrazole, an inhibitor of alcohol dehydrogenase, did not attenuate ethanol-induced inhibition of $Na^+-P_i$ uptake, but it prevented ethanol-induced cell death. These results suggest that ethanol may inhibit $Na^+-P_i$ uptake through a direct action on the carrier protein, although the transport system is affected by alterations in the lipid environment of the membrane.
Cisplatin treatment increases the excretion of inorganic phosphate in vivo. However, the mechanism by which cisplatin reduces phosphate uptake through renal proximal tubular cells has not yet been elucidated. We examined the effect of cisplatin on $Na^+$-dependent phosphate uptake in opossum kidney (OK) cells, an established proximal tubular cell line. Cells were exposed to cisplatin for an appropriate time period and phosphate uptake was measured using $[^{32}P]$-phosphate. Changes in the number of phosphate transporter in membranes were evaluated by kinetic analysis, $[^{14}C]$phosphonoformic acid binding, and Western blot analysis. Cisplatin inhibited phosphate uptake in a time- and dose-dependent manner, and also the $Na^+$-dependent uptake without altering $Na^+$-independent uptake. The cisplatin inhibition was not affected by the hydrogen peroxide scavenger catalase, but completely prevented by the hydroxyl radical scavenger dimethylthiourea. Antioxidants were ineffective in preventing the cisplatin-induced inhibition of phosphate uptake. Kinetic analysis indicated that cisplatin decreased Vmax of $Na^+$-dependent phosphate uptake without any change in the Km value. $Na^+$-dependent phosphonoformic acid binding was decreased by cisplatin treatment. Western blot analysis showed that cisplatin caused degradation of $Na^+$-dependent phosphate transporter protein. Taken together, these data suggest that cisplatin inhibits phosphate transport in renal proximal tubular cells through the reduction in the number of functional phosphate transport units. Such effects of cisplatin are mediated by production of hydroxyl radicals.
This study was undertaken to determine the underlying mechanisms of reactive oxygen species-induced cell injury in renal epithelial cells and whether there is a difference in the role of lipid peroxidation between freshly isolated renal cells and cultured renal cells. Rabbit renal cortical slices were used as a model of freshly isolated cells and opossum kidney (OK) cells as a model of cultured cells. Cell injury was estimated by measuring lactate dehydrogenase (LDH) release in renal cortical slices and frypan blue exclusion in OK cells. $H_2O$$_2$ was used as a drug model of reactive oxygen species. $H_2O$$_2$ induced cell injury in a dose-dependent manner in both cell types. However, renal cortical slices were resistant to $H_2O$$_2$ approximately 50-fold than OK cells. $H_2O$$_2$-induced cell injury was prevented by thiols (glutathione and dithiothreitol) and iron chelators (deferoxamine and phenanthroline) in both cell types. $H_2O$$_2$-induced cell injury in renal cortical slices was completely prevented by antioxidants N,N-diphenyl-p -phenylenediamine and Trolox, but the cell injury was not affected by these antioxidants in OK cells. $H_2O$$_2$ increased lipid peroxidation in both cell types, which was completely inhibited by the antioxidants. These results suggest that $H_2O$$_2$ induces cell injury through a lipid peroxidation-dependent mechanism in freshly isolated renal cells, but via a mechanism independent of lipid peronidation in cultured cells.
Objectives : This study was performed to determine if Orostachys japonicus A. Berger aquacupuncture (OjB) provides the protective effect against the loss of celi viability and DNA damage induced by oxidant in renal proximal tubular cells. Methods : The cell viability was evaluated by a MTT reduction assay and DNA damage was estimated by measuring double stranded DNA breaks in opossum kidney (OK) cells, an established proximal tubular cell line. Lipid peroxidation was determined by measuring malondialdehyde (MDA), a product of lipid peroxidation. Results : $H_2O_2$ increased the loss of cell viability in a time-dependent manner, which were prevented by 0.1% OjB. The protective effect of OjB was dose-dependent over concentration range of 0.05-0.5%. $H_2O_2$ caused ATP depletion and DNA damage, which were prevented by OjB and the hydrogen peroxide scavenger catalase. The loss of cell viability by $H_2O_2$ was not affected by the antioxidant DPPD, but lipid peroxidation by the oxidant was completely inhibited by DPPD. Conclusions : These data suggest that $H_2O_2$-induced death results from a lipid peroxidation-independent mechanism and the protective effect of OjB is not associated with its antioxidant activity.
$Na^+/H^+$ exchanger (NHE) has a critical role in regulation of intracellular pH (pHi) in the renal proximal tubular cells. It has recently been shown that dopamine inhibits NHE in the renal proximal tubules. Nevertheless, there is a dearth of information on the effects of long-term (chronic) dopamine treatment on NHE activities. This study was performed to elucidate the pHi regulatory mechanisms during the chronic dopamine treatments in renal proximal tubular OK cells. The resting pHi was greatly decreased by chronic dopamine treatments. The initial rate and the amplitude of intracellular acidification by isosmotical $Na^+$ removal from the bath medium in chronically dopamine-treated cells were much smaller than those in control. Although it seemed to be attenuated in $Na^+$-dependent pH regulation system, $Na^+$-dependent pHi recovery by NHE after intracelluar acid loading in the dopamine-treated groups was not significantly different from the control. The result is interpreted to be due to the balance between the stimulation effects of lower pHi on the NHE activity and counterbalance by dopamine. Our data strongly suggested that chronic dopamine treatment increased intrinsic intracellular buffer capacity, since higher buffer capacity was induced by lower resting pHi and this effect could attenuate pHi changes under extracellular $Na^+$-free conditions in chronically dopamine-treated cells. Our study also demonstrated that intracellular acidification induced by chronic dopamine treatments was not mediated by changes in NHE activity.
목적 : 黃芩(황금)과 黃芩(황금)의 주요 flavonoid 성분인 baicalein이 신장세뇨관 상피세포에서 산화제에 의한 apoptosis에 미치는 효과를 살펴보고자 한다. 방법 : 신장세뇨관 상피세포주인 opossum kidney (OK) 세포를 유기산화제인 t-butylhydroperoxide (tBHP)에 노출시켜 apoptosis를 일으킨 후 관련된 변화를 관찰하였다. 결과 : tBHP는 농도에 의존하여 apoptosis를 유발시켰는데, 이러한 효과는 黃芩(황금)과 baicalein에 의해 농도 의존적으로 방지 되었다. tBHP에 의한 OK 세포사는 항산화제인 Trolox와 N-acetylcysteine에 의해 방지 되었다. tBHP는 mitogen-activated protein kinase의 subfamily인 extracellular signal-regulated kinase (ERK)를 활성화시켰다. ERK 억제제인 PD98059와 U0126은 tBHP에 의한 세포 사망을 방지하였다. tBHP에 의한 ERK 활성화는 U0126에 의해 억제되었으나 黃芩(황금)과 baicalein에 의해서는 영향을 받지 않았다. 철착염제인 deferoxamine은 tBHP에 의한 세포 사망과 ERK 활성화를 방지하였다. tBHP에 의한 세포 사망은 casopase 억제제인 BOD-U-FMK와 zDEVD-FMK에 의해 방지되었다. 결론 : 黃芩(황금)은 산화제에 의한 세포 사망을 방지하는데, 이는 kinase 억제, 항산화제 역할 및 철착염제의 작용에 기인하지 않았다. 黃芩(황금)의 이러한 효과는 산화제에 의관 신부전 예방 및 치료제로 개발하는데 이용될 수 있는 가능성을 보였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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