The nuclear non-histone protein high mobility group box (HMGB) 1 is known to having an inhibitory effect on the repair of DNA damaged by the antitumor drug cisplatin in vitro. To investigate the role of HMGB1 in living cells, we studied the DNA repair of cisplatin damages in mouse fibroblast cell line, NIH-3T3. We evaluated the effect of the post-synthetic acetylation and C-terminal domain of the protein by overexpression of the parental and mutant GFP fused forms of HMGB1. The results revealed that HMGB1 had also an inhibitory effect on the repair of cisplatin damaged DNA in vivo. The silencing of HMGB1 in NIH-3T3 cells increased the cellular DNA repair potential. The increased levels of repair synthesis could be "rescued" and returned to less than normal levels if the knockdown cells were transfected with plasmids encoding HMGB1 and HMGB1 K2A. In this case, the truncated form of HMGB1 also exhibited a slight inhibitory effect.
Chromium compounds are known human and animal carcinogens. In this study, the effects of sodium chromate on apoptosis and cell cycle were investigated in order to unveil the elements of early cellular responses to the metal. Using Chinese hamster ovary cells(CHO-K1-BH4), we found taht chromium (VI) treatment induced apoptosis in these cells, as signified by nuclear fragmentation, DNA laddering on agarose gel electrophoresis, and an increased proportionof cells with hypodiploid DNA. Preceding these changes, chromium (VI) treatment increased caspase 3 pritease activity and also increased expression of p53 protein, while the level of bcl2 protein was not changed. Coincubation with caspase inhibitor, Z-DEVD-FMK, inhibited chromium-induced apoptosis. In the flow cytometric analysis using propidium iodide fluorescence, an increase of cell population in G2/M phase was shown in cells exposed to at least 160 $\mu\textrm{m}$ of sodium chromate for 72h, form 9.8% for 0$\mu\textrm{m}$ chromium (VI) to 26.4% for 320$\mu\textrm{m}$ chromium(VI). Taken together, these findings suggest that chromium(VI)-induced apoptosis is accompanied by G2/M cell cycle arrest, and that p53-mediated pathway may be involved in positive regulation of G2/M arrest and a concurred apoptosis in CHO cells.
Apoptosis is a mode of cell death that plays an important role in both pathological and physiological processes. Research during the last decade has delineated the entire machinery needed for cell death, and its constituents were found to pre-exist in cells. The apoptotic cascade is triggered when cells are exposed to an apoptotic stimulus. It has been known for several years that inhibitors of protein synthesis can potentiate apoptosis that is induced by cytokines and other inducers. Until 1996, it was not understood why protein synthesis inhibitors potentiate apoptosis. Then three reports appeared that suggested the role of the transcription factor NF-${\kappa}B$ activation in protecting the cells from TNF-induced apoptosis. Since then several proteins have been identified that are regulated by NF-${\kappa}B$ and are involved in cell survival, proliferation, and protection from apoptosis. It now seems that when a cell is attacked by an apoptotic stimulus, the cell responds first by activating anti-apoptotic mechanisms, which mayor may not be followed by apoptosis. Whether or not a cell undergoes proliferation, the survival, or apoptosis, appears to involve a balance between the two mechanisms. Inhibitors of protein synthesis seem to suppress the appearance of protein that are involved in anti-apoptosis. The present review discusses how NF-${\kappa}B$ controls apoptosis.
Protein kinase D2 (PKD2) is a member of the PKD serine/threonine protein kinase family that has been implicated in the regulation of a variety of cellular processes including proliferation, survival, protein trafficking and immune response. In the present study, we report a novel interaction between PKD2 and Lck, a member of the Src tyrosine protein kinase family that is predominantly expressed in T cells. This interaction involved the C-terminal kinase domains of both PKD2 and Lck. Moreover, co-expression of Lck enhanced the tyrosine phosphorylation of PKD2 and increased its kinase activity. Finally, we report that PKD2 enhanced T cell receptor (TCR)-induced nuclear factor of T cell (NFAT) activity in Jurkat T cells. These results suggested that Lck regulated the activity of PKD2 by tyrosine phosphorylation, which in turn may have modulated the physiological functions of PKD2 during TCR-induced T cell activation.
The results of this study show that c-Jun N-terminal kinase (JNK) activation was associated with the enhancement of docetaxel-induced cytotoxicity by simvastatin in DU145 human prostate cancer cells. To better understand the basic molecular mechanisms, we investigated simvastatin-regulated targets during simvastatin-induced cell death in DU145 cells using two-dimensional (2D) proteomic analysis. Thus, vimentin, Ras-related protein Rab-1B (RAB1B), cytoplasmic hydroxymethylglutaryl-CoA synthase (cHMGCS), thioredoxin domain-containing protein 5 (TXNDC5), heterogeneous nuclear ribonucleoprotein K (hnRNP K), N-myc downstream-regulated gene 1 (NDRG1), and isopentenyl-diphosphate Delta-isomerase 1 (IDI1) protein spots were identified as simvastatin-regulated targets involved in DU145 cell death signaling pathways. Moreover, the JNK inhibitor SP600125 significantly inhibited the upregulation of NDRG1 and IDI protein levels by combination treatment of docetaxel and simvastatin. These results suggest that NDRG1 and IDI could at least play an important role in DU145 cell death signaling as simvastatinregulated targets associated with JNK activation.
14-3-3 is a highly conserved, ubiquitously expressed protein family. It associates with diverse cellular proteins through its specific phosphoserine/phosphothreonine-binding activity and thus contributes to the regulation of crucial cellular processes such as metabolism, signal transduction, cell-cycle control, apoptosis, protein trafficking, transcription and stress responses. This study aims to determine changes in levels of 14-3-3 isoforms and 14-3-3 - associated proteins in Helicobacter pylori(H. pylori)-infected gastric epithelial AGS cells. AGS cells were stimulated with H. pylori(NCTC 11637) at the ratio of 300:1(bacterium:cell). Western blot analysis revealed that 14-3-3 $\sigma$ was elevated at 3 hr after H. pylori treatment. Other isoforms were not significantly affected by H. pylori infection. Using immunoprecipitation to 14-3-3 $\sigma$, followed by proteomic analysis, we found that S phase kinase associated protein isoform 2 bound to 14-3-3 $\sigma$ has increased. In contrast, three proteins (DEAD-box polypeptide 3, heterogeneous nuclear ribonucleoprotein H2 and WD repeat-containing protein isoform 1) bound to 14-3-3 decreased by H. pylori infection. Our results suggest that 14-3-3 may play an important regulatory role in H. pylori-induced signal transduction in gastric epithelial cells.
When DNA double-strand breaks (DSBs) were induced in mammalian cells, many DNA damage response proteins are accumulated at damage sites to form nuclear foci called IR-induced foci. Although the formation of foci has been shown to promote repair efficiency, the structural organization of chromatin in foci remains obscure. BAF53 is an actin-related protein which is required for maintenance of chromosome territory. In this study, we show that the formation of IR-induced foci by $\gamma$-H2AX and 53BP1 were reduced when BAF53 is depleted, while DSB- activated ATM pathway and the phosphorylation of H2AX remains intact after DNA damage in BAF53 knockdown cells. We also found that DSB repair efficiency was largely compromised in BAF53 knockdown cells. These results indicate that BAF53 is critical for formation of foci by $\gamma$-H2AX decorated chromatin at damage sites and the structural organization of chromatin in foci is an important factor to achieve the maximum efficiency of DNA repair.
Junction-mediating and regulatory protein (JMY) is a regulator of both transcription and actin filament assembly. The actin-regulatory activity of JMY is based on a cluster of three actin-binding Wiskott-Aldrich syndrome protein homology 2 (WH2) domains that nucleate actin filaments directly and promote nucleation of the Arp2/3 complex. In addition to these activities, we examined the activity of JMY generation in early embryo of mice carrying mutations in the JMY gene by CRISPR/Cas9 mediated genome engineering. We demonstrated that JMY protein shuttled expression between the cytoplasm and the nucleus. Knockout of exon 2, CA (central domain and Arp2/3-binding acidic domain) and NLS-2 (nuclear localization signal domain) on the JMY gene by CRISPR/Cas9 system was effective and markedly impeded embryonic development. Additionally, it impaired transcription and zygotic genome activation (ZGA)-related genes. These results suggest that JMY acts as a transcription factor, which is essential for the early embryonic development in mice.
Sangsoo Lee;Haesoo Jung;Sunkyung Choi;Namjoon Cho;Eun-Mi Kim;Kee Kwang Kim
BMB Reports
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v.56
no.9
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pp.514-519
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2023
Methyltransferase-like 3 (METTL3), a key component of the m6A methyltransferase complex, regulates the splicing, nuclear transport, stability, and translation of its target genes. However, the mechanism underlying the regulation of METTL3 expression by alternative splicing (AS) remains unknown. We analyzed the expression pattern of METTL3 after AS in human tissues and confirmed the expression of an isoform retaining introns 8 and 9 (METTL3-IR). We confirmed the different intracellular localizations of METTL3-IR and METTL3 proteins using immunofluorescence microscopy. Furthermore, the endogenous expression of METTL3-IR at the protein level was different from that at the mRNA level. We found that 3'-UTR generation by intron retention (IR) inhibited the export of METTL3-IR mRNA to the cytoplasm, which in turn suppressed protein expression. To the best of our knowledge, this is the first study to confirm the regulation of METTL3 gene expression by AS, providing evidence that the suppression of METTL3 protein expression by IR is an integral part of the mechanism by which 3'-UTR generation regulates protein expression via inhibition of RNA export to the cytoplasm.
IscU, the iron-sulfur (Fe-S) cluster scaffold protein, is an essential protein for biogenesis of Fe-S clusters. Previous studies showed that IscU manifests a metamorphic structural feature; at least two structural states, namely the structured state (S-state) and the disordered state (D-state), interconverting in a physiological condition, was observed. Moreover, subsequent studies demonstrated that the metamorphic flexibility of IscU is important for its Fe-S cluster assembly activity as well as for an efficient interaction with various partner proteins. Although solution nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy has been a useful tool to investigate this protein, the detailed molecular mechanism that sustains the structural heterogeneity of IscU is still unclear. To tackle this issue, we applied a high-pressure NMR (HP-NMR) technique to the IscU variant, IscU(I8K), which shows an increased population of the S-state. We found that the equilibrium between the S- and D-state was significantly perturbed by pressure application, and the specific regions of IscU exhibited more sensitivity to pressure than the other regions. Our results provide novel insights to appreciate the dynamic behaviors of IscU and the related versatile functionality.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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