Kim, Hye Sun;Lee, Yu Hee;Lee, Yun-Sil;Choi, Hyung-Do;Kwon, Jong Hwa;Pack, Jeong-Ki;Kim, Nam;Ahn, Young Hwan
Journal of electromagnetic engineering and science
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v.15
no.3
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pp.173-180
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2015
To explore the effects of radiofrequency electromagnetic field on the fate of neuronal cells, we investigated whether exposure to 915 MHz radiofrequency identification (RFID) caused morphological changes in neuronal cells in rat hippocampal dentate gyrus (DG). A reverberation chamber was used as a whole-body RFID exposure system. Rats were assigned to two groups: sham- and RFID-exposed groups. Rats in the RFID-exposed group were exposed to RFID at 4 W/kg specific absorption rate (SAR) for 8 hours daily, 5 days per week, for 2 weeks. Morphological evaluation of DG was performed using immunohistochemistry with doublecortin (DCX) as a neuronal precursor cell marker and neuronal nuclei (NeuN) as a mature neuronal cell marker. No significant morphological changes in DCX+ or NeuN+ cells in the DG of RFID-exposed rats were observed. These results suggest that RFID exposure induces no significant change in DCX+ neuronal precursor or NeuN+ neuronal cells in DG of rats.
Proceedings of the Korean Institute of Information and Commucation Sciences Conference
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2014.05a
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pp.822-825
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2014
For in vitro myelination system, Schwann cells and neuronal cells of rat were cocultured. Schwann cells and neuronal cells, respectively, were obtained from dorsal root ganglion of rat embryos (E15). This method includes four steps: first step of suspension of the embryonic dorsal root ganglion cells, second step of addition of anti-mitotic cocktail, third step of purification of dorsal root cells, and fourth step of addition of Schwann cells to dorsal root ganglion cells. We made a highly purified population of myelination in a short period through this procedure and identified myelination basic protein using antibody of myelination basic protein.
Zhang, Peng;Hong, Ji;Yoon, I Na;Kang, Jin Ku;Hwang, Jae Sam;Kim, Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.27
no.6
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pp.1163-1170
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2017
Clostridium difficile releases two exotoxins, toxin A and toxin B, which disrupt the epithelial cell barrier in the gut to increase mucosal permeability and trigger inflammation with severe diarrhea. Many studies have suggested that enteric nerves are also directly involved in the progression of this toxin-mediated inflammation and diarrhea. C. difficile toxin A is known to enhance neurotransmitter secretion, increase gut motility, and suppress sympathetic neurotransmission in the guinea pig colitis model. Although previous studies have examined the pathophysiological role of enteric nerves in gut inflammation, the direct effect of toxins on neuronal cells and the molecular mechanisms underlying toxin-induced neuronal stress remained to be unveiled. Here, we examined the toxicity of C. difficile toxin A against neuronal cells (SH-SY5Y). We found that toxin A treatment time- and dose-dependently decreased cell viability and triggered apoptosis accompanied by caspase-3 activation in this cell line. These effects were found to depend on the up-regulation of reactive oxygen species (ROS) and the subsequent activation of p38 MAPK and induction of $p21^{Cip1/Waf1}$. Moreover, the N-acetyl-$\text\tiny L$-cysteine (NAC)-induced down-regulation of ROS could recover the viability loss and apoptosis of toxin A-treated neuronal cells. These results collectively suggest that C. difficile toxin A is toxic for neuronal cells, and that this is associated with rapid ROS generation and subsequent p38 MAPK activation and $p21^{Cip1/Waf1}$ up-regulation. Moreover, our data suggest that NAC could inhibit the toxicity of C. difficile toxin A toward enteric neurons.
Dung, To Thi Mai;Yi, Young-Su;Heo, Jieun;Yang, Woo Seok;Kim, Ji Hye;Kim, Han Gyung;Park, Jae Gwang;Yoo, Byong Chul;Cho, Jae Youl;Hong, Sungyoul
BMB Reports
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v.49
no.8
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pp.437-442
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2016
We aimed to study the role of protein L-isoaspartyl methyltransferase (PIMT) in neuronal differentiation using basic fibroblast growth factor (bFGF)-induced neuronal differentiation, characterized by cell-body shrinkage, long neurite outgrowth, and expression of neuronal differentiation markers light and medium neurofilaments (NF). The bFGF-mediated neuronal differentiation of PC12 cells was induced through activation of mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling molecules [MAPK kinase 1/2 (MEK1/2), extracellular signal-regulated kinase 1/2 (ERK1/2), and p90RSK], and phosphatidylinositide 3-kinase (PI3K)/Akt signaling molecules PI3Kp110β, PI3Kp110γ, Akt, and mTOR. Inhibitors (adenosine dialdehyde and S-adenosylhomocysteine) of protein methylation suppressed bFGF-mediated neuronal differentiation of PC12 cells. PIMT-eficiency caused by PIMT-specific siRNA inhibited neuronal differentiation of PC12 cells by suppressing phosphorylation of MEK1/2 and ERK1/2 in the MAPK signaling pathway and Akt and mTOR in the PI3K/Akt signaling pathway. Therefore, these results suggested that PIMT was critical for bFGF-mediated neuronal differentiation of PC12 cells and regulated the MAPK and Akt signaling pathways.
The amphetamine derivative 3,4-methylenedioxymethamphetamine (MDMA) is a potent monoaminergic neurotoxin with the potential to cause serotonergic neurotoxicity, but has become a popular recreational drug. Little has been known about the cellular effects induced by MDMA. This report shows that MDMA inhibits neuronal cell growth and differentiation. MDMA suppressed neuronal cell growth. The results of quantitative real-time PCR analysis showed that Egr-1 expression is elevated in mouse embryo and neuroblastoma cells after MDMA treatment. Transiently transfected Egr-1 interfered with the neuronal differentiation of neuroblastoma cells such as SH-SY5Y and PC12 cells. These findings provide evidence that the abuse of MDMA during pregnancy may impair neuronal development via an induction of Egr-1 over-expression.
Zinc is an endogenous transition metal that can be synaptically released during neuronal activity. However, zinc may contribute to the neuropathology associated with a variety of conditions. Carnosine expressed in glial cells can modulate the effects of zinc on neuronal excitability as a zinc chelator. We hypothesize that carnosine may protect against neurotoxicity of zinc in cortical neuronal cells. The cortical neuronal cells from newborn rats were prepared and exposed to zinc chloride and/or carnosine at various concentrations. Zinc at the doses of 0 to $500{\mu}M$ decreased neuronal cell viability in a dose-dependent manner. Additionally, at the concentrations of 100 and $200{\mu}M$, it significantly decreased cell viability in an exposed time-dependent manner (p < 0.05). Treatment with carnosine at the concentrations of 20 and $200{\mu}M$ significantly increased neuronal cell proliferation by approximately 14% and 20%, respectively, compared to the control (p < 0.05). At the concentrations of 100 and $200{\mu}M$ zinc, $20{\mu}M$ carnosine significantly increased the viability of neuronal cells by 18.3% and 12.1 %, and $200{\mu}M$ carnosine also increased it by 33.5% and 28.6%, respectively, compared to the normal control group (p < 0.01). These results suggest that carnosine at a physiologically relevant level may protect against zinc-mediated toxicity in neuronal cells as an endogenous neuroprotective agent.
It is becoming increasingly evident that significant changes in gene expression occur during the course of neuronal differentiation. Thus, it should be possible to gain information about the biochemical events by identifying differentially expressed genes in neuronal differentiation The PC12 cell line is a useful model system to investigate the molecular mechanism underlying neuronal differentiation and has been used extensively for the study of the molecular events that underlie the biological actions of nerve growth factor (NGF). In this study, we report an application of the recently described mRNA differential display method to analyze differential gene expression during neuronal differentiation. Using this technique, we have identified several cDNA tags expressed differentially during neuronal differentiation. Interestingly, one of these clones was cytochrome c oxidase subunit I (COX I) gene. The differential expression of COX I gene was confirmed by Northern blot analysis as well as RT-PCR. Southern blot analysis of the genomic DNA of PC12 cells revealed that COX I is a single gene. Induction of the oxidative enzyme might reflect the energy requirement in neuronal differentiation.
This study was carried out to clarify the neuronal organization in pineal body of catfish. The pineal body was observed by acetylcholinesterase histochemistry and electron microscopy. The neuronal types observed in the pineal body of catfish were bipolar and multipolar cells. Multipolar cells were found throughout the pineal end vesicle and whole stalk, but bipolar cells only in the end vesicle and distal stalk. The pineal tract was formed by the long axons of these neurons. The neuronal clusters(pineal ganglia) were also observed in the end vesicle. In summary, the type of neurons in catfish pineal was different from that of other species, and the neuronal distribution differed depending on the region of pineal body. These results reflect the interspecific and regional differences of the pineal organization of fishes.
Oxczaasssaidative stress plays an important role in neuronal cell death, which is associated with neurodegenerative conditions such as Alzheimer's and Parkinson's disease. This study evaluated the neuroprotective effect of Euryale ferox (EF) extracts against glutamate-induced cytotoxicity in hybridoma N18-RE-105 cells. Specifically, neuroprotective effects of methanol and ethanol extracts were evaluated by the MTT reduction assay. The ethanol extracts of EF displayed dose dependent protection against neuronal cell death induced by 20 mM of glutamate. Furthermore, the ethanol extracts of EF was sequentially fractionated with hexane, diethyl ether, ethyl acetate, and water layer according to degree of polarity. The hexane fractions exhibited neuroprotective effect against glutamate-stressed N18-RE-105 cells. Overall, results suggest that EF extracts can potentially be used as chemotherapeutic agents against neuronal diseases.
As a preclinical study, many researchers have been attempted to convert the porcine PSCs into several differentiated cells with transplantation of the differentiated cells into the pigs. Here, we attempted to derive neuronal progenitor cells from pig embryonic germ cells (EGCs). As a result, neuronal progenitor cells could be derived directly from pig embryonic germ cells through the serum-free floating culture of EB-like aggregates (SFEB) method. Treating retinoic acid was more efficient for inducing neuronal lineages from EGCs rather than inhibiting SMAD signaling. The differentiated cells expressed neuronal markers such as PAX6, NESTIN, and SOX1 as determined by qRT-PCR and immunostaining. These data indicated that pig EGCs could provide valid models for human therapy. Finally, it is suggested that developing transgenic pig for disease models as well as differentiation methods will provide basic preclinical data for human regenerative medicine and lead to the success of stem cell therapy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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