Kim, Eun-Soon;Nam, Jung-Hyun;Kim, Ki-Soon;Yoon, Jae-Deuk;Kim, Yoo-Kyum
The Journal of Korean Society of Virology
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v.27
no.2
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pp.169-176
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1997
In this study, the feasibility of identification and genotypic differentiation of enteroviruses was investigated by using nested reverse transcription-polymerase chain reaction (nested RT-PCR), single-stranded conformation polymorphism (SSCP), and restriction fragment length polymorphism (RFLP) techniques. Two hundred seventy-four clinical samples were assayed by both nested RT-PCR and tube culture method using MRC-5 and MK cells; 58 (86.6%) out of 67 enterovirus culture-positive samples contained enteroviral RNA. In addition, 114 (55.1%) of 207 samples from patients with suspected enteroviral CNS disease with negative viral cultures were positive by the nested RT-PCR. The nested RT-PCR products were genotyped by the SSCP method and the results were compared with serotypes. We could differentiate 6 subtypes, 3 of which are similar to coxsackievirus B3, B5, echovirus 11, plus 3 other subtypes. RFLP cleaved with Sty I, Bgl I, and Xmn I yielded characteristic patterns for each laboratory strains. This study demonstrates the usefulness of the RT-PCR for the rapid diagnosis of enterovirus infection and the potentials of the SSCP method for differentiation of enterovirus strains.
Microscopy is considered as the gold standard for malaria diagnosis although its wide application is limited by the requirement of highly experienced microscopists. PCR and serological tests provide efficient diagnostic performance and have been applied for malaria diagnosis and research. The aim of this study was to investigate the diagnostic performance of nested PCR and a recently developed an ELISA-based new rapid diagnosis test (RDT), NovaLisa test kit, for diagnosis of malaria infection, using microscopic method as the gold standard. The performance of nested-PCR as a malaria diagnostic tool is excellent with respect to its high accuracy, sensitivity, specificity, and ability to discriminate Plasmodium species. The sensitivity and specificity of nested-PCR compared with the microscopic method for detection of Plasmodium falciparum, Plasmodium vivax, and P. falciparum/P. vivax mixed infection were 71.4 vs 100%, 100 vs 98.7%, and 100 vs 95.0%, respectively. The sensitivity and specificity of the ELISA-based NovaLisa test kit compared with the microscopic method for detection of Plasmodium genus were 89.0 vs 91.6%, respectively. NovaLisa test kit provided comparable diagnostic performance. Its relatively low cost, simplicity, and rapidity enables large scale field application.
Amebiasis is a protozoan disease caused by Entamoeba histolytica and a potential health threat in areas where sanitation and hygiene are inappropriate. Highly sensitive PCR methods for detection of E. histolytica in clinical and environmental samples are extremely useful to control amebiasis and to promote public health. The present study compared several primer sets for small subunit (SSU) rDNA and histone genes of E. histolytica cysts. A 246 bp of the SSU rDNA gene of pure cysts contained in phosphate-buffered saline (PBS) and in stool samples was successfully amplified by nested PCR, using the 1,147-246 bp primer set, of the primary PCR products which were pre-amplified using the 1,147 bp primer as the template. The detection limit of the nested PCR using the 1,147-246 primer set was 10 cysts in both groups (PBS and stool samples). The PCR to detect histone gene showed negative results. We propose that the nested PCR technique to detect SSU rDNA can be used as a highly sensitive genetic method to detect E. histolytica cysts in stool samples.
An, Chang-Nam;Woo, Gyu-Jin;Kim, Tae-Yeon;Shin, Kwang-Soon;Kim, Chul-Joong;Baek, Luck-Ju
The Journal of Korean Society of Virology
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v.26
no.2
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pp.235-244
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1996
We selected the adequate cell line to be used for propagation and plaquing of R. tsutsugamushi in laboratory and identified R. tsutsugamushi serotype cultured in LuMA cells by nested PCR. As in this study, we concluded that. 1. LuMA cell was suitable for the study of the biology of rickettsiae-host cell interaction. 2. The plaque-forming unit (PFU) per ml of R. tsutsugamushi Karp strain propagated in embryonated egg yolk sacs was $10^{8.8}$ and the PFU/ml of Gilliam strain was $10^{7.1}$. 3. The rate and extent of cytopathic changes depended on the PFU titer of R. tsutsugamushi. 4. PCR with nested primer pairs was useful for identification of R. tsutsugamushi serotype cultured in human embryonic lung cells.
Background: The main goal of this study was to evaluate the diagnostic efficacy of reverse transcription-nested polymerase chain reaction (RT-nested PCR) in bronchial washing fluid with MAGE A1-6 common primers for the detection of lung cancers invisible by bronchoscopy. Methods: To determine the expression of MAGE A1-6 gene in 189 lung cancers diagnosed by conventional fluoroscopy-guided lung biopsy and 89 cancer-free controls, RT-nested PCR was performed in bronchial washing specimens. We analyzed MAGE A1-6 RT-nested PCR data according to tumor histology, stage, size, and compared them with cytological data. Results: 189 patients (111 cases in adenocarcinoma, 47 cases in squamous cell carcinoma, 22 cases in small cell lung carcinoma, and 9 cases in other cancers) and 89 benign patients were investigated. The expression of MAGE was performed by nested RT-PCR using common MAGE primer. Among 189 cancer patients, the expression rate of MAGE was 49.2%, and the positive predictive value was 89.4%. However, the expression rate of MAGE in patients with benign lesions was 12.4%. In peripheral lung cancer, the positive rate of MAGE expression was 57.4% in squamous cell carcinoma, 44.1% in adenocarcinoma and 59.1% in small cell lung cancer. Whereas the expression rate of bronchial washing cytology in peripheral lung cancer was 9.0% (p=0.011). Conclusion: MAGE RT-PCR in bronchial washing fluid gave us promising data for the detection of peripheral lung cancer. It could be a useful method for selecting diagnostic tools for peripheral lesions.
In this study, we describe our newly-developed sensitive two-stage PCR procedure for the detection of 13 common mycoplasmal contaminants (M. arthritidis, M. bovis, M. fermentans, M. genitalium, M. hominis, M. hyorhinis, M. neurolyticum, M. orale, M. pirum, M. pneumoniae, M. pulmonis, M. salivarium, U. urealyticum). For primary amplification, the DNA regions encompassing the 16S and 23S rRNA genes of 13 species were targeted using general mycoplasma primers. The primary PCR products were then subjected to secondary nested PCR, using two different primer pair sets, designed via the multiple alignment of nucleotide sequences obtained from the 13 mycoplasmal species. The nested PCR, which generated DNA fragments of 165-353 bp, was found to be able to detect 1-2 copies of the target DNA, and evidenced no cross-reactivity with the generated DNA of related microorganisms or of human cell lines, thereby confirming the sensitivity and specificity of the primers used. The identification of contaminated species was' achieved via the performance of restriction fragment length polymorphism (RFLP) coupled with Sau3AI digestion. The results obtained in this study furnish evidence suggesting that the employed assay system constitutes an effective tool for the disagnosis of mycoplasmal contamination in cell culture systems.
Among imported plants, seeds are the items that have many latent pathogens and are difficult to inspect. Also, they are the import and export items whose market is expected to expand. The biggest problem with seeds is viruses. Prune dwarf virus (PDV) is the virus that is commonly inspected in Prunus cerasifera, P. persica, P. armeniaca, P. mandshurica, P. cerasus, P. avium or P. serotina seeds. In this study, two RT-PCR primer sets, which can promptly and specifically diagnose plant quarantine seed-transmitted PDV, were developed; and nested PCR primers, where products amplify 739 and 673 nucleotides (nt), and an nested PCR-product, 305 nt, can be obtained as these products are amplified again, were developed. Also, a modified-positive control plasmid was developed, where the restriction enzyme XhoI, which can identify the contamination of samples from the control, was inserted. The method developed in this study has detected PDV in 18 cases since 2007, and is expected to continuously contribute to the plant quarantine in Korea.
Human Aichivirus A1 (HuAiV-A1) is a waterborne human pathogenic virus classified as Picornaviridae and Kobuvirus. In this study, we developed a method that can detect about 35 minutes faster with the same detection sensitivity level than the previously reported HuAiV-A1 diagnostic RT-PCR primer. The RT-PCR primer sets developed in this study are capable of detecting HuAiV-A1 at a level of about 100 ag and formed 563 bp amplification product. In addition, the RT-nested PCR method was able to amplify 410 bp using the RT-PCR product as a template. The detection sensitivity of our method was 10 times higher than the method with the highest detection sensitivity to date. Therefore, the detection method of HuAiV-A1 developed in this study is expected to be used in the water environment in which a small amount of virus exists. Also, this detection method is expected to be used as HuAiV-A1 diagnostic technology in both clinical and non-clinical field.
Human pathogenic viruses such as hepatitis A and E virus (HAV and HEV), which lead to acute liver failure and death, are foodborne pathogens associated with the consumption of virus-contaminated meats, filter-feeding bivalves, fruits, and salads. Two of the three swine farms examined in this study had HAV and HEV positive stool samples in a nested RT-PCR assay. The use of the immunomagnetic separation (IMS) facilitated the separation of HAV through interactions between the ligand on the virion surface and the antibody from the swine feces containing both HAV and HEV. The nested RT-PCR analysis was performed for the detection of HAV obtained from hepatocarcinoma cell line (PLC/PRF/5) contaminated with eluent fraction of IMS. This indicated that IMS has the potential to simultaneously isolate and concentrate target viruses by changing antibodies linked on the magnetic beads.
Kang, T. Y.;Chae, Y. J.;Lee, H.;Lee, K. K.;Park, C. S.;Lee, H. J.
Journal of Embryo Transfer
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v.13
no.2
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pp.97-106
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1998
The pronuclear injection of metallothionein-human growth hormone (MT-hGH) gene into rabbit zygotes was performed to establish in vitro developmental system and to detect the presence of the injected gene by nested PCR. Mature female New Zealand White rabbits were superovulated by eGG and hCG treatments. The rabbits were mated and the zygotes were collected from the oviducts 18-22 h after hCG injection by flushing with D-PBS. Two to three picoliters of MT-hGH gene was microinjected into male pronuclei. The foreign gene-injected zygotes were cultured in TCM-199 or RD mediurn containing 10% FCS with a monolayer of rabbit oviductal epithelial cefls in a 5% $CO_2$ incubator. The presence of injected DNA in rabbit embryos or blastomeres at different developmental stages .vas detected by a nested PCR analysis. The results are summarized as follows ; 1.The developmental rate of the MT-hGH gene-injected zygotes to blastocyst was significantly higher in TCM-199 medium (68.1%) than in RD medium (42.9%). 2.The gene injection into pronuclei at 18 or 22 hours post hCG treatment during pronuclear stage did not much affect on the in vitro development of the rabbit embryos. 3.The rate of gene-positive embryos detected by the nested PCR analysis was significantly decreased when they developed to blastocysts. The results indicate that the screening of transgene in rabbit embryos by nested PCR analysis could be a prornisible method for the preselection of transgenic embryos. Furthermore, the preselection of transgenic embryos would greatly reduce hoth the cost and effort of production of transgenic animals.
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