Due to the increase in incidence of infection of Mycobacterium tuberculosis complex (MTC), it is imperative that a rapid diagnosis accompanies the handling of MTC. This is due to the three to eight weeks it takes to culture Mycobacteria, and the lack of sensitivity of microscopic examination of AFB. Recently, nested PCR has been used to detect and diagnose mycobacteria. It is especially useful in complementing diagnosis by histological extra pulmonary. After culturing all the specimens and practicing the nested PCR, we did comparison analysis between nested PCR and culture. There were 76 specimens, 31 of which were positive. Of the 31 positive specimens in culturing, only 22 were positive in nested PCR. Of the 45 negative specimens, 36 were negative in nested PCR. As a result, Sensitivity was 71% and specificity was 80%. Furthermore, the positive predictive value was 71% and negative predictive value was 80%. These results indicate that nested PCR based techniques are sensitive, specific, and rapid methods for the detection of MTC.
Cylindrocarpon destructans is a soil-borne plant pathogenic fungus causing root rot on ginseng and trees. Rapid and exact detection of this pathogen was practiced on ginseng seedlings by nested PCR using speciesspecific primer set. The second round of PCR amplification by Dest 1 and Dest 4 primer set formed 400 bp of species-specific fragment of C. destructans from the product of first round of amplification by ITS 1 and ITS 4 primer set. In the PCR sensitivity test based on DNA density, nested PCR detected to the limit of one fg and it meant the nested PCR could detect up to a few spores of C. destructans. Also, nested PCR made it possible to detect the pathogen from ginseng seedlings infected by replantation on artificial infested soil. Our nested PCR results using species-specific primer set could be utilized for diagnosis of root rot disease in ginseng cultivation.
Kim, Young-Tak;Park, Kyoung-Soo;Kim, Hye-Seong;Lee, Hyok-In;Cha, Jae-Soon
Research in Plant Disease
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v.21
no.2
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pp.74-81
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2015
The specific and sensitive nested-PCR method to detect Acidovorax citrulli, a causal agent of bacterial fruit blotch on cucurbitaceae, was developed. PCR primers were designed from the draft genome sequence which was obtained with the Next Generation Sequencing of A. citrulli KACC10651, and the nested-PCR primer set (Ac-ORF 21F/Ac-ORF 21R) were selected by checking of specificity to A. citrulli with PCR assays. The selected nested-PCR primer amplified the 140 bp DNA only from A. citrulli strains, and detection sensitivity of the nested PCR increased 10,000 times of $1^{st}$ PCR detection limit (10 ng genomic DNA/PCR). The nested PCR detected A. citrulli from the all samples of seed surface wash (external seed detection) of the artificially inoculated watermelon seeds with $10^1cfu/ml$ and above population of A. citrulli while the nested PCR could not detected A. citrulli from the mashed seed suspension (internal seed detection) of the all artificially inoculated watermelon seeds. When the naturally infested watermelon seeds (10% seed infested rate with grow-out test) used, the nested PCR detected A. citrulli from 2 seed samples out of 10 replication samples externally and 5 seed samples out of 10 replication samples internally. We believe that the nested-PCR developed in this study will be useful method to detect A. citrulli from the Cucurbitaceae seeds.
In order to identify various Cryptosporidium species in environment, nested PCR-RFLP and DNA sequencing method were used. The sensitivity of nested PCR-RFLP based on 18s rRNA gene was shown to 1 oocyst. Therefore, we applied nested PCR-RFLP method to environmental samples. As a result, only 4 samples out of 8 samples confirmed as Cryptosporidium parvum by standard method of Cryptosporidium were identified as Cryptosporidium parvum by nested PCR-RFLP and DNA sequencing method. The rest of 4 samples among 8 samples were identified as Cryptosporidium muris, Cryptosporidium bailey. Therefore, in addition to standard method of Cryptosporidium, supplementary verification through nested PCR-RFLP and DNA sequencing should be needed to give more accurate information about risk of Cryptosporidium.
In this study, we used the method of guanidin isothiocyanate and boiling with Chelex-100 resin to extract genomic DNA of Ralstonia solanacearum from soil. It is more efficient than general protocols to remove inhibitory compounds in soil and R. solanacearum on. Then, we applied polymerase chain reaction and DNA enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) to identify and detect pathogen. The fliC gene of R. solanacearum was selected for specific detection of pathogen and primer sets were designed. Among the primer sets, two specific and sensitive primer sets, RsolfliC(forward: 5-GAACGCCAACGGTGCGAACT-3 and reverse; 5-GGCGGCCTTCAGGGAGGTC-3, designed by J. $Sch\ddot{o}nfeld$ et al.) and RS_247 (forward: 5-GGCGGTCTGTCGGCRG-3 and reverse; 5-CGGTCGCGTTGGCAAC-3 designed by this study), were designed to perform nested PCR. Nested PCR primer was labeled with biotin for hybridization between nested PCR product and probe to analyze with DNA ELISA.
The aim of this work was to validate a rapid and an accurate method for detecting Mycobacterium leprae in clinical specimens using nested PCR targeting M. leprae-specific repetitive element (RLEP) sequence. The primers were derived from the RLEP sequence which yield a 272 bp outer product and a 230 bp inner product. The specificity and the sensitivity of the nested PCR were compared with those of single PCR for detecting M. leprae using DNAs isolated from reference strain and various species of Mycobacterium. The results showed that the sensitivity of the nested PCR was about 100 to 1,000 times higher than that of the single PCR and also showed that both the single and the nested PCR were highly specific to M. leprae. Subsequently, the usefulness of the single and nested PCR was evaluated with clinical samples isolated from leprosy patients. The number of positive detections by the single and the nested PCR with a total of 20 specimens from leprosy patients were 9 (45%) and 20 (100%), respectively. The results clearly showed that nested PCR has highest sensitivity in detecting M. leprae from clinical specimens. Therefore, nested primers targeting RLEP sequence developed in this study seems to be useful to detect the presence of M. leprae.
Pseudomonas tolaasii causing brown blotch disease was detected by PCR from water samples collected from the oyster mushroom cultivation farms to find the contamination level of the pathogen in water. Sixteen water samples (28.1%) contain less than 1,000 cfu, 31 samples (54.4%) contain 1,001-10,000 cfu, 6 samples (10.5%) contain 10,001-100,000 cfu, and 4 samples (7%) contain of bacteria per milliliter. P. tolaasii-specific DNA band was amplified in 3 samples (5.3%) by nested-PCR and in 20 samples (35.1%) by immunocapture (IC)-nested PCR respectively. These results suggest that IC-nested-PCR was much more sensitive than nested-PCR in detection of P. tolaasii and a quite few waters using for oyster mushroom cultivation were contaminated with P. tolaasii.
Proceedings of the Korean Society of Veterinary Pathology Conference
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2002.11a
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pp.139-139
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2002
돼지 설사유발 칼리시 바이러스(Porcine enteric calicivirus: PECV)도 자돈에서 설사를 일으키는 바이러스로 이미 알려졌다. RT-PCR과 nested PCR을 이용하여 국내 양돈장에서 PECV의 발생을 조사하고자 본 연구를 시도하였다. 설사 분변은 경기, 충남, 전북, 전남과 제주지역에 분포한 31개의 농장 102마리의 자돈에서 채취하여 의뢰된 것을 조사하였다. RT-PCR 과 nested PCR 을 위하여 RNA dependent RNA Polymerase (RDRP) 부위와 capsid 부위에서 각각 2 쌍의 primer를 작성하였다. RDRP 부위에서 RT-PCR을 시행했던 바, 3마리 (2.9%) 에서, nested PCR에서는 18마리 (17.6%)에서 양성반응이 나왔으며 capsid 부위에서 RT-PCR 결과 5마리 (4.9%), nested PCR에서는 18마리(17.6%)가 양성반응으로 확인되었다. 본 연구를 통하여 PECV가 국내에서 돼지 설사를 일으키는 주요 원인체 중 하나라는 것이 밝혀졌으며, nested PCR 기법이 돼지 설사분변에서 PECV를 검출하는 좋은 진단방법이었다.
For the specific detection of human Parvovirus B19 (HuPaV-B19), we designed ten specific PCR primers from 3,800~4,500 nucleotides of HuPaV-B19 complete genome (NC_000883.2). Seventeen candidate PCR primer sets for specific detecting HuPaV-B19 were constructed. In specific reaction of HuPaV-B19, seventeen PCR primer sets showed specific band, however five PCR primer sets were selected basis of band intensity, amplicon size and location. In non-specific reaction with seven reference viruses, four PCR primer sets showed non-specific band, however one PCR primer set is not. Detection sensitivity of final selective PCR primer set was $100fg/{\mu}L$ for 112 minute, and PCR amplicon is 539 base pairs (bp). In addition, nested PCR primer set was developed, for detection HuPaV-B19 from a low concentration of contaminated samples. Selection of nested PCR primer set was basis of sensitivity and groundwater sample tests. Detection sensitivity of final selective PCR and nested PCR primer sets for the detection of HuPaV-B19 were $100fg/{\mu}L$ and $100ag/{\mu}L$ basis of HuPaV-B19 plasmid, it was able to rapid and highly sensitive detection of HuPaV-B19 than previous reports. We expect developed PCR primer set in this study will used for detection of HuPaV-B19 in various samples.
This study examined the prevalence of Brucella spp. and Leptospira interrogans in 360 clinically healthy dogs using multiplex nested PCR. Four dogs (1.1%, 2 females and 2 males) tested positive to Brucella spp. by multiplex nested PCR. Fifty nine (16.4%, 31 females and 28 males) of 360 dogs tested positive L. interrogans. In 1 and 2 of the samples that tested positive to Brucella spp. and L. interrogans, the partial sequences of the virB1 and 16S rRNA genes were identified by direct sequence analysis, respectively. In conclusion, prevalence of Brucella spp. and L. interrogans by multiplex nested PCR revealed low and high, respectively. Multiplex nested PCR is can be useful for early detection of Brucella spp. and L. interrogans in the canine blood from asymptomatic dogs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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