One of the innate immune reactions in invertebrates is the pro-phenoloxidase (pro-PO) activation system that is involved in the generation of superoxide, melanin synthesis, and the subsequent sequestration of foreign matter entering the hemocoel of the invertebrates. However, the molecular mechanism of this biological reaction is still obscure. To expand our understanding of the biological roles of the pro-PO activation system in invertebrates, we performed a yeast two-hybrid screening by using three regions of pro-PO as bait and a yeast two-hybrid cDNA library from Tenebrio molitor larvae as prey We isolated a novel partial cDNA clone that encodes a glycine-rich protein that interacted with the active phenoloxidase (termed phenoloxidase interacting protein, POIP). POIP consists of two domains: One is an N-terminal unique domain and the other is a C-terminal glycine-rich domain. The C-terminal glycine-rich domain showed sequential homology with those of insect antifungal proteins. Also, the yeast two-hybrid screen in a reverse orientation (using POIP as bait) yielded PO, suggesting that the PO-POIP interaction is specific. By using a 315 bP PCR fragment of the N-terminal unique region of POIP, we cloned the full-length cDNA of POIP from the Tenebruo cDNA library constructed by using E. coli injected larvae. The interaction analysis between PO, and a truncated fragment lacking the N-terminal unique region of POIP, indicated that the N-terminal unique region is necessary for interaction between PO and POIP. The expression level of the POIP mRNA is increased by bacterial injection into T. molitor larvae. This suggests that POIP might be engaged in the humoral defense reaction.
The product of bacteriophage T7 gene 2.5 is a single-stranded DNA binding protein and plays an important role in T7 DNA replication, recombination, and repair. Genetic analysis of T7 phage defective in gene 2.5 shows that the gene 2.5 protein is essential for T7 DNA replication and growth (Kim and Richardson, 1993). The C-terminal truncated gene 2.5 protein ($GP2.5-{\Delta}21C$) cannot substitute for wild-type gene 2.5 protein in vivo; suggesting that the C-terminal domain of gene 2.5 protein is essential for protein-protein interactions (Kim and Richardson, 1994; J. Biol. Chem. 269, 5070-5078). Truncated gene 2.5 proteins lacking 19 residues ($GP2.5-{\Delta}19N$) and 39 residues ($GP2.5-{\Delta}39N$) from the amino-terminal domain were constructed by in vitro mutagenesis. $GP2.5-{\Delta}19N$ can support the growth of T7 phage lacking gene 2.5 while $GP2.5-{\Delta}39N$ cannot substitute for wild-type gene 2.5 protein in vivo; however, its ability to bind to single-stranded DNA is not affected. These results clearly demonstrate that the 20~39 amino-terminal region of gene 2.5 protein is required for T7 growth in vivo but may not be involved in DNA binding activity.
5-Enolpyruvylshikimate-3-phosphate (EPSP) synthase catalyzes the formation of EPSP and inorganic phosphate from shikimate-3-phosphate (S3P) and phosphoenolpyruvate (PEP) in the biosynthesis of aromatic amino acids. To delineate the domain-specific function, we successfully isolated the discontinuous C-terminal domain (residues 1-21, linkers, 240-427) of EPSP synthase (427 residues) by site-directed mutagenesis. The engineered C-terminal domains containing no linker (CTD), or with gly-gly ($CTD^{GG}$) and gly-ser-ser-gly ($CTD^{GSSG}$) linkers were purified and characterized as having distinct native-like secondary and tertiary structures. However, isothermal titration calorimetry (ITC), $^{15}N-HSQC$,\;and\;^{31}P-NMR$ revealed that neither its substrate nor inhibitor binds the isolated domain. The isolated domain maintained structural integrity, but did not function as the half of the full-length protein.
The imprinted tumour suppressor NOEY2 is downregulated in various cancer types, including ovarian cancers. Recent data suggest that NOEY2 plays an essential role in regulating the cell cycle, angiogenesis and autophagy in tumorigenesis. However, its detailed molecular function and mechanisms in ovarian tumours remain unclear. In this report, we initially demonstrated the inhibitory effect of NOEY2 on tumour growth by utilising a xenograft tumour model. NOEY2 attenuated the cell growth approximately fourfold and significantly reduced tumour vascularity. NOEY2 inhibited the phosphorylation of the signalling components downstream of phosphatidylinositol-3'-kinase (PI3K), including phosphoinositide-dependent protein kinase 1 (PDK-1), tuberous sclerosis complex 2 (TSC-2) and p70 ribosomal protein S6 kinase (p70S6K), during ovarian tumour progression via direct binding to vascular endothelial growth factor receptor-2 (VEGFR-2). Particularly, the N-terminal domain of NOEY2 (NOEY2-N) had a potent anti-angiogenic activity and dramatically downregulated VEGF and hypoxia-inducible factor-1α (HIF-1α), key regulators of angiogenesis. Since no X-ray or nuclear magnetic resonance structures is available for NOEY2, we constructed the three-dimensional structure of this protein via molecular modelling methods, such as homology modelling and molecular dynamic simulations. Thereby, Lys15 and Arg16 appeared as key residues in the N-terminal domain. We also found that NOEY2-N acts as a potent inhibitor of tumorigenesis and angiogenesis. These findings provide convincing evidence that NOEY2-N regulates endothelial cell function and angiogenesis by interrupting the VEGFR-2/PDK-1/GSK-3β signal transduction and thus strongly suggest that NOEY2-N might serve as a novel anti-tumour and anti-angiogenic agent against many diseases, including ovarian cancer.
한국응용약물학회 2002년도 창립10주년기념 및 국립독성연구원 의약품동등성평가부서 신설기념 국재학술대회:생물학적 동등성과 의약품 개발 전략을 위한 국제심포지움
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pp.236-236
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2002
Pyruvate dehydrogenase phosphatase (PDP) is a mitochondrial protein serine/threonine phosphatase that catalyzes the dephosphorylation and concomitant reactivation of the pyruvate dehydrogenase componant of the pyruvate dehydrogenase complex (PDC). PDP consists of a Mg$\^$+2/ -dependent and Ca$\^$+2)-stimulated catalytic subunit (PDPc) of Mr 52,600 and a FAD-containing regulatory subunit (PDPr) of Mr 95.600. Catalytic subunit of pyruvate dehydrogenase phosphatase (PDPc) has been suggested to have three major functional domains such as dihydrolipoamide acetyltransferase(E$_2$)-binding domain, regulatory subunit of PDP(PDPr)-binding domain, and calcium-binding domain. In order to identify functional domains, recombinant catalytic subunit of pyruvate dehydrogenase phosphatase (rPDPc) was expressed in E. coli JM101 and purified to near homogeneity using the unique property of PDPc: PDPm binds to the inner lipoyl domain (L$_2$) of E$_2$ of pyruvate dehydrogenase complex (PDC) in the presence of Ca$\^$+2/, not under EGTA. PDPc was limited-proteolysed by trypsin, chymotrypsin, Arg-C, and elastase at pH7.0 and 30$^{\circ}C$ and N-terminal analysis of the fragment was done. Chymotrypsin, trypsin, and elastase made two major framents: N-terminal large fragment, approx. 50kD and C-terminal small fragment, approx. 0 kDa. Arg-C made three major fragments: N-terminal fragment, approx. 35 kD, and central fragment, approx. 15 kD, and C-terminal fragment, approx. 10 kD. This study strongly suggest that PDPc consists of three major functional domains. However, further study should be necessary to identify the functional role.
We constructed deletion mutants and seven point mutants by polymerase chain reaction to investigate the specificity of feline foamy virus integrase functional domains. Complementation reactions were performed for three enzymatic activities such as 3'-end processing, strand transfer, and disintegration. The complementation reactions with deletion mutants showed several activities for 3'-end processing and strand transfer. The conserved central domain and the combination of the N-terminal or C-terminal domains increased disintegration activity significantly. In the complementation reactions between deletion and point mutants, the combination between D107V and deletion mutants revealed 3'-end processing activities, but the combination with others did not have any activity, including strand transfer activities. Disintegration activity increased evenly, except the combination with glutamic acid 200. These results suggest that an intact central domain mediates enzymatic activities but fails to show these activities in the absence of the N-terminal or C-terminal domains.
Green fluorescent protein (GFPuv) was displayed on the surface of ethanol-producing bacteria Zymomonas mobilis using N-terminal domain of ice nucleation protein (INP) as an anchoring motif. To evaluate the ice nucleation protein as plausible anchor motif in Z. mobilis, GFPuv gene was subcloned into Zymomonas expression vector yielding pBBR1MCS-3/pPDC/INPN/GFPuv plasmid., INP-GFPuv fusion protein was expressed in Z. mobilis and its fluorescence was verified by confocal microscopy. The successful display of GFPuv on Zymomonas mobilis suggest that INP anchor motif could be used for future fusion partner in Z. mobilis strain improvement.
BEST family is a class of Ca2+-activated Cl- channels evolutionary well conserved from bacteria to human. The human BEST paralogs (BEST1-BEST4) share significant amino acid sequence homology in the N-terminal region, which forms the transmembrane helicases and contains the direct calcium-binding site, Ca2+-clasp. But the cytosolic C-terminal region is less conserved in the paralogs. Interestingly, this domain-specific sequence conservation is also found in the BEST1 orthologs. However, the functional role of the C-terminal region in the BEST channels is still poorly understood. Thus, we aimed to understand the functional role of the C-terminal region in the human and mouse BEST1 channels by using electrophysiological recordings. We found that the calcium-dependent activation of BEST1 channels can be modulated by the C-terminal region. The C-terminal deletion hBEST1 reduced the Ca2+-dependent current activation and the hBEST1-mBEST1 chimera showed a significantly reduced calcium sensitivity to hBEST1 in the HEK293 cells. And the C-terminal domain could regulate cellular expression and plasma membrane targeting of BEST1 channels. Our results can provide a basis for understanding the C-terminal roles in the structure-function of BEST family proteins.
SH3YL1, a novel protein containing one Src homology 3 domain at the carboxyl terminus was first detected in mouse anagen skin cDNA. This protein had a significant homology with YHRO 16c/Ysc 84, the yeast Src homology 3 domain-containing protein. The sequence identity was remarkable at the carboxyl and amino-terminal Src homology 3 domain, suggesting that the novel protein is a mouse homolog of the yeast protein and thus was termed as SH3YL1. SH3YL1 is composed of two domains, a DUF500 at N-termini and a SH3 domain at C-termini. In our study we cloned the SH3 domain in bacterial expression system in Escherichia coli using pET32a vector with TEV protease cleavage site and purified as a monomer using affinity chromatography. The N-terminal poly-Histidine tag was cleaved with TEV protease and target protein was used for backbone studies. Our study showed that SH3 domain primarily consists of $\beta$-sheet which is in consistence with previous result performed on the truncated SH3 domain of SH3YL1.
Riboflavin synthase from Escherichia coli is a homotrimer of 23.4 kDa subunits and catalyzes the formation of one molecule each of riboflavin and 5-amino-6-ribitylamino- 2,4(1H,3H)-pyrimidinedione by the transfer of a 4-carbon moiety between two molecules of the substrate, 6,7- dimethyl-8-ribityllumazine. Each subunit comprises two closely similar folding domains. Recombinant expression of the N-terminal domain is known to provide a $C_2$-symmetric homodimer. In this study, the binding properties of wild type as well as two mutated proteins of N-terminal domain of riboflavin synthase with various ligands were tested. The replacement of the amino acid residue A43, located in the second shell of riboflavin synthase active center, in the recombinant N-terminal domain dimer reduces the affinity for 6,7-dimethyl-8-ribityllumazine. The mutation of the amino acid residue C48 forming part of activity cavity of the enzyme causes significant $^{19}F$ NMR chemical shift modulation of trifluoromethyl derivatives of 6,7-dimethyl-8-ribityllumazine in complex with the protein, while substitution of A43 results in smaller chemical shift changes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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