To investigate further whether the effects of the dihydropyridine (DHP) drugs on calcium channels are related to those of these drugs on muscarinic receptors, the binding characteristics of the DHP calcium channel agonist, Bay K 8644, on muscarinic receptors and calcium channels were compared to those of the DHP calcium channel antagonists, nicardipine and nimodipine in the dog cardiac sarcolemma. Bay K 8644, nicardipine and nimodipine inhibited the specific $[^3H]$QNB binding with $K_i$ values of 16.7\mu{M}$, 3.5\mu{M}$ and 15.5\mu{M}$ respectively. Saturation data of $[^3H]$QNB binding with $K_i$ VALUES OF 16.7\mu{M}$3.5\mu{M}$ and 15.5\mu{M}$ respectively. Saturation data of $[^3H]$QNB binding in the presence of these DHP drugs showed this inhibition to be competitive. Bay K 8644, like nicardipine and nimodipine, blocked the binding of $[^3H]$nitrendipine to the high affinity DHP binding sites, but atropine did not, indicating that the muscarinic receptors and the DHP binding sites m but atropine did not, indicating that the muscarinic receptors and the DHP bindings sites on calcium channels are distinct. The $K_i$ value of Bay K 8644 for the DHP binding sites was 4nM. Nicardipine and nimodipine $(K_i:0.1-0.2\;nM)$ were at least 20 times more potent than Bay K 8644 in inhibiting $[^3H]$ nitrendipine binding. Thus, the muscarinic receptors were about 4000 times less sensitive than thes high afinity DHP binding sites to Bay K 8644. These results suggest that the DHP calcium agonist Bay K 8644 binds directly to the muscarinic receptors but its interaction with the muscarinic receptors is not related to its binding to the DHP binding sites on calcium channels.
The present study was undertaken to examine the influence of glucocorticoids on the secretory responses of catecholamines (CA) evoked by acetylcholine (ACh), DMPP, McN-A-343, excess K^+$ and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to clarify the mechanism of its action. The perfusion of the synthetic glucocorticoid dexamethasone (10-100\;{\mu}M$) into an adrenal vein for 20 min produced a dose-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32 mM), excess K^+$ (a membrane-depolarizor 56 mM), DMPP (a selective nicotinic receptor agonist, 100\;{\mu}M$ for 2 min), McN-A-343 (a muscarinic receptor agonist, 100\;{\mu}M$ for 4 min), Bay-K-8644 (a calcium channel activator, 10\;{\mu}M$ for 4 min) and cyclopiazonic acid (a releaser of intracellular $Ca^{2+}$, 10\;{\mu}M$ for 4 min). Similarly, the preperfusion of hydrocortisone (30\;{\mu}M$) for 20 min also attenuated significantly the secretory responses of CA evoked by nicotinic and muscarinic receptor stimulation as well as membrane-depolarization, $Ca^{2+}$ channel activation and the release of intracellular $Ca^{2+}$. Furthermore, even in the presence of betamethasone (30{\mu}M$), CA secretion evoked by ACh, excess K^+$, DMPP and McN-A-343 was also markedly inhibited. Taken together, the present results suggest that glucocorticoids cause the marked inhibition of CA secretion evoked by both cholinergic nicotinic and muscarinic receptor stimulation from the isolated perfused rat adrenal gland, indicating strongly that this inhibitory effect may be mediated by inhibiting influx of extracellular calcium as well as the release of intracellular calcium in the rat adrenomedullary chromaffin cells.
The classical type of transient receptor potential (TRPC) channel is a molecular candidate for $Ca^{2+}$-permeable cation channels in mammalian cells. Because TRPC4 and TRPC5 belong to the same subfamily of TRPC, they have been assumed to have the same physiological properties. However, we found that TRPC4 had its own functional characteristics different from those of TRPC5. TRPC4 channels had no constitutive activity and were activated by muscarinic stimulation only when a muscarinic receptor was co-expressed with TRPC4 in human embryonic kidney (HEK) cells. Endogenous muscarinic receptor appeared not to interact with TRPC4. TPRC4 activation by $GTP{\gamma}S$ was not desensitized. TPRC4 activation by $GTP{\gamma}S$ was not inhibited by either Rho kinase inhibitor or MLCK inhibitor. TRPC4 was sensitive to external pH with $pK_a$ of 7.3. Finally, TPRC4 activation by $GTP{\gamma}S$ was inhibited by the calmodulin inhibitor W-7. We conclude that TRPC4 and TRPC5 have different properties and their own physiological roles.
대한약학회 2002년도 Proceedings of the Convention of the Pharmaceutical Society of Korea Vol.2
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pp.131-133
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2002
In 'Nature', Dixon et al. reported the first cloned mammalian G-protein coupled receptor sequence (1). The DNA sequence from a hamster encodes the $\beta$$_2$-aderenergic receptor. In the same year, 1986, Kubo et al. published the muscarinic acetylcholine receptor sequence (M$_1$) from a rat in the same journal (2). Both groups purified the receptor proteins and identified the DNA sequences (1, 2). (omitted)
Kim, Seungwoo;Shin, Youngmi;Shin, Youngju;Park, Yang-Seo;Cho, Nam Jeong
Molecules and Cells
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제25권4호
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pp.504-509
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2008
Three G-protein-linked acetylcholine receptors (GARs) exist in the nematode C. elegans. GAR-3 is pharmacologically most similar to mammalian muscarinic acetylcholine receptors (mAChRs). We observed that carbachol stimulated ERK1/2 activation in Chinese hamster ovary (CHO) cells stably expressing GAR-3b, the predominant alternatively spliced isoform of GAR-3. This effect was substantially reduced by the phospholipase C (PLC) inhibitor U73122 and the protein kinase C (PKC) inhibitor GF109203X, implying that PLC and PKC are involved in this process. On the other hand, GAR-3b-mediated ERK1/2 activation was inhibited by treatment with forskolin, an adenylate cyclase (AC) activator. This inhibitory effect was blocked by H89, an inhibitor of cAMP-dependent protein kinase A (PKA). These results suggest that GAR-3b-mediated ERK1/2 activation is negatively regulated by cAMP through PKA. Together our data show that GAR-3b mediates ERK1/2 activation in CHO cells and that GAR-3b can couple to both stimulatory and inhibitory pathways to modulate ERK1/2.
An exceptionally conserved sequence that is shared among most G protein-coupled neurotransmitter receptors is an aspartate-arginine-tyrosine triplet that is located at the second cytoplasmic domain. Using the ml subtype of muscarinic acetylcholine receptors as an example, a point mutation of the arginine residue at position 123 into asparagine was induced. This mutation resulted in a complete blockade of the carbachol-induced increases of PI hydrolysis and intracellular $Ca^2$$^{+}$ level, in spite of the expression of the wild-type and mutant receptors at similar concentrations in Chinese hamster ovary cells. In marked contrast, the muscarinic agonist carbachol induced concentration-dependent enhancement of the activity of NO synthase at mutant ml receptors although the enhancement was significantly smaller than at wild-type ml receptors. These data suggest that this highly conserved arginine residue plays an important role in coupling of muscarinic receptors to the second messenger systems and the presence of alternate mechanisms of activation of neuronal NO synthase which might be operative in the absence of large changes in the concentration of cellular $Ca^{2+}$.2+/.
The influence of glucocorticoids on the secretory responses of catecholamines (CA) evoked by acetylcholine (ACh), DMPP, McN-A-343, excess K$\^$+/ and Bay-K-8644 from the isolated perfused rat adrenal gland and to clarify the mechanism of its action. The perfusion of the synthetic glucocorticoid dexamethasone (10-100 uM) into an adrenal vein for 20min produced relatively a dose-dependent inhibition in CA secretion evoked by ACh (5.32mM), excess K$\^$+/ (56mM), DMPP (a selective nicotinic receptor agonist, 100uM for 2min), McN-A-343 (a muscarinic receptor agonist, 100uM for 4min), Bay-K-8644 (a calcium channel activator, 10 uM for 4min) and cyclopiazonic acid (a releaser of intracellular Ca$\^$2+/, 10uM for 4min).
Our previous study has suggested that muscarinic receptor present in the mouse oocytes, and Ca/sup 2+/ waves elicited by acetylcholine (ACh) are similar to those induced by sperm. A numerous study reported that ACh could cause early activation events in mouse oocytes overexpressing the Ml muscarinic receptor (Williams et al., 1992; Moore et al., 1993; Kim et al., 1998). However, the physiological role of ACh during mouse embryonic development is poorly understood. (omitted)
$M_1$과 $M_2$ 무스카린성 수용체의 두 번째 transmembrane domain의 C-말단에는 leucine(L), tyrosine(Y), threonine(T)로 구성된 3중체(triplet)가 있다. 이 3중체는 $M_2$ 무스카린성 수용체에서는 두 번째 transmembrane domain과 첫 번째 세포외 고리사이의 연접부위에서 LYT-LYT의 반복구조로 존재하며 $M_1$ 무스카린성 수용체에서는 흥미롭게도 LYT-TYL의 역상구조로 존재한다. 본 연구에서는 site-directed mutagenesis방법을 사용하여 이와 같은 특이한 구조적차이가 두 subtype의 수용체의 기능상 차이와 관련한 역할을 가지고 있는지를 확인하고자 하였다. $M_1$ 수용체에서는 LYTTYL서열을 $M_2$ 수용체의 서열에 해당하는 LYTLYT로 mutation시켰으며 $M_2$ 수용체에서는 LYTLYT8서열을 $M_1$ 수용체의 서열에 해당하는 LYTTYL로 mutation시켰다. 이와같은 mutation은 $M_1$과 $M_2$ 수용체에서 효능제 carbachol의 수용체 결합친화력에 유의한 변화를 주지 않았다. 또한 $M_1$ 수용체에서의 mutation은 cyclic AMP 증가작용에 대한 coupling은 변화시키지 않고 phosphoinositides (PI) hydrolysis 촉진작용과 세포내 $Ca^{2+}$ 농도 상승을 현저히 증가시켰다. 또한 $M_2$ 수용체에서의 mutation은 adenylate cyclase 억제에 대한 coupling은 변화시키지 않고 PI hydrolysis 촉진을 약간 증가 시켰다. 이상의 결과는 $M_1$과 $M_2$ 수용체에서 LYTTYL/LYTLYT 아미노산 서열의 차이는 두 수용체의 PI hydrolysis에 대한 coupling을 조절하는 역할을 하지만, 두 수용체 사이에서 ligand 결합과 신호전달계의 차이를 구분하는데 중요한 역할을 하지는 않는다.
뇌 해마의 콜린성 신경분포는 학습과 기역에 연관성이 있는 것으로 알려져 있으며 이의 작용제인 carbachol 투여 시 장기기억 저하가 유도됨이 알려져 왔다. 그러나 이러한 콜린성 자극에 의한 해마 신경세포의 시냅스 내 변화기작은 완전히 알려지지 않고 있다. 본 연구에서는 아세틸콜린 수용체의 활성에 의하여 유도되는 장기기억 저하 현상에 있어 alpha-amino-3-hydroxy-5-methylisoxazole-4-propionate (AMPA) 수용체가 후시냅스 표면으로부터 사라지는 현상과 이의 조절기작에 대하여 알아보고자 한다. 이를 위하여 쥐 해마의 일차세포를 추출하고 체외에서 배양한 성숙 신경세포에 carbachol 을 투여하여 장기기억 저하를 유도 하였으며, 후시냅스의 표면으로부 터 AMPA 수용체의 아단위체인 GluA2가 M1 무스카린 수용체의 길항제에 의하여 저해 되었다. 또한 콜린성 자극 에 의한 GluA2의 내재화 현상의 작용기작 연구를 위하여 쥐 해마 절편에 carbachol 투여 후 GluA2와 직접적인 상호작용을 하는 Glutam내재화 되었음을 확인하였다. 이러한 현상은 ate receptor-interacting protein 1 (GRIP1) 과 clathrine 단백질이 매개하는 세포내이입 작용을 하는 adaptin-α 단백질의 결합 변화를 관찰하였다. GluA2는 carbachol 자극에 의해 세포내이입 과정에서 adaptin-α 와의 결합이 증가하였으며 반대로 GRIP1과는 해리되었다. 이는 아세틸콜린의 수용체의 자극에 의하여 GluA2의 내제화 작용이 수반되며, 이의 작용기작으로 GluA2의 후시 냅스 표면 발현시에 결합하고 있는 GRIP1과 해리 되면서 장기기억 저하 현상이 유도됨을 의미한다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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