The aim of the present study was to examine the effects of green tea extract (CUMS6335) on the release of CA evoked by cholinergic stimulation and direct membrane-depolarization in the perfused model of the adrenal gland isolated from the spontaneously hypertensive rats (SHRs), and to establish the mechanism of action. Furthermore, it was also to test whether there is species difference between animals, and between CUMS6335 and EGCG, one of biologically the most powerful catechin compounds found in green tea. CUMS6335 $(100\;{\mu}g/ml)$, when perfused into an adrenal vein for 60 min, time-dependently inhibited the CA secretory responses evoked by ACh (5.32mM), high $K^+$(56 mM), DMPP $(100\;{\mu}M)$, and McN-A-343 $(100\;{\mu}M)$ from the isolated perfused adrenal glands of SHRs. However, CUMS6335 itself did fail to affect basal catecholamine output. Also, in adrenal glands loaded with CUMS6335 $(100\;{\mu}g/ml)$, the CA secretory responses evoked by Bay-K-8644 $(10\;{\mu}M)$ and cyclopiazonic acid $(10\;{\mu}M)$ were also inhibited in a relatively time-dependent fashion. However, in the Presence of EGCG $(8.0\;{\mu}g/ml)$ for 60 min, the CA secretory response evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were not affected except for last period. Collectively, these results indicate that CUMS6335 inhibits the CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by direct membrane-depolarization from the perfused adrenal gland of the SHR. It seems that this inhibitory effect of CUMS6335 is exerted by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells and the uptake of $Ca^{2+}$ into the cytoplasmic calcium store, which are at least partly relevant to the direct interaction with the nicotinic receptor itself. It seems likely that there is much difference in mode of the CA-releasing action between CUMS6335 and EGCG.
It has been known that calcium antagonists also inhibit the radioligand binding to muscarinic and $\alpha$-adrenergic receptors and, in case of verapamil, these inhibitions may play a role in the effects of verapamil on the heart. In this study, the effects of nicardipine, nifedipine, nimodipine, diltiazem and verapamil on the binding of [$^3H$]dihydroalprenolol (DHA) to dog cardiac ${\beta}$-adrenergic receptors were examined. A single uniform [$^3H$]DHA binding site ($K_D/= 5nM\;and\;B_{max}=2600$ fmol/mg protein) was identified in dog cardiac sarcolemma. [$^3H$]DHA binding was not affected by the usual therapeutic concentrations of these calcium antagonists (nanomolar range) but in the "nonspecific"concentration ranges ($28-180{\mu}m$) these drugs inhibited [$^3H$]DHA binding to $\beta$-adrenergic receptors. Nicardipine, nifedipine, nimodipine and diltiazem competed for [$^3H$]DHA binding to ${\beta}$-adrenergic receptors with dissociation constants ($K_i$) of $28{\mu}m,\' 74{\mu}m, 39{\mu}m \;and \;35{\mu}m,$ respectively. Verapamil ($K_i=176.5 {\mu}m$) was less potent inhibitor than other drugs and this inhibition was noncompetitive; the maximal binding capacity ($B_{max}$) $300 {\mu}m$ verapamil without change in the apparent dissociation constant (4K_D$) for DHA. These results indicate that the inhibitory action of calcium antagonists at high concentrations on ${\beta}$-adrenergic receptors is not involved in the therapeutic effects of these drugs by the calcium channel blocking action.
Lysophosphatidylcholine (LPC), which accumulates in atherosclerotic arteries, has been reported to inhibit endothelium-dependent relaxation (EDR) in many different species. However, the underlying mechanism of LPC-induced inhibition of EDR is still uncertain. In the present study, we measured simultaneously both isometric tension and cytosolic free $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) in rabbit carotid strips, and examined the effect of LPC on tension and $[Ca^{2+}]_i$. In carotid strips with intact-endothelium, high $K^+$ (70 mM) increased both tension and $[Ca^{2+}]_i$, and cumulative addition of acetylcholine (ACh) from 0.1 to $10{\mu}M$ induced dose dependent increase of $[Ca^{2+}]_i$ with concomitant relaxation. In the presence of L-NAME (0.1 mM), ACh increased $[Ca^{2+}]_i$ without affecting the amplitude of high $K^+-induced$ tension. These ACh-induced change of $[Ca^{2+}]_i$ and tension was abolished by removal of endothelium or 10 nM 4-DAMP (muscarinic receptor antagonist) pretreatment. Pretreatment of LPC ($10{\mu}M$) inhibited ACh ($10{\mu}M$)-induced change of tension and $[Ca^{2+}]_i$ in endothelium-intact carotid artery. On the other hand, LPC had no effect on ACh-induced change of tension and $[Ca^{2+}]_i$ in endothelium denuded artery. In $Ca^{2+}$-free external solution, ACh transiently increased $[Ca^{2+}]_i$, and pretreatment of LPC significantly inhibited ACh-induced transient $[Ca^{2+}]_i$ change. Based on the above results, it may be concluded that LPC inhibits the ACh-induced $[Ca^{2+}]_i$ change through inhibition of $Ca^{2+}$ mobilization in vascular endothelial cells, resulting in decreased production of NO and concomitant inhibition of endotheliumdependent vascular relaxation.
The present study was performed to elucidate the effects of extracellular $Ca^{2+}$ on contractile responses in isolated porcine coronary artery ring using by perivascular nerve stimulation (PNS). Especially, the study was focused on the source of $Ca^{2+}$ on $P_{2X}$-purinoceptor mediated muscle contraction which one of $P_2$-purinoceptor subtypes. The following results can be drawn from these studies : 1. The phasic contractions induced by PNS were inhibited with muscarinic receptor antagonist, atropine ($10^{-6}M$). 2. The phasic contractions induced by PNS were significantly inhibited by sequential treatment with atropine and adrenergic neural blocker, guanethidine ($10^{-6}M$). 3. The phasic contractions induced by PNS were inhibited with $P_{2X}$-purinoceptor desensitization by repetitive application of $\alpha$,$\beta$-Me ATP ($10^{-4}M$). 4. The phasic contractions induced by PNS were so weakened in calcium-free medium. 5. The phasic contractions induced by PNS were inhibited with calcium channel blocker, verapamil ($10^{-6}{\sim}5{\times}10^{-6}M$). 6. The phasic contractions induced by PNS on pretreated with verapamil ($10^{-6}{\sim}5{\times}10^{-6}M$) were not changed by $\alpha$,$\beta$-Me ATP ($10^{-4}M$). These results demonstrate that the neurogenic phasic contractions induced by PNS are due to adrenergic-, cholinergic- and $P_{2X}$-purinergic receptors and the origin of $Ca^{2+}$ on $P_{2X}$-purinoceptor mediated muscle contraction is extracellular $Ca^{2+}$ through plasmalemmal $Ca^{2+}$ channels.
The CHRM3 gene is a member of the muscarinic acetylcholine receptor family that plays important roles in the regulation of fundamental physiological functions. The evolutionary mechanism of exon-acquisition and alternative splicing of the CHRM3 gene in relation to transposable elements (TEs) were analyzed using experimental approaches and in silico analysis. Five different transcript variants (T1, T2, T3, T3-1, and T4) derived from three distinct promoter regions (T1: L1HS, T2, T4: original, T3, T3-1: THE1C) were identified. A placenta (T1) and testis (T3 and T3-1)-dominated expression pattern appeared to be controlled by different TEs (L1HS and THE1C) that were integrated into the common ancestor genome during primate evolution. Remarkably, the T1 transcript was formed by the integration event of the human specific L1HS element. Among the 12 different brain regions, the brain stem, olfactory region, and cerebellum showed decreased expression patterns. Evolutionary analysis of splicing sites and alternative splicing suggested that the exon-acquisition event was determined by a selection and conservation mechanism. Furthermore, continuous integration events of transposable elements could produce lineage specific alternative transcripts by providing novel promoters and splicing sites. Taken together, exon-acquisition and alternative splicing events of CHRM3 genes were shown to have occurred through the continuous integration of transposable elements following conservation.
The present study was attempted to investigate the effect of strychnine on catecholamine (CA) secretion evoked by ACh, high $K^+,$ DMPP and McN-A-343 from the isolated perfused rat adrenal gland. The perfusion of strychnine $(10^{-4}\;M)$ into an adrenal vein for 20 min produced great inhibition in CA secretory responses evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}\;M),$ DMPP $(10^{-4}\;M\;for\;2\;min)$ and McN-A-343 $(10^{-4}\;M\;for\;2\;min),$ but did not alter CA secretion by high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M).$ Strychnine itself did also fail to affect basal catecholamine output. Furthermore, in adrenal glands preloaded simultaneously with strychnine $(10^{-4}\;M)$ and glycine (an agonist of glycinergic receptor, $10^{-4}\;M),$ CA secretory responses evoked by ACh, DMPP and McN-A-343 were considerably recovered to some extent when compared with those evoked by treatment with strychnine only. However, CA secretion by high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M)$ was not affected. Taken together, these results demonstrate that strychnine inhibits greatly the CA secretory responses evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors, but does not affect that by membrane depolarization. It is suggested that strychnine-sensitive glycinergic receptors are localized in rat adrenal medullary chromaffin cells.
Park, Seojin;Kang, Minji;Heo, Ryeon;Mun, Seo-Yeong;Park, Minju;Han, Eun-Taek;Han, Jin-Hee;Chun, Wanjoo;Park, Hongzoo;Park, Won Sun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제26권5호
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pp.397-404
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2022
Fesoterodine, an antimuscarinic drug, is widely used to treat overactive bladder syndrome. However, there is little information about its effects on vascular K+ channels. In this study, voltage-dependent K+ (Kv) channel inhibition by fesoterodine was investigated using the patch-clamp technique in rabbit coronary artery. In whole-cell patches, the addition of fesoterodine to the bath inhibited the Kv currents in a concentration-dependent manner, with an IC50 value of 3.19 ± 0.91 μM and a Hill coefficient of 0.56 ± 0.03. Although the drug did not alter the voltage-dependence of steady-state activation, it shifted the steady-state inactivation curve to a more negative potential, suggesting that fesoterodine affects the voltage-sensor of the Kv channel. Inhibition by fesoterodine was significantly enhanced by repetitive train pulses (1 or 2 Hz). Furthermore, it significantly increased the recovery time constant from inactivation, suggesting that the Kv channel inhibition by fesoterodine is use (state)-dependent. Its inhibitory effect disappeared by pretreatment with a Kv 1.5 inhibitor. However, pretreatment with Kv2.1 or Kv7 inhibitors did not affect the inhibitory effects on Kv channels. Based on these results, we conclude that fesoterodine inhibits vascular Kv channels (mainly the Kv1.5 subtype) in a concentration- and use (state)-dependent manner, independent of muscarinic receptor antagonism.
Resveratrol has been known to possess various potent cardiovascular effects in animal, but there is little information on its functional effect on the secretion of catecholamines (CA) from the perfused model of the adrenal medulla. Therefore, the aim of the present study was to determine the effect of resveratrol on the CA secretion from the isolated perfused model of the normotensive rat adrenal gland, and to elucidate its mechanism of action. Resveratrol (10${\sim}100{\mu}$M) during perfusion into an adrenal vein for 90 min inhibited the CA secretory responses evoked by ACh (5.32 mM), high $K^+$ (a direct membrane-depolarizer, 56 mM), DMPP (a selective neuronal nicotinic $N_n$ receptor agonist, 100${\mu}$M) and McN-A-343 (a selective muscarinic $M_1$ receptor agonist, 100${\mu}$M) in both a time- and dose- dependent fashion. Also, in the presence of resveratrol (30${\mu}$M), the secretory responses of CA evoked by veratridine 8644 (an activator of voltage-dependent$Na^+$ channels, 100${\mu}$M), Bay-K-8644 (a L-type dihydropyridine $Ca^{2+}$ channel activator, 10${\mu}$M), and cyc1opiazonic acid (a cytoplasmic $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor, 10${\mu}$M) were significantly reduced. In the simultaneous presence of resveratrol (30${\mu}$M) and L-NAME (an inhibitor of NO synthase, 30${\mu}$M), the CA secretory evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyc1opiazonic acid were recovered to a considerable extent of the corresponding control secretion compared with the inhibitory effect of resveratrol alone. Interestingly, the amount of nitric oxide (NO) released from the adrenal medulla was greatly increased in comparison to its basal release. Taken together, these experimental results demonstrate that resveratrol can inhibit the CA secretory responses evoked by stimulation of cholinergic nicotinic receptors, as well as by direct membrane-depolarization in the isolated perfused model of the rat adrenal gland. It seems that this inhibitory effect of resveratrol is exerted by inhibiting an influx of both ions through $Na^+$ and $Ca^{2+}$ channels into the adrenomedullary cells as well as by blocking the release of $Ca^{2+}$ from the cytoplasmic calcium store, which are mediated at least partly by the increased NO production due to the activation of NO synthase.
생약 추출물의 기능성 소재로서 이용 가능성을 조사하고자 황련, 복분자, 하수오, 산약, 산수유, 치자엽, 당귀, 작약, 창출, 저령, 시호, 천궁, 택사, 삼백초, 백복령 등을 이용하여 인지기능 활성 실험을 수행한 결과 MH-1, MH-2 및 MH-3은 인지기능의 지표가 되는 M1 binding site 저해, glycine binding site 저해 및 AChE 저해활성 등에서 유의성 또는 높은 활성을 보였기 때문에 기능성식품 제조를 위한 퇴행성 뇌질환자의 뇌세포 활성 촉진 및 퇴화 예방과 조절을 위한 인지기능 증강 소재로의 활용가치가 있음이 증명됨에 따라 인지기능 증진 빵 제조에 활용하였다. 이와 같이 생약재의 인지기능 활성능을 확인한 후 활성이 높은 위의 생약 열수추출물을 일정한 비율로(밀가루를 기준으로 추출물은 10%, 20%, 30%, 50%) 첨가하여 식빵을 배합하였다. 제빵적성은 빵의 용적과 조직감을 측정하고 관능검사를 통하여 판정하였다. 빵의 용적은 생약추출물을 첨가하여 만든 빵의 경우 전체적으로 대조군보다 감소하였으나 추출물 20% 첨가 시에는 빵의 비용적에서 대조군과 별 차이를 인식할 수 없었다. 빵의 조직감은 추출물의 첨가량이 증가할수록 경도, 점착성, 씹힘성이 대조군에 비해 증가하였으며 부서짐성에서는 감소하였고 탄력성, 응집성, 복원성은 큰 변화가 없었다. 생약 추출물의 첨가에 따라 빵의 crumb색은 어두워졌으며 생약 추출물 첨가량과 관능검사와의 관계는 첨가량이 증가 할수록 맛, 향미, 전체적인 선호도, 입안에서의 느낌이 유의적으로 낮은 경향을 보였다. 따라서 전체적으로 대조군과 유사하게 좋은 점수를 얻은 추출물 10% 첨가 빵이 제품으로 생산되었을 때가 가장 적합한 것으로 나타났다.
Sjögren's syndrome (SS) is an autoimmune disease characterized by dryness of the mouth and eyes. The glandular dysfunction in SS involves not only T cell-mediated destruction of the glands but also autoantibodies against the type 3 muscarinic acetylcholine receptor or aquaporin 5 (AQP5) that interfere with the secretion process. Studies on the breakage of tolerance and induction of autoantibodies to these autoantigens could benefit SS patients. To break tolerance, we utilized a PmE-L peptide derived from the AQP5-homologous aquaporin of Prevotella melaninogenica (PmAqp) that contained both a B cell "E" epitope and a T cell epitope. Repeated subcutaneous immunization of C57BL/6 mice with the PmE-L peptide efficiently induced the production of Abs against the "E" epitope of mouse/human AQP5 (AQP5E), and we aimed to characterize the antigen specificity, the sequences of AQP5E-specific B cell receptors, and salivary gland phenotypes of these mice. Sera containing anti-AQP5E IgG not only stained mouse Aqp5 expressed in the submandibular glands but also detected PmApq and PmE-L by immunoblotting, suggesting molecular mimicry. Characterization of the AQP5E-specific autoantibodies selected from the screening of phage display Ab libraries and mapping of the B cell receptor repertoires revealed that the AQP5E-specific B cells acquired the ability to bind to the Ag through cumulative somatic hypermutation. Importantly, animals with anti-AQP5E Abs had decreased salivary flow rates without immune cell infiltration into the salivary glands. This model will be useful for investigating the role of anti-AQP5 autoantibodies in glandular dysfunction in SS and testing new therapeutics targeting autoantibody production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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